ゼブラフィッシュのソースを表示

{{Taxobox
| name = ''Danio rerio''
| status = LC
| status_system = IUCN3.1
| image = Zebrafisch.jpg
| image_caption = 成体（中央）、1細胞期の胚（左）、および受精後16時間の胚（右）（提供：岡本仁（理化学研究所））
| image_width = 250px
| regnum = [[Animal]]ia
| phylum = [[Chordate|Chordata]]
| classis = [[Actinopterygii]]
| ordo = [[Cypriniformes]]
| familia = [[Cyprinidae]]
| genus = ''[[Danio]]''
| species = '''''D. rerio'''''
| binomial = ''Danio rerio''
| binomial_authority = ([[Francis Buchanan-Hamilton|F. Hamilton]], 1822)
| synonyms = 
* ''Barilius rerio''
* ''Brachydanio rerio''
* ''Cyprinus chapalio''
* ''Cyprinus rerio''
* ''Danio frankei''
* ''Danio lineatus''
* ''Nuria rerio''
* ''Perilampus striatus''
}}

<div align="right">  
<font size="+1">[https://researchmap.jp/fumikubo 久保 郁]</font><br>
''理化学研究所 脳神経科学研究センター''<br>
DOI:<selfdoi />　原稿受付日:2026年8月31日　原稿完成日:2026年9月15日<br>
担当編集委員：[https://researchmap.jp/yamagatm 山形 方人]（ハーバード大学・脳科学センター）<br>
</div>
英：zebrafish　独：Zebrafisch　仏：poisson-zèbre<br>
学名：''Danio rerio''

{{box|text=　ゼブラフィッシュは、小型で飼育・繁殖が容易であり、幼若期の胚・仔魚が透明であることから、神経系の発生や神経活動を生体で観察できる重要な脊椎動物モデルである。また、Tol2トランスポゾンやCRISPR/Casなどの遺伝学的手法により、特定の遺伝子や神経細胞を操作できるため、遺伝子と神経機能・行動との因果関係を解析することができる。仔魚では脳が小型であることを活かして、全脳神経活動イメージングや光遺伝学、行動解析を組み合わせることで、神経回路と行動の関係を一細胞レベルで研究できる。さらに、単一細胞RNAシーケンス、デジタル脳アトラス、コネクトーム解析などにより、神経細胞の分子特性、形態、神経接続、活動を統合的に解析する研究が進んでいる。}}

== 神経科学におけるゼブラフィッシュ ==

　神経系の構造や機能を理解するためには、遺伝子、神経細胞、神経回路、行動の各階層を統合して解析する必要がある。そのため神経科学では、線虫・ショウジョウバエなどの無脊椎動物から、マウスなどの哺乳類動物まで、目的に応じてさまざまな[[モデル生物]]が用いられてきた。ゼブラフィッシュは、コイ科に属する小型淡水魚のモデル生物である。成魚は全長3〜5 cm程度と小型で、飼育・繁殖が容易であり、一度に多数の胚を得ることができる。ゼブラフィッシュは脊椎動物であり、神経系の基本的な発生過程や神経細胞の分化、感覚や行動を司る神経回路について、哺乳類との比較が可能である。また、ショウジョウバエや線虫と比較すると神経系は複雑であるものの、仔魚（およそ受精後3日以降〜数週間まで）の脳は小さく、全脳の神経活動を細胞レベルで測定することが可能である。後述するように、遺伝子改変技術、全脳神経活動イメージング、[[光遺伝学]]、仮想現実を利用した行動実験などの技術の発展により、ゼブラフィッシュは「遺伝子―神経細胞―神経回路―行動」の関係を統合的に解析するモデルとして重要になっている。
[[ファイル:Kubo Zebrafish Fig1.jpg|サムネイル|'''図. 受精後5日のゼブラフィッシュ仔魚''']]
== モデル生物としての特徴 ==

　ゼブラフィッシュが神経科学研究に適している第一の理由は、胚（およそ受精後3日後まで）・仔魚が高い透明性を有することである（'''図'''）。神経細胞を[[蛍光タンパク質]]で標識することで、神経細胞の分化、[[軸索]]伸長、神経回路形成を ''in vivo'' で観察できる。また、遺伝子コード型[[カルシウムインジケーター]]などを神経細胞に発現させることで、活動中の神経細胞を光学的に記録することも可能である。受精後約一週間の仔魚では、脳を構成する神経細胞数は約10万細胞と比較的少なく、脳全体が顕微鏡観察に適したサイズである。この特徴を活用することで、[[ライトシート顕微鏡]]や[[二光子顕微鏡]]を用いて脳内の大部分の神経細胞の活動を単一細胞レベルでリアルタイムに記録することができる（後述の「全脳神経活動イメージング」を参照）。さらに、胚・仔魚の高い光透過性を利用することで、光遺伝学による神経活動の非侵襲的な操作も可能である。

　第二の特徴は、飼育・繁殖が容易で、多数の同齢個体を得ることができる点である。発生が速く、受精後1日目には自発運動（自発的コイリング）を開始し、その後、触覚、視覚、聴覚などの感覚刺激に対する応答をはじめとする基本的な行動が段階的に発達する。そのため、脳が小さく透明な仔魚期から、神経回路と行動を対応づけた研究が可能である<ref name=Fero2011>Fero K, Yokogawa T, Burgess HA. The Behavioral Repertoire of Larval Zebrafish. In: Kalueff AV, Cachat JM, eds. ''Zebrafish Models in Neurobehavioral Research''. Humana Press; 2011:249–291. doi:10.1007/978-1-60761-922-2_12.</ref>。

　第三の特徴は、遺伝学的操作が比較的容易であることである。トランスポゾンTol2を利用したトランスジェニックゼブラフィッシュ系統の作製、CRISPR/Casを用いたゲノム編集（ノックアウトやノックイン）など、多様な遺伝学的手法が利用できる<ref name=Kawakami2004><pubmed>15239961</pubmed></ref><ref name=Kimura2014><pubmed>25293390</pubmed></ref><ref name=Hwang2013><pubmed>23360964</pubmed></ref>。これらを利用して、特定の遺伝子の機能を操作したり、特定の神経細胞群を標識したりすることができる。

== 遺伝学的手法 ==

　ゼブラフィッシュは、発生異常や行動異常を指標とした順遺伝学的スクリーニングに利用されてきた。大規模な化学変異原スクリーニングによって多数の突然変異体が同定され、脊椎動物の発生を制御する遺伝子の機能解析に貢献した<ref name=Driever1996><pubmed>9007227</pubmed></ref>。神経科学においても、視覚応答や運動行動の異常を指標とした遺伝学的スクリーニングが行われている<ref name=Neuhauss1999><pubmed>10493760</pubmed></ref><ref name=Granato1996><pubmed>9007258</pubmed></ref>。

　逆遺伝学的解析では、古典的にはmorpholino antisense oligonucleotideを用いた遺伝子発現阻害が広く利用された。その後、TALENやCRISPR/Cas9などの[[ゲノム編集]]技術が導入され、標的遺伝子のノックアウトやノックインをより安定して行えるようになった<ref name=Hwang2013 />。

　トランスジェニック技術では、組織特異的あるいは細胞種特異的なプロモーターを利用して、特定の神経細胞群に蛍光タンパク質やカルシウムインジケーター等を発現させることができる。また、Gal4/UASシステムやQF/QUASシステムなどのバイナリー遺伝子発現系、Cre/loxPシステムなどの[[リコンビナーゼ]]を用いた手法を利用することで、特定の神経細胞群をより柔軟かつ選択的に標識・操作することが可能である<ref name=Subedi2014><pubmed>23792917</pubmed></ref><ref name=Scott2009><pubmed>19457087</pubmed></ref><ref name=Carney2018><pubmed>29429760</pubmed></ref>。さらに、化学遺伝学や光遺伝学を組み合わせることで、特定の神経細胞をアブレーションしたり、活動を操作したりすることが可能となり、その神経細胞が行動に果たす因果的役割を検討できる。

== 神経系の構造 ==

　脊椎動物の脳は、さまざまな形や大きさをしているが、いずれも[[終脳]]、[[間脳]]、[[中脳]]、[[小脳]]、[[後脳]]といった脳領域から構成され、基本的な構造は共通している。魚類の終脳は哺乳類の[[大脳皮質]]とは形態が異なるが、発生学的・分子生物学的な対応関係が認められる領域が存在する<ref name=Puelles2013><pubmed>23871546</pubmed></ref>。このため、ゼブラフィッシュは脊椎動物における脳領域の形成や神経細胞の分化を研究するためのモデルとして利用されている。

　近年では、[[単一細胞RNAシーケンス]]などの技術を用いた発生段階を追う大規模な単一細胞トランスクリプトーム解析により、発生過程における神経細胞タイプの多様化が解析され、多数の神経細胞集団が同定されている<ref name=Raj2020><pubmed>33068532</pubmed></ref>。

== 神経回路と行動 ==

　ゼブラフィッシュは、神経回路と行動との関係を研究する上でも優れたモデルである<ref name=McArthur2020>McArthur KL, Chow DM, Fetcho JR. Zebrafish as a Model for Revealing the Neuronal Basis of Behavior. In: Cartner SC, et al., eds. ''The Zebrafish in Biomedical Research''. Academic Press; 2020:593–617. doi:10.1016/B978-0-12-812431-4.00046-4.</ref>。胚および仔魚は、視覚刺激に対する定位行動、光・暗条件に対する応答、逃避行動、遊泳など、定量的に測定可能な行動を示す。時間分解能の高い行動データを用いることで、遊泳運動の特徴量に基づき、仔魚の行動を教師なしでクラスタリングすることが可能である<ref name=Marques2018><pubmed>29307558</pubmed></ref>。

　視覚系はゼブラフィッシュ神経科学において特に研究が進んでいる<ref name=Baier2024><pubmed>38663429</pubmed></ref>。[[視蓋]]を中心とする視覚回路は、視覚刺激の検出から運動行動に至る神経回路を解析するモデルとなっている。視覚刺激によって誘発される捕食行動、逃避行動などの行動を定量的に測定し、それに相関を示す神経細胞を一細胞レベルで調べることができる。

　また、運動系においては、仔魚の遊泳行動を制御する神経回路が特によく解析されている。例えば、脊髄の[[運動ニューロン]]や[[介在ニューロン]]に加え、[[マウスナー細胞]]に代表される、脳幹から脊髄へ投射する網様体脊髄路（reticulospinal）ニューロンの活動も詳細に解析されており、これらの神経回路が運動出力をどのように制御しているかを解析することができる<ref name=Berg2018><pubmed>30271327</pubmed></ref>。

　また、ゼブラフィッシュでは社会行動、攻撃行動、摂食行動、ナビゲーション、睡眠・覚醒、学習・記憶などのより複雑な行動も研究対象となっている<ref name=McArthur2020 /><ref name=Okamoto2021><pubmed>33421772</pubmed></ref>。成魚では仔魚より複雑な行動を解析できる一方、脳が巨大化し透明性が失われるため、仔魚に比べて全脳イメージングには技術的な制約がある。このため仔魚と成魚を目的に応じて使い分けることが重要である（下記「ダニオネラ属：ゼブラフィッシュを補完する魚類モデル」を参照）。

== 全脳神経活動イメージング ==

　神経科学研究におけるゼブラフィッシュの最も特徴的な解析手法の一つが、仔魚を用いた全脳神経活動イメージングである。Ahrensらは、遺伝子コード型カルシウムインジケーターGCaMPを発現させたゼブラフィッシュ仔魚を用いて、運動適応中の脳全体の神経活動を二光子顕微鏡で記録し、感覚入力や運動出力と相関する神経活動を同定した<ref name=Ahrens2012><pubmed>22622571</pubmed></ref>。その後、より高速なイメージングが可能なライトシート顕微鏡が導入され、脳内のほぼすべての神経細胞の活動を、約2 volumes/secの取得速度で一細胞レベルにおいて記録できるようになった<ref name=Ahrens2013><pubmed>23524393</pubmed></ref>。

　この方法の重要性は、行動に関連する神経活動を、特定の脳領域をあらかじめ選択することなく、脳全体から探索できる点にある。このような仮説に依存しない大規模神経活動イメージング手法は、視覚、運動、逃避、摂食などの行動の解析に適用されてきた。これらの行動下では、複数の脳領域にまたがる分散的な神経活動パターンが観察されている<ref name=Vanwalleghem2018><pubmed>29486425</pubmed></ref><ref name=Loring2020><pubmed>33221591</pubmed></ref>。

　さらに、頭部を固定した仔魚を仮想環境に置き、仔魚の尾の運動に応じて視覚刺激を変化させる閉ループ型の実験系も開発され<ref name=Ahrens2012 />、全脳イメージングに実装されている。これにより、行動によって生じた感覚入力のずれをアップデートすることが可能となった。また近年では、自由遊泳する仔魚の動きを追跡しながらイメージングを行う顕微鏡が開発され、自由行動下においても仔魚の全脳神経活動を記録することが可能となっている<ref name=Kim2017><pubmed>28892088</pubmed></ref>。

== 神経回路の構造解析とデジタル脳アトラス ==

　機能イメージングと並行して、神経回路の解剖学的構造を網羅的に記載する研究も進められている。蛍光標識した単一神経細胞の軸索・樹状突起投射を三次元的に再構築し、標準脳座標系に登録することで、神経細胞の形態および投射パターンを網羅的に記載する試みが行われている<ref name=Kunst2019><pubmed>31147152</pubmed></ref>。さらに、遺伝子発現、細胞形態、脳領域の解剖学定義を統合したデジタル脳アトラス（下記「外部リンク」を参照）の構築が進められている。これらは一般に公開されており、単一細胞レベルの遺伝子発現地図と神経細胞の形態・投射情報を統合することにより、神経細胞タイプを分子と形態の両面から定義することが可能となっている<ref name=Shainer2023><pubmed>36812331</pubmed></ref>。

　さらに近年では、電子顕微鏡画像データを三次元的に再構築することで、[[シナプス]]レベルの神経回路を網羅的に解析する[[コネクトーム]]研究も進展している<ref name=Svara2022><pubmed>36280717</pubmed></ref><ref name=Petkova2025>Petkova MD, et al. A connectomic resource for neural cataloguing and circuit dissection of the larval zebrafish brain. bioRxiv. 2025. doi:10.1101/2025.06.10.658982.</ref>。

== 疾患モデルと創薬・毒性スクリーニング ==

　ゼブラフィッシュはヒト疾患関連遺伝子の機能解析や疾患モデルの構築にも利用されている。ヒト疾患関連遺伝子の多くにはゼブラフィッシュにおける相同遺伝子が存在し、遺伝子編集によって変異体を作製することで、[[てんかん]]、[[自閉症スペクトラム障害]]、[[統合失調症]]などの神経・精神疾患や、[[パーキンソン病]]、[[アルツハイマー病]]などの[[神経変性疾患]]に関連する表現型を解析することができる<ref name=Chia2022><pubmed>36311026</pubmed></ref><ref name=Sakai2018><pubmed>30210288</pubmed></ref>。

　また、多数の胚・仔魚を容易に得られることから、ゼブラフィッシュは化合物を用いた大規模スクリーニングにも適している。96ウェルプレートなどのマルチウェルプレートを用いることで、多数の個体を同時に解析することが可能であり、化合物を飼育水中に添加することで、行動解析や蛍光イメージングなどを指標とした効率的なスクリーニングを実施できる。この特性を利用して、神経発達障害、てんかん、神経変性疾患などを対象とした薬剤候補化合物の探索に加え、発生毒性や神経毒性などの安全性評価にも利用されている<ref name=MacRae2015><pubmed>26361349</pubmed></ref>。

== 中枢神経系の高い再生能力 ==

　成体哺乳類の中枢神経系が損傷後に再生しにくいのに対し、ゼブラフィッシュは、成魚においても脳や脊髄の損傷後に神経細胞や神経回路を再構築し、機能を回復する高い再生能力を有している。損傷部位では、[[放射状グリア]]（radial glia）が幹細胞として機能し、新たなニューロンを産生するとともに、既存の神経回路へと統合することが知られている。この再生メカニズムを解析することは、再生医療や神経保護・修復技術の開発に向けた基礎研究モデルとして注目されている<ref name=Cigliola2020><pubmed>32461216</pubmed></ref><ref name=Cellini2025><pubmed>40307837</pubmed></ref>。

== ダニオネラ属：ゼブラフィッシュを補完する魚類モデル ==

　ダニオネラ（''Danionella''）は、コイ科ダニオ亜科に属する小型淡水魚の属であり、ゼブラフィッシュに近縁な分類群である。ダニオネラ属の魚類は、成魚でも体長10–15 mm程度と極めて小型であり、脊椎動物における幼形成熟（progenesis）の中でも極端な例の一つとされる。幼形成熟とは、体の大部分が十分に発達するよりも早い段階で生殖機能が成熟する現象を指す。この発生様式により、ダニオネラは成魚においても仔魚期に見られる高い透明性を維持し、成体の脳を生きた状態で光学的に観察できるという、ゼブラフィッシュにはない利点を有する。

　神経科学研究において特に注目されているのが、''Danionella cerebrum''と呼ばれる種である<ref name=Wang2026><pubmed>42607648</pubmed></ref><ref name=Ando2024>安藤康史・菊池和．透明魚ダニオネラ 生命科学研究の新たな生体イメージングモデル動物．''生体の科学'' 75(4):369–374, 2024. doi:10.11477/mf.2425201885.</ref>。本種は、成体でも体長約12 mmと極めて小型で、脳サイズも既知の成体脊椎動物の中で最小クラスである。2018年頃の初期の研究では、研究用個体群が当初''D. translucida''と記載されていたが、その後、詳細な分類学的解析によって別種である''D. cerebrum''として同定されたという経緯がある<ref name=Britz2021><pubmed>34556691</pubmed></ref>。''D. cerebrum''は遺伝学的操作にも適しており、CRISPR-Cas9によるゲノム編集やTol2トランスポゾンを用いたトランスジェネシスの手法が確立されている<ref name=Schulze2018><pubmed>30323353</pubmed></ref>。このように、ダニオネラはゼブラフィッシュと同様の遺伝学的・光学的手法を利用できる一方、成体における小型性と透明性という独自の特徴を有することから、成体脊椎動物の脳を全脳・一細胞レベルで解析するための新たなモデル動物として期待されている。

== 今後の展望 ==

　近年のゼブラフィッシュ研究では、遺伝学、単一細胞解析、全脳イメージング、コネクトミクス、行動解析を統合する方向に発展している。単一細胞RNAシーケンスによる細胞タイプの同定、脳アトラスによる空間情報、神経活動イメージングによる機能情報を統合することで、「どの細胞が、どこに存在し、どの遺伝子を発現し、どの神経細胞と結合し、どの行動に関与するか」を一つの枠組みで解析することが可能になりつつある。

　また、電子顕微鏡解析から得られたコネクトームを人工ニューラルネットワークの構造的制約として組み込み、実際の神経接続パターンに基づくモデルを用いて視覚処理などの計算タスクを再現・シミュレーションするといったアプローチも発展すると考えられる<ref name=Lappalainen2024><pubmed>39261740</pubmed></ref>。また、行動追跡により高精度に定量化した運動パターンと全脳の神経活動パターンを多次元空間上で対応づけることで、行動状態と神経状態の関係を定量化し、行動を生み出す神経回路のダイナミクスを明らかにすることも期待される。今後は、こうした多階層の実験データと計算モデルを統合することで、神経回路の構造・機能と行動の因果関係をより包括的に理解することが可能になると考えられる。

== 外部リンク ==

* [https://zfin.org/ ZFIN]
* [https://mapzebrain.org/ MapZebrain]
* [https://vis.arc.vt.edu/projects/zbb/ Zebrafish Brain Browser]
* [https://zebrafishatlas.zib.de/lm FishExplorer]
* [https://zebrafish.cn/ ZExplorer]

== 参考文献 ==

<references />