モノアシルグリセロールリパーゼ - 版の履歴

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	MGLはその後[[カンナビノイド]]研究において注目を集めることとなった（'''図2'''）。カンナビノイド（cannabinoid）とは、[[大麻]]（学名は''Cannabis sativa''）に含まれる精神神経作用を引き起こす物質およびその類似物質を合わせた総称名である。1964年に大麻に含まれる有効成分として[[Δ9-テトラヒドロカンナビノール]] ([[Δ9-tetrahydrocannabinol]]; THC）が同定され、その受容体（[[カンナビノイド受容体]]）として1990年に[[CB1受容体]]、1993年には[[CB2受容体]]の[[アミノ酸]]配列が特定された。1992年にはカンナビノイド受容体の内因性リガンド（[[エンドカンナビノイド]]）として[[アナンダミド]]（N-arachidonoylethanolamide）が、1995年には[[2-アラキドニルグリセロール]] ([[2-arachidonylglycerol]]; 2-AG）が発見された。その後、エンドカンナビノイドの生合成および分解に関与する酵素群（'''図2'''）が次々と特定され、それと並行しエンドカンナビノイドの生理的役割（カンナビノイド系）が次第に明らかとなった<ref name=Kano2009><pubmed>19126760</pubmed></ref>。この一連の研究の中で、2-AGの分解酵素としてのMGLの重要性が報告された。[[w:Daniele Piomelli\|Piomelli]]らのグループが、2002年にラットのMGLのアミノ酸配列を特定するとともに、MGLが2-AGの分解の主要な酵素であることを証明した<ref name=Dinh2002><pubmed>12136125</pubmed></ref>。		MGLはその後[[カンナビノイド]]研究において注目を集めることとなった（'''図2'''）。カンナビノイド（cannabinoid）とは、[[大麻]]（学名は''Cannabis sativa''）に含まれる精神神経作用を引き起こす物質およびその類似物質を合わせた総称名である。1964年に大麻に含まれる有効成分として[[Δ9-テトラヒドロカンナビノール]] ([[Δ9-tetrahydrocannabinol]]; THC）が同定され、その受容体（[[カンナビノイド受容体]]）として1990年に[[CB1受容体]]、1993年には[[CB2受容体]]の[[アミノ酸]]配列が特定された。1992年にはカンナビノイド受容体の内因性リガンド（[[エンドカンナビノイド]]）として[[アナンダミド]]（N-arachidonoylethanolamide）が、1995年には[[2-アラキドニルグリセロール]] ([[2-arachidonylglycerol]]; 2-AG）が発見された。その後、エンドカンナビノイドの生合成および分解に関与する酵素群（'''図2'''）が次々と特定され、それと並行しエンドカンナビノイドの生理的役割（カンナビノイド系）が次第に明らかとなった<ref name=Kano2009><pubmed>19126760</pubmed></ref>。この一連の研究の中で、2-AGの分解酵素としてのMGLの重要性が報告された。[[w:Daniele Piomelli\|Piomelli]]らのグループが、2002年にラットのMGLのアミノ酸配列を特定するとともに、MGLが2-AGの分解の主要な酵素であることを証明した<ref name=Dinh2002><pubmed>12136125</pubmed></ref>。

	MGLはさらに[[プロスタグランジン]]の生合成にも関与することが報告され、注目を集めた（'''図3'''）。プロスタグランジンの生合成に必要な遊離[[アラキドン酸]]を供給する経路としては、それまでは細胞膜リン脂質から脂肪酸鎖を遊離させる[[ホスホリパーゼA2#細胞質型PLA2ファミリー\|細胞質型ホスホリパーゼA2]]（[[cPLA2]]）を介する経路が重要と考えられていた。しかし2011年にNomuraと[[wj:ベンジャミン・クラヴァット\|Cravatt]]らは、脳においては遊離アラキドン酸の産生にはPLA2よりもMGLを介した経路が主に働いていることを明らかにした<ref name=Nomura2011><pubmed>22021672</pubmed></ref>。		MGLはさらに[[プロスタグランジン]]の生合成にも関与することが報告され、注目を集めた（'''図3'''）。プロスタグランジンの生合成に必要な遊離[[アラキドン酸]]を供給する経路としては、それまでは細胞膜リン脂質から脂肪酸鎖を遊離させる[[ホスホリパーゼA2#細胞質型PLA2ファミリー\|細胞質型ホスホリパーゼA2]]（[[ホスホリパーゼA2#細胞質型PLA2ファミリー\|cPLA2]]）を介する経路が重要と考えられていた。しかし2011年にNomuraと[[wj:ベンジャミン・クラヴァット\|Cravatt]]らは、脳においては遊離アラキドン酸の産生にはPLA2よりもMGLを介した経路が主に働いていることを明らかにした<ref name=Nomura2011><pubmed>22021672</pubmed></ref>。

	このようにMGLは脂肪の分解のみならずエンドカンナビノイド2-AGの分解やプロスタグランジンの生合成にも関与している。よってMGLに作用する薬剤はカンナビノイド系およびプロスタグランジ系を介して生理機能や病態生理機能に影響をおよぼす可能性があり、MGLをターゲットとした治療薬の開発が進められている<ref name=Chen2023><pubmed>36966972</pubmed></ref><ref name=Maccarrone2023><pubmed>37164640</pubmed></ref>。		このようにMGLは脂肪の分解のみならずエンドカンナビノイド2-AGの分解やプロスタグランジンの生合成にも関与している。よってMGLに作用する薬剤はカンナビノイド系およびプロスタグランジ系を介して生理機能や病態生理機能に影響をおよぼす可能性があり、MGLをターゲットとした治療薬の開発が進められている<ref name=Chen2023><pubmed>36966972</pubmed></ref><ref name=Maccarrone2023><pubmed>37164640</pubmed></ref>。

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2025-04-09T14:42:07Z

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	MGLはその後[[カンナビノイド]]研究において注目を集めることとなった（'''図2'''）。カンナビノイド（cannabinoid）とは、[[大麻]]（学名は''Cannabis sativa''）に含まれる精神神経作用を引き起こす物質およびその類似物質を合わせた総称名である。1964年に大麻に含まれる有効成分として[[Δ9-テトラヒドロカンナビノール]] ([[Δ9-tetrahydrocannabinol]]; THC）が同定され、その受容体（[[カンナビノイド受容体]]）として1990年に[[CB1受容体]]、1993年には[[CB2受容体]]の[[アミノ酸]]配列が特定された。1992年にはカンナビノイド受容体の内因性リガンド（[[エンドカンナビノイド]]）として[[アナンダミド]]（N-arachidonoylethanolamide）が、1995年には[[2-アラキドニルグリセロール]] ([[2-arachidonylglycerol]]; 2-AG）が発見された。その後、エンドカンナビノイドの生合成および分解に関与する酵素群（'''図2'''）が次々と特定され、それと並行しエンドカンナビノイドの生理的役割（カンナビノイド系）が次第に明らかとなった<ref name=Kano2009><pubmed>19126760</pubmed></ref>。この一連の研究の中で、2-AGの分解酵素としてのMGLの重要性が報告された。[[w:Daniele Piomelli\|Piomelli]]らのグループが、2002年にラットのMGLのアミノ酸配列を特定するとともに、MGLが2-AGの分解の主要な酵素であることを証明した<ref name=Dinh2002><pubmed>12136125</pubmed></ref>。		MGLはその後[[カンナビノイド]]研究において注目を集めることとなった（'''図2'''）。カンナビノイド（cannabinoid）とは、[[大麻]]（学名は''Cannabis sativa''）に含まれる精神神経作用を引き起こす物質およびその類似物質を合わせた総称名である。1964年に大麻に含まれる有効成分として[[Δ9-テトラヒドロカンナビノール]] ([[Δ9-tetrahydrocannabinol]]; THC）が同定され、その受容体（[[カンナビノイド受容体]]）として1990年に[[CB1受容体]]、1993年には[[CB2受容体]]の[[アミノ酸]]配列が特定された。1992年にはカンナビノイド受容体の内因性リガンド（[[エンドカンナビノイド]]）として[[アナンダミド]]（N-arachidonoylethanolamide）が、1995年には[[2-アラキドニルグリセロール]] ([[2-arachidonylglycerol]]; 2-AG）が発見された。その後、エンドカンナビノイドの生合成および分解に関与する酵素群（'''図2'''）が次々と特定され、それと並行しエンドカンナビノイドの生理的役割（カンナビノイド系）が次第に明らかとなった<ref name=Kano2009><pubmed>19126760</pubmed></ref>。この一連の研究の中で、2-AGの分解酵素としてのMGLの重要性が報告された。[[w:Daniele Piomelli\|Piomelli]]らのグループが、2002年にラットのMGLのアミノ酸配列を特定するとともに、MGLが2-AGの分解の主要な酵素であることを証明した<ref name=Dinh2002><pubmed>12136125</pubmed></ref>。

	MGLはさらに[[プロスタグランジン]]の生合成にも関与することが報告され、注目を集めた（'''図3'''）。プロスタグランジンの生合成に必要な遊離[[アラキドン酸]]~~を供給する経路としては、それまでは細胞膜リン脂質から脂肪酸鎖を遊離させる細胞質型~~[[ホスホリパーゼA2]]（[[cPLA2]]）を介する経路が重要と考えられていた。しかし2011年にNomuraと[[wj:ベンジャミン・クラヴァット\|Cravatt]]らは、脳においては遊離アラキドン酸の産生にはPLA2よりもMGLを介した経路が主に働いていることを明らかにした<ref name=Nomura2011><pubmed>22021672</pubmed></ref>。		MGLはさらに[[プロスタグランジン]]の生合成にも関与することが報告され、注目を集めた（'''図3'''）。プロスタグランジンの生合成に必要な遊離[[アラキドン酸]]を供給する経路としては、それまでは細胞膜リン脂質から脂肪酸鎖を遊離させる[[ホスホリパーゼA2#細胞質型PLA2ファミリー\|細胞質型ホスホリパーゼA2]]（[[cPLA2]]）を介する経路が重要と考えられていた。しかし2011年にNomuraと[[wj:ベンジャミン・クラヴァット\|Cravatt]]らは、脳においては遊離アラキドン酸の産生にはPLA2よりもMGLを介した経路が主に働いていることを明らかにした<ref name=Nomura2011><pubmed>22021672</pubmed></ref>。

	このようにMGLは脂肪の分解のみならずエンドカンナビノイド2-AGの分解やプロスタグランジンの生合成にも関与している。よってMGLに作用する薬剤はカンナビノイド系およびプロスタグランジ系を介して生理機能や病態生理機能に影響をおよぼす可能性があり、MGLをターゲットとした治療薬の開発が進められている<ref name=Chen2023><pubmed>36966972</pubmed></ref><ref name=Maccarrone2023><pubmed>37164640</pubmed></ref>。		このようにMGLは脂肪の分解のみならずエンドカンナビノイド2-AGの分解やプロスタグランジンの生合成にも関与している。よってMGLに作用する薬剤はカンナビノイド系およびプロスタグランジ系を介して生理機能や病態生理機能に影響をおよぼす可能性があり、MGLをターゲットとした治療薬の開発が進められている<ref name=Chen2023><pubmed>36966972</pubmed></ref><ref name=Maccarrone2023><pubmed>37164640</pubmed></ref>。

2025年4月9日 (水) 14:36にWikiSysopによる

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2025年4月8日 (火) 12:43にWikiSysopによる

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	~~少作隆子（北陸大学~~ 医療保健学部 ~~理学療法学科）~~		<div align="right">
	~~橋本谷祐輝（同志社大学大学院~~ 脳科学研究科 ~~シナプス分子機能部門）~~		<font size="+1">[http://researchmap.jp/read0009649 少作隆子]</font><br>
			''北陸大学医療保健学部理学療法学科''<br>
			<font size="+1">[http://researchmap.jp/phsyiol2 橋本谷祐輝]</font><br>
			''同志社大学大学院脳科学研究科シナプス分子機能部門''<br>
			DOI：<selfdoi />　原稿受付日：2025年3月10日　原稿完成日：2025年4月8日<br>
			担当編集委員：[http://researchmap.jp/read0192882 古屋敷智之]（神戸大学大学院医学研究科・医学部薬理学分野）<br>
			</div>

	英：monoacylglycerol lipase		英：monoacylglycerol lipase
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	[[ファイル:Shosaku MGL Fig2.png\|サムネイル\|'''図2. 2-AGの生合成経路およびMGLによる分解''']]		[[ファイル:Shosaku MGL Fig2.png\|サムネイル\|'''図2. 2-AGの生合成経路およびMGLによる分解''']]
	[[ファイル:Shosaku MGL Fig3.png\|サムネイル\|'''図3. プロスタグランジンの生合成''']]		[[ファイル:Shosaku MGL Fig3.png\|サムネイル\|'''図3. プロスタグランジンの生合成''']]
	モノアシルグリセロールリパーゼの研究は、最初は脂肪の分解に必要な酵素として注目されたことに始まる（'''図1'''）。空腹時には動物はエネルギー源として脂肪を利用する。この時に脂肪組織ではトリアシルグリセロール（triacylglycerol：TG）の脂肪酸が切り離されジアシルグルセロール（diacylglycerol：DG）、モノアシルグリセロール（monoacylglycerol; MG）となり、最終的にはグリセロールと脂肪酸にまで分解される。この最終段階に働くMGを分解する酵素の同定が試みられた。Tornqvistらは1976年にラットの脂肪組織よりMGを加水分解する酵素MGLの抽出に成功した<ref name=Tornqvist1976><pubmed>1249056</pubmed></ref>。彼らはSDSゲル電気泳動の結果より分子量は32900と推定し、基質特異性としては、TGやDGには作用せずMG特異性が高いこと、MGであれば脂肪酸の結合位置がグリセロールのどの位置であっても分解できることを報告した。同グループは1997年にマウス脂肪組織のcDNAライブラリーからMGLをクローニングし、そのアミノ酸配列を特定した<ref name=Karlsson1997><pubmed>9341166</pubmed></ref>。また、MGLのmRNAの発現を調べ、MGLは脂肪組織のみならず脳を含む全身の組織で普遍的に発現されている酵素であることを明らかにした。同グループは2001年にはヒトのMGLのアミノ酸配列の特定にも成功した<ref name=Karlsson2001><pubmed>11470505</pubmed></ref>。		モノアシルグリセロールリパーゼの研究は、最初は脂肪の分解に必要な酵素として注目されたことに始まる（'''図1'''）。空腹時には動物はエネルギー源として脂肪を利用する。この時に脂肪組織ではトリアシルグリセロール（triacylglycerol; TG）の脂肪酸が切り離されジアシルグルセロール（diacylglycerol; DG）、モノアシルグリセロール（monoacylglycerol; MG）となり、最終的にはグリセロールと脂肪酸にまで分解される。この最終段階に働くMGを分解する酵素の同定が試みられた。Tornqvistらは1976年にラットの脂肪組織よりMGを加水分解する酵素MGLの抽出に成功した<ref name=Tornqvist1976><pubmed>1249056</pubmed></ref>。彼らはSDSゲル電気泳動の結果より分子量は32900と推定し、基質特異性としては、TGやDGには作用せずMG特異性が高いこと、MGであれば脂肪酸の結合位置がグリセロールのどの位置であっても分解できることを報告した。同グループは1997年にマウス脂肪組織のcDNAライブラリーからMGLをクローニングし、そのアミノ酸配列を特定した<ref name=Karlsson1997><pubmed>9341166</pubmed></ref>。また、MGLのmRNAの発現を調べ、MGLは脂肪組織のみならず脳を含む全身の組織で普遍的に発現されている酵素であることを明らかにした。同グループは2001年にはヒトのMGLのアミノ酸配列の特定にも成功した<ref name=Karlsson2001><pubmed>11470505</pubmed></ref>。

	MGLはその後カンナビノイド研究において注目を集めることとなった（'''図2'''）。カンナビノイド（cannabinoid）とは、大麻（学名はCannabis sativa）に含まれる精神神経作用を引き起こす物質およびその類似物質を合わせた総称名である。1964年に大麻に含まれる有効成分としてTHC（Δ9-tetrahydrocannabinol）が同定され、THCが結合する受容体（カンナビノイド受容体）として1990年にCB1受容体、1993年にはCB2受容体のアミノ酸配列が特定された。1992年にはカンナビノイド受容体の内因性リガンド（エンドカンナビノイド）としてアナンダミド（N-arachidonoylethanolamide）が、1995年には2-AG（2-arachidonylglycerol）が発見された。その後、エンドカンナビノイドの生合成および分解に関与する酵素群（'''図2'''）が次々と特定され、それと並行しエンドカンナビノイドの生理的役割（カンナビノイド系）が次第に明らかとなった<ref name=Kano2009><pubmed>19126760</pubmed></ref>。この一連の研究の中で、2-AGの分解酵素としてのMGLの重要性が報告された。Piomelliらのグループが、2002年にラットのMGLのアミノ酸配列を特定するとともに、MGLが2-AGの分解の主要な酵素であることを証明した<ref name=Dinh2002><pubmed>12136125</pubmed></ref>。		MGLはその後カンナビノイド研究において注目を集めることとなった（'''図2'''）。カンナビノイド（cannabinoid）とは、大麻（学名はCannabis sativa）に含まれる精神神経作用を引き起こす物質およびその類似物質を合わせた総称名である。1964年に大麻に含まれる有効成分としてTHC（Δ9-tetrahydrocannabinol）が同定され、THCが結合する受容体（カンナビノイド受容体）として1990年にCB1受容体、1993年にはCB2受容体のアミノ酸配列が特定された。1992年にはカンナビノイド受容体の内因性リガンド（エンドカンナビノイド）としてアナンダミド（N-arachidonoylethanolamide）が、1995年には2-AG（2-arachidonylglycerol）が発見された。その後、エンドカンナビノイドの生合成および分解に関与する酵素群（'''図2'''）が次々と特定され、それと並行しエンドカンナビノイドの生理的役割（カンナビノイド系）が次第に明らかとなった<ref name=Kano2009><pubmed>19126760</pubmed></ref>。この一連の研究の中で、2-AGの分解酵素としてのMGLの重要性が報告された。Piomelliらのグループが、2002年にラットのMGLのアミノ酸配列を特定するとともに、MGLが2-AGの分解の主要な酵素であることを証明した<ref name=Dinh2002><pubmed>12136125</pubmed></ref>。
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	=== 個体での機能 ===		=== 個体での機能 ===
	==== 細胞に蓄積された脂肪の分解 ====		==== 細胞に蓄積された脂肪の分解 ====
	脂肪細胞など細胞内にTGを貯蔵している細胞においては、空腹時などにはTGが分解されDGを経てＭＧが蓄積する。MGLはそれをさらに脂肪酸とグリセロールにまで分解する。		脂肪細胞など細胞内にTGを貯蔵している細胞においては、空腹時などにはTGが分解されDGを経てMGが蓄積する。MGLはそれをさらに脂肪酸とグリセロールにまで分解する。

	[[ファイル:Shosaku MGL Fig4.png\|サムネイル\|'''図4. 2-AGによるシナプス伝達調節''']]		[[ファイル:Shosaku MGL Fig4.png\|サムネイル\|'''図4. 2-AGによるシナプス伝達調節''']]

WikiSysop: /* エンドカンナビノイド2-AGの分解 */

2025-04-08T12:37:31Z

エンドカンナビノイド2-AGの分解

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	脂肪細胞など細胞内にTGを貯蔵している細胞においては、空腹時などにはTGが分解されDGを経てＭＧが蓄積する。MGLはそれをさらに脂肪酸とグリセロールにまで分解する。		脂肪細胞など細胞内にTGを貯蔵している細胞においては、空腹時などにはTGが分解されDGを経てＭＧが蓄積する。MGLはそれをさらに脂肪酸とグリセロールにまで分解する。

			[[ファイル:Shosaku MGL Fig4.png\|サムネイル\|'''図4. 2-AGによるシナプス伝達調節''']]
	==== エンドカンナビノイド2-AGの分解 ====		==== エンドカンナビノイド2-AGの分解 ====
	神経活動により細胞内Ca2+濃度上昇やGq/11共役型受容体の活性化が起こると、それぞれ単独または両者の相乗効果により2-AGが生成され細胞外に放出される<ref name=Hashimotodani2005><pubmed>15664177</pubmed></ref>（'''図4'''）。生合成に関与する酵素であるホスホリパーゼCβ（PLCβ）やジアシルグリセロールリパーゼα（DGLα）はシナプス後側にあり、2-AGはシナプス後ニューロンより放出される。放出された2-AGはシナプス前終末のCB1受容体に結合し神経伝達物質の放出を抑制する。このような2-AGによるシナプス伝達調節機構は脳の多くの領域でみられ、記憶・学習、不安、痛みなど様々な脳機能に関与している。2-AGには、伝達物質の放出抑制およびその他のメカニズムを介して、脳を保護する作用もある。さらに、2-AGはCB2受容体にも作用する。CB2受容体は主にマクロファージなどの免疫系の細胞に多く発現されており、2-AGはCB2受容体を介して免疫系にも影響をおよぼす。		神経活動により細胞内Ca2+濃度上昇やGq/11共役型受容体の活性化が起こると、それぞれ単独または両者の相乗効果により2-AGが生成され細胞外に放出される<ref name=Hashimotodani2005><pubmed>15664177</pubmed></ref>（'''図4'''）。生合成に関与する酵素であるホスホリパーゼCβ（PLCβ）やジアシルグリセロールリパーゼα（DGLα）はシナプス後側にあり、2-AGはシナプス後ニューロンより放出される。放出された2-AGはシナプス前終末のCB1受容体に結合し神経伝達物質の放出を抑制する。このような2-AGによるシナプス伝達調節機構は脳の多くの領域でみられ、記憶・学習、不安、痛みなど様々な脳機能に関与している。2-AGには、伝達物質の放出抑制およびその他のメカニズムを介して、脳を保護する作用もある。さらに、2-AGはCB2受容体にも作用する。CB2受容体は主にマクロファージなどの免疫系の細胞に多く発現されており、2-AGはCB2受容体を介して免疫系にも影響をおよぼす。

WikiSysop: /* イントロダクション */

2025-04-08T12:36:35Z

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	== イントロダクション ==		== イントロダクション ==
			[[ファイル:Shosaku MGL Fig1.png\|サムネイル\|'''図1. 脂肪組織での脂肪分解経路''']]
			[[ファイル:Shosaku MGL Fig2.png\|サムネイル\|'''図2. 2-AGの生合成経路およびMGLによる分解''']]
			[[ファイル:Shosaku MGL Fig3.png\|サムネイル\|'''図3. プロスタグランジンの生合成''']]
	モノアシルグリセロールリパーゼの研究は、最初は脂肪の分解に必要な酵素として注目されたことに始まる（'''図1'''）。空腹時には動物はエネルギー源として脂肪を利用する。この時に脂肪組織ではトリアシルグリセロール（triacylglycerol：TG）の脂肪酸が切り離されジアシルグルセロール（diacylglycerol：DG）、モノアシルグリセロール（monoacylglycerol; MG）となり、最終的にはグリセロールと脂肪酸にまで分解される。この最終段階に働くMGを分解する酵素の同定が試みられた。Tornqvistらは1976年にラットの脂肪組織よりMGを加水分解する酵素MGLの抽出に成功した<ref name=Tornqvist1976><pubmed>1249056</pubmed></ref>。彼らはSDSゲル電気泳動の結果より分子量は32900と推定し、基質特異性としては、TGやDGには作用せずMG特異性が高いこと、MGであれば脂肪酸の結合位置がグリセロールのどの位置であっても分解できることを報告した。同グループは1997年にマウス脂肪組織のcDNAライブラリーからMGLをクローニングし、そのアミノ酸配列を特定した<ref name=Karlsson1997><pubmed>9341166</pubmed></ref>。また、MGLのmRNAの発現を調べ、MGLは脂肪組織のみならず脳を含む全身の組織で普遍的に発現されている酵素であることを明らかにした。同グループは2001年にはヒトのMGLのアミノ酸配列の特定にも成功した<ref name=Karlsson2001><pubmed>11470505</pubmed></ref>。		モノアシルグリセロールリパーゼの研究は、最初は脂肪の分解に必要な酵素として注目されたことに始まる（'''図1'''）。空腹時には動物はエネルギー源として脂肪を利用する。この時に脂肪組織ではトリアシルグリセロール（triacylglycerol：TG）の脂肪酸が切り離されジアシルグルセロール（diacylglycerol：DG）、モノアシルグリセロール（monoacylglycerol; MG）となり、最終的にはグリセロールと脂肪酸にまで分解される。この最終段階に働くMGを分解する酵素の同定が試みられた。Tornqvistらは1976年にラットの脂肪組織よりMGを加水分解する酵素MGLの抽出に成功した<ref name=Tornqvist1976><pubmed>1249056</pubmed></ref>。彼らはSDSゲル電気泳動の結果より分子量は32900と推定し、基質特異性としては、TGやDGには作用せずMG特異性が高いこと、MGであれば脂肪酸の結合位置がグリセロールのどの位置であっても分解できることを報告した。同グループは1997年にマウス脂肪組織のcDNAライブラリーからMGLをクローニングし、そのアミノ酸配列を特定した<ref name=Karlsson1997><pubmed>9341166</pubmed></ref>。また、MGLのmRNAの発現を調べ、MGLは脂肪組織のみならず脳を含む全身の組織で普遍的に発現されている酵素であることを明らかにした。同グループは2001年にはヒトのMGLのアミノ酸配列の特定にも成功した<ref name=Karlsson2001><pubmed>11470505</pubmed></ref>。

2025年4月8日 (火) 12:28にWikiSysopによる

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	英：monoacylglycerol lipase		英：monoacylglycerol lipase
	{{box\|text=　モノアシルグリセロールリパーゼ（MGL）は、モノアシルグリセロールの長鎖脂肪酸を加水分解する酵素である。最初は、脂肪の分解に必要な酵素として注目された。その後、神経調節因子として働くエンドカンナビノイドの1つ2-AG（2-arachidonylglycerol）を分解する主要な酵素であることが判明した。2-AGはシナプス後ニューロンから放出され、シナプス前終末のCB1受容体に作用し神経伝達物質の放出を抑制する。このようなエンドカンナビノイドを介するシナプス伝達の調節（カンナビノイド系）は記憶・学習、不安、痛みなど様々な脳機能に関与している。また、MGLが2-AGを分解するとアラキドン酸が放出されることから、プロスタグランジンの生合成にも関与することが明らかとなった。よって、MGLはカンナビノイド系およびプロスタグランジ系の働きに影響をおよぼす可能性があり、MGLをターゲットとした治療薬の開発が進められている。}}		英略語：MGL
			{{box\|text=　モノアシルグリセロールリパーゼは、モノアシルグリセロールの長鎖脂肪酸を加水分解する酵素である。最初は、脂肪の分解に必要な酵素として注目された。その後、神経調節因子として働くエンドカンナビノイドの1つ2-AG（2-arachidonylglycerol）を分解する主要な酵素であることが判明した。2-AGはシナプス後ニューロンから放出され、シナプス前終末のCB1受容体に作用し神経伝達物質の放出を抑制する。このようなエンドカンナビノイドを介するシナプス伝達の調節（カンナビノイド系）は記憶・学習、不安、痛みなど様々な脳機能に関与している。また、MGLが2-AGを分解するとアラキドン酸が放出されることから、プロスタグランジンの生合成にも関与することが明らかとなった。よって、MGLはカンナビノイド系およびプロスタグランジ系の働きに影響をおよぼす可能性があり、MGLをターゲットとした治療薬の開発が進められている。}}

	== イントロダクション ==		== イントロダクション ==
	~~モノアシルグリセロールリパーゼの研究は、最初は脂肪の分解に必要な酵素として注目された（~~'''図1'''）。空腹時には動物はエネルギー源として脂肪を利用する。この時に脂肪組織ではトリアシルグリセロール（triacylglycerol：TG）の脂肪酸が切り離されジアシルグルセロール（diacylglycerol：DG）、モノアシルグリセロール（monoacylglycerol; MG）となり、最終的にはグリセロールと脂肪酸にまで分解される。この最終段階に働くMGを分解する酵素の同定が試みられた。Tornqvistらは1976年にラットの脂肪組織よりMGを加水分解する酵素MGLの抽出に成功した<ref name=Tornqvist1976><pubmed>1249056</pubmed></ref>。彼らはSDSゲル電気泳動の結果より分子量は32900と推定し、基質特異性としては、TGやDGには作用せずMG特異性が高いこと、MGであれば脂肪酸の結合位置がグリセロールのどの位置であっても分解できることを報告した。同グループは1997年にマウス脂肪組織のcDNAライブラリーからMGLをクローニングし、そのアミノ酸配列を特定した<ref name=Karlsson1997><pubmed>9341166</pubmed></ref>。また、MGLのmRNAの発現を調べ、MGLは脂肪組織のみならず脳を含む全身の組織で普遍的に発現されている酵素であることを明らかにした。同グループは2001年にはヒトのMGLのアミノ酸配列の特定にも成功した<ref name=Karlsson2001><pubmed>11470505</pubmed></ref>。		モノアシルグリセロールリパーゼの研究は、最初は脂肪の分解に必要な酵素として注目されたことに始まる（'''図1'''）。空腹時には動物はエネルギー源として脂肪を利用する。この時に脂肪組織ではトリアシルグリセロール（triacylglycerol：TG）の脂肪酸が切り離されジアシルグルセロール（diacylglycerol：DG）、モノアシルグリセロール（monoacylglycerol; MG）となり、最終的にはグリセロールと脂肪酸にまで分解される。この最終段階に働くMGを分解する酵素の同定が試みられた。Tornqvistらは1976年にラットの脂肪組織よりMGを加水分解する酵素MGLの抽出に成功した<ref name=Tornqvist1976><pubmed>1249056</pubmed></ref>。彼らはSDSゲル電気泳動の結果より分子量は32900と推定し、基質特異性としては、TGやDGには作用せずMG特異性が高いこと、MGであれば脂肪酸の結合位置がグリセロールのどの位置であっても分解できることを報告した。同グループは1997年にマウス脂肪組織のcDNAライブラリーからMGLをクローニングし、そのアミノ酸配列を特定した<ref name=Karlsson1997><pubmed>9341166</pubmed></ref>。また、MGLのmRNAの発現を調べ、MGLは脂肪組織のみならず脳を含む全身の組織で普遍的に発現されている酵素であることを明らかにした。同グループは2001年にはヒトのMGLのアミノ酸配列の特定にも成功した<ref name=Karlsson2001><pubmed>11470505</pubmed></ref>。

	MGLはその後カンナビノイド研究において注目を集めることとなった（'''図2'''）。カンナビノイド（cannabinoid）とは、大麻（学名はCannabis sativa）に含まれる精神神経作用を引き起こす物質およびその類似物質を合わせた総称名である。1964年に大麻に含まれる有効成分としてTHC（Δ9-tetrahydrocannabinol）が同定され、THCが結合する受容体（カンナビノイド受容体）として1990年にCB1受容体、1993年にはCB2受容体のアミノ酸配列が特定された。1992年にはカンナビノイド受容体の内因性リガンド（エンドカンナビノイド）としてアナンダミド（N-arachidonoylethanolamide）が、1995年には2-AG（2-arachidonylglycerol）が発見された。その後、エンドカンナビノイドの生合成および分解に関与する酵素群（'''図2'''）が次々と特定され、それと並行しエンドカンナビノイドの生理的役割（カンナビノイド系）が次第に明らかとなった<ref name=Kano2009><pubmed>19126760</pubmed></ref>。この一連の研究の中で、2-AGの分解酵素としてのMGLの重要性が報告された。Piomelliらのグループが、2002年にラットのMGLのアミノ酸配列を特定するとともに、MGLが2-AGの分解の主要な酵素であることを証明した<ref name=Dinh2002><pubmed>12136125</pubmed></ref>。		MGLはその後カンナビノイド研究において注目を集めることとなった（'''図2'''）。カンナビノイド（cannabinoid）とは、大麻（学名はCannabis sativa）に含まれる精神神経作用を引き起こす物質およびその類似物質を合わせた総称名である。1964年に大麻に含まれる有効成分としてTHC（Δ9-tetrahydrocannabinol）が同定され、THCが結合する受容体（カンナビノイド受容体）として1990年にCB1受容体、1993年にはCB2受容体のアミノ酸配列が特定された。1992年にはカンナビノイド受容体の内因性リガンド（エンドカンナビノイド）としてアナンダミド（N-arachidonoylethanolamide）が、1995年には2-AG（2-arachidonylglycerol）が発見された。その後、エンドカンナビノイドの生合成および分解に関与する酵素群（'''図2'''）が次々と特定され、それと並行しエンドカンナビノイドの生理的役割（カンナビノイド系）が次第に明らかとなった<ref name=Kano2009><pubmed>19126760</pubmed></ref>。この一連の研究の中で、2-AGの分解酵素としてのMGLの重要性が報告された。Piomelliらのグループが、2002年にラットのMGLのアミノ酸配列を特定するとともに、MGLが2-AGの分解の主要な酵素であることを証明した<ref name=Dinh2002><pubmed>12136125</pubmed></ref>。
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	* [[アラキドン酸]]		* [[アラキドン酸]]
	* [[プロスタグランジン]]		* [[プロスタグランジン]]
			==参考文献==

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少作隆子（北陸大学医療保健学部理学療法学科）
橋本谷祐輝（同志社大学大学院脳科学研究科シナプス分子機能部門）

【脳科学辞典】
モノアシルグリセロールリパーゼ

【要約】
モノアシルグリセロールリパーゼ（MGL）は、モノアシルグリセロールの長鎖脂肪酸を加水分解する酵素である。最初は、脂肪の分解に必要な酵素として注目された。その後、神経調節因子として働くエンドカンナビノイドの1つ2-AG（2-arachidonylglycerol）を分解する主要な酵素であることが判明した。2-AGはシナプス後ニューロンから放出され、シナプス前終末のCB1受容体に作用し神経伝達物質の放出を抑制する。このようなエンドカンナビノイドを介するシナプス伝達の調節（カンナビノイド系）は記憶・学習、不安、痛みなど様々な脳機能に関与している。また、MGLが2-AGを分解するとアラキドン酸が放出されることから、プロスタグランジンの生合成にも関与することが明らかとなった。よって、MGLはカンナビノイド系およびプロスタグランジ系の働きに影響をおよぼす可能性があり、MGLをターゲットとした治療薬の開発が進められている。

【イントロダクション】
モノアシルグリセロールリパーゼ（monoacylglycerol lipase：MGL）の研究は、最初は脂肪の分解に必要な酵素として注目された（図１）。空腹時には動物はエネルギー源として脂肪を利用する。この時に脂肪組織ではトリアシルグリセロール（triacylglycerol：TG）の脂肪酸が切り離されジアシルグルセロール（diacylglycerol：DG）、モノアシルグリセロール（monoacylglycerol：ＭＧ）となり、最終的にはグリセロールと脂肪酸にまで分解される。この最終段階に働くMGを分解する酵素の同定が試みられた。Tornqvistらは1976年にラットの脂肪組織よりMGを加水分解する酵素MGLの抽出に成功した<ref name=Tornqvist1976><pubmed>1249056</pubmed></ref>。彼らはSDSゲル電気泳動の結果より分子量は32900と推定し、基質特異性としては、TGやDGには作用せずMG特異性が高いこと、MGであれば脂肪酸の結合位置がグリセロールのどの位置であっても分解できることを報告した。同グループは1997年にマウス脂肪組織のcDNAライブラリーからMGLをクローニングし、そのアミノ酸配列を特定した<ref name=Karlsson1997><pubmed>9341166</pubmed></ref>。また、MGLのmRNAの発現を調べ、MGLは脂肪組織のみならず脳を含む全身の組織で普遍的に発現されている酵素であることを明らかにした。同グループは2001年にはヒトのMGLのアミノ酸配列の特定にも成功した<ref name=Karlsson2001><pubmed>11470505</pubmed></ref>。
　MGLはその後カンナビノイド研究において大きな注目を集めることとなった（図２）。カンナビノイド（cannabinoid）とは、大麻（学名はCannabis sativa）に含まれる精神神経作用を引き起こす物質およびその類似物質を合わせた総称名である。1964年に大麻に含まれる有効成分としてTHC（Δ9-tetrahydrocannabinol）が同定され、THCが結合する受容体（カンナビノイド受容体）として1990年にCB1受容体、1993年にはCB2受容体のアミノ酸配列が特定された。1992年にはカンナビノイド受容体の内因性リガンド（エンドカンナビノイド）としてアナンダミド（N-arachidonoylethanolamide）が、1995年には2-AG（2-arachidonylglycerol）が発見された。その後、エンドカンナビノイドの生合成および分解に関与する酵素群（図２）が次々と特定され、それと並行しエンドカンナビノイドの生理的役割（カンナビノイド系）が次第に明らかとなった<ref name=Kano2009><pubmed>19126760</pubmed></ref>。この一連の研究の中で、2-AGの分解酵素としてのMGLの重要性が報告された。Piomelliらのグループが、2002年にラットのMGLのアミノ酸配列を特定するとともに、MGLが2-AGの分解の主要な酵素であることを証明した<ref name=Dinh2002><pubmed>12136125</pubmed></ref>。
MGLはさらにプロスタグランジンの生合成にも関与することが報告され、大きな注目を集めた（図３）。プロスタグランジンの生合成に必要な遊離アラキドン酸を供給する経路としては、それまでは細胞膜リン脂質から脂肪酸鎖を遊離させる細胞質型ホスホリパーゼA2（cPLA2）を介する経路が重要と考えられていた。しかし2011年にNomuraとCravattらは、脳においては遊離アラキドン酸の産生にはPLA2よりもMGLを介した経路が主に働いていることを明らかにした<ref name=Nomura2011><pubmed>22021672</pubmed></ref>。
　このようにMGLは脂肪の分解のみならずエンドカンナビノイド2-AGの分解やプロスタグランジンの生合成にも関与している。よってMGLに作用する薬剤はカンナビノイド系およびプロスタグランジ系を介して生理機能や病態生理機能に影響をおよぼす可能性があり、MGLをターゲットとした治療薬の開発が進められている<ref name=Chen2023><pubmed>36966972</pubmed></ref><ref name=Maccarrone2023><pubmed>37164640</pubmed></ref>。

【構造】
アミノ酸303個（ラット）<ref name=Dinh2002><pubmed>12136125</pubmed></ref>から成る、活性部位にセリン残基があるserine hydrolaseスーパーファミリーに属する酵素である。またその2次構造からは、βシートの周りをαヘリックスが取り囲むα/β hydrolaseスーパーファミリーに属する酵素でもある<ref name=Karlsson1997><pubmed>9341166</pubmed></ref><ref name=Scalvini2016><pubmed>26216043</pubmed></ref>。MGLをコードする遺伝子MGLLは、ヒトでは３番目の染色体、マウスでは６番目の染色体に位置している。マウスおよびラットでは、触媒三残基はセリン（122番目）、アスパラギン酸（239番目）、ヒスチジン（269番目）と推定されている。MGLのアミノ酸配列はラットとマウス間では92%、ラット／マウスとヒト間では84%の同一性がみられる<ref name=Scalvini2016><pubmed>26216043</pubmed></ref>。MGLの基質特異性およびMGL阻害剤の作用機序の解明のため、MGLの結晶化および三次元構造の解析が精力的に進められている<ref name=Labar2010><pubmed>19957260</pubmed></ref>。
　
【サブファミリー】
MGLのサブファミリーは知られていない。しかし、ウエスタンブロッティングでは組織によりタンパク質のバンドが２本みられる場合があり、組織依存的なsplice variantがある可能性が示唆されている<ref name=Dinh2002><pubmed>12136125</pubmed></ref>。

【組織および細胞内分布】
MGLは全身の組織（脂肪組織、脳、肺、腎臓、心臓、脾臓、卵巣、精巣、骨格筋、肝臓、副腎など）に広く分布している。脳内でも大脳皮質、海馬、視床、小脳、線条体など広範に分布し、細胞タイプとしてはニューロンのみならずアストロサイトやオリゴデンドロサイトにも発現している<ref name=Baggelaar2017><pubmed>28106377</pubmed></ref><ref name=Dinh2002><pubmed>12136125</pubmed></ref><ref name=Viader2016><pubmed>26779719</pubmed></ref>。ニューロンでは主にシナプス前終末に分布している<ref name=Gulyas2004><pubmed>15233753</pubmed></ref><ref name=Kano2009><pubmed>19126760</pubmed></ref>。

【酵素としての機能】
MGの長鎖脂肪酸を加水分解する酵素で、酵素番号はEC 3.1.1.23、系統名はglycerol-ester acylhydrolaseである。他の名称としてはmonoacylglycerolipase, monoglyceride lipase, monoglyceride hydrolase, monoacylglycerol hydrolase, monoglyceridyllipase, monoglyceridaseなどがある。
基質特異性としては、TGやDGには作用せずMG特異性が高いこと、MGであれば脂肪酸の長さや飽和度は関係せず、脂肪酸の結合位置がグリセロールのどの位置であっても分解できることが報告されている<ref name=Vandevoorde2005><pubmed>16181610</pubmed></ref>。
阻害剤としては、最初にURB602 <ref name=Hohmann2005><pubmed>15973410</pubmed></ref> とURB754<ref name=Makara2005><pubmed>16116451</pubmed></ref>（但しURB754のMGL阻害作用はその後否定された<ref name=Hashimotodani2007><pubmed>17267577</pubmed></ref><ref name=Saario2006><pubmed>16931330</pubmed></ref>）が、次に選択性がより高く低濃度で有効なJZL184<ref name=Long2009><pubmed>19635411</pubmed></ref>が報告され、多くの動物実験で使用された。その後、KML29、MJN110、JW651、Lu AG06466（またはABX-1431)などのさらに改良されたMGL阻害剤が次々と報告され、動物実験のみならず、一部は人を対象とした臨床研究においても使用されている<ref name=Deng2020><pubmed>32322464</pubmed></ref><ref name=Scalvini2016><pubmed>26216043</pubmed></ref><ref name=Zhao2024><pubmed>38882045</pubmed></ref>。

【個体での機能】
（１）細胞に蓄積された脂肪の分解
脂肪細胞など細胞内にTGを貯蔵している細胞においては、空腹時などにはTGが分解されDGを経てＭＧが蓄積する。MGLはそれをさらに脂肪酸とグリセロールにまで分解する。

（２）エンドカンナビノイド2-AGの分解
神経活動により細胞内Ca2+濃度上昇やGq/11共役型受容体の活性化が起こると、それぞれ単独または両者の相乗効果により2-AGが生成され細胞外に放出される<ref name=Hashimotodani2005><pubmed>15664177</pubmed></ref>（図４）。生合成に関与する酵素であるホスホリパーゼCβ（PLCβ）やジアシルグリセロールリパーゼα（DGLα）はシナプス後側にあり、2-AGはシナプス後ニューロンより放出される。放出された2-AGはシナプス前終末のCB1受容体に結合し神経伝達物質の放出を抑制する。このような2-AGによるシナプス伝達調節機構は脳の多くの領域でみられ、記憶・学習、不安、痛みなど様々な脳機能に関与している。2-AGには、伝達物質の放出抑制およびその他のメカニズムを介して、脳を保護する作用もある。さらに、2-AGはCB2受容体にも作用する。CB2受容体は主にマクロファージなどの免疫系の細胞に多く発現されており、2-AGはCB2受容体を介して免疫系にも影響をおよぼす。
2-AGを不活性化させる経路としては、加水分解経路と酸化経路がある。加水分解経路として最も重要なものがMGLである<ref name=Dinh2002><pubmed>12136125</pubmed></ref><ref name=Dinh2004><pubmed>15272052</pubmed></ref><ref name=Vandevoorde2007><pubmed>17712823</pubmed></ref> 。MGLは脳ではシナプス前終末に多く存在し（図４）、その活性は2-AGシグナルの作用時間および作用強度に大きな影響をおよぼす<ref name=Hashimotodani2007><pubmed>17267577</pubmed></ref><ref name=Tanimura2012><pubmed>22783023</pubmed></ref>。MGL以外の加水分解酵素としてはα/β-hydrolase domain-containing 6（ABHD6)やABHD12 などがある<ref name=Blankman2007><pubmed>18096503</pubmed></ref><ref name=Dinh2004><pubmed>15272052</pubmed></ref><ref name=Muccioli2007><pubmed>17360910</pubmed></ref><ref name=Saario2004><pubmed>15013854</pubmed></ref>。脳での2-AGの加水分解に対する寄与率を調べた研究では、MGLが85％で、ABHD6とABHD12を合わせて15％と報告されている<ref name=Blankman2007><pubmed>18096503</pubmed></ref>。また、この論文では３つの2-AG加水分解酵素の細胞内局在に違いがあることから、３つの酵素がそれぞれ異なる2-AGプールに作用する可能性が示唆されている。酸化経路を担う酵素としてはシクロオキシゲナーゼ（COX）-2やリポキシゲナーゼ（LOX）があり、それによりプロスタグランジンE2グリセロールエステル(PGE2-G)、12-ヒドロキシエイコサテトラエン酸グリセロールエステル(12-HETE-G)、15-ヒドロキシエイコサテトラエン酸グリセロールエステル(15-HETE-G)などの新たなシグナルが生成される<ref name=Maccarrone2023><pubmed>37164640</pubmed></ref><ref name=Vandevoorde2007><pubmed>17712823</pubmed></ref>。

（２）プロスタグランジンの生合成
プロスタグランジンは多様な生理機能、病態生理機能に関わっている。その生合成に必要な遊離アラキドン酸を供給する経路としては、cPLA2を介する経路とMGLを介する経路がある。どの経路がより重要であるのかは組織あるいは細胞の種類により異なり、脳においてはMGLの経路が重要であると考えられている<ref name=Nomura2011><pubmed>22021672</pubmed></ref>。リポ多糖類（LPS）投与による発熱モデルを用い、LPSにより誘発される視床下部でのプロスタグランジンE2の生成や発熱にはMGLが必要であることが証明された<ref name=Kita2015><pubmed>26196692</pubmed></ref>。

【疾患との関わり】
MGLをターゲットとした治療薬の開発が進んでいる。研究の多くはまだ動物実験段階であるが、一部は人を対象とした臨床研究に進んでいる。MGLを阻害するとカンナビノイド系とプロスタグラン系の両方が影響を受けるが、どちらがより影響を受けるのかは組織あるいは部位により異なる<ref name=Martinez-Torres2019><pubmed>31251974</pubmed></ref>。

（１）鎮痛作用、脳保護作用、神経変性疾患の症状軽減作用
動物実験においては、MGL阻害剤の投与により、鎮痛作用<ref name=Hohmann2005><pubmed>15973410</pubmed></ref><ref name=Kinsey2009><pubmed>19502530</pubmed></ref>や脳保護作用<ref name=Arimura2024><pubmed>39570850</pubmed></ref>、およびパーキンソン病<ref name=Nomura2010><pubmed>20079333</pubmed></ref>、アルツハイマー病<ref name=Chen2012><pubmed>23122958</pubmed></ref>、多発性硬化症<ref name=Hernandez-Torres2014><pubmed>25298214</pubmed></ref>などの神経変性疾患の症状を軽減する作用があることが報告されている。その作用機序については、多くの仮説が提唱されてはいるものの、まだ全貌解明には至っていない。MGL阻害剤の鎮痛作用については、CB1受容体を介した中脳水道周囲灰白質からの下行性痛覚抑制系の活性化の関与が示唆されている<ref name=Hohmann2005><pubmed>15973410</pubmed></ref><ref name=Lau2014><pubmed>25064178</pubmed></ref>。脳保護作用や神経変性疾患の症状軽減作用については、CB1受容体を介する興奮性伝達物質グルタミン酸の過剰な放出の抑制が関与する可能性が報告されている<ref name=Monory2006><pubmed>16908411</pubmed></ref>。また、ミクログリアのCB2受容体の活性化や、アラキドン酸やプロスタグランジンの減少による炎症の軽減などが関与する可能性も考えられる<ref name=Chen2023><pubmed>36966972</pubmed></ref>。
　一方、人を対象とした臨床試験においては、期待されるような改善効果はまだ得られていない。最も研究が進んでいる薬の１つはLu-AG06466（別名はABX-1431 )であり、臨床試験第１相を終え第２相に進んだものもある。対象疾患としては、トゥレット症候群、心的外傷後ストレス障害、多発性硬化症などである<ref name=Maccarrone2023><pubmed>37164640</pubmed></ref>。しかし、トゥレット症候群に対するLu-AG06466の効果が調べられた研究において、短期間の投与の効果を調べた第１相試験では改善効果がみられたものの、12週間の長期投与の効果を調べた第２相試験では効果がみられなかったことが報告されている<ref name=Muller-Vahl2021><pubmed>34117788</pubmed></ref><ref name=Muller-Vahl2022><pubmed>34847610</pubmed></ref>。

（２）抗がん作用
動物実験において、カンナビノイドに抗がん作用があることが報告されている。そこで、カンナビノイドを直接投与する方法の他に、MGLの阻害により生体内のカンナビノイド濃度を高める方法が試みられるようになった。動物実験では、MGL欠損マウスではガンの増殖が促進される<ref name=Liu2018><pubmed>29348400</pubmed></ref>などの矛盾する結果もあるものの、MGL阻害剤（主にJZL184を使用）に抗がん作用があることを示す論文は多い<ref name=Ramer2021><pubmed>34830856</pubmed></ref>。その作用機序としては、2-AGによるカンナビノイド受容体の活性化を介するものの他に、MGL阻害剤によりガンを促進させる作用のある脂肪酸が減少することが関与する可能性も指摘されている<ref name=Nomura2011><pubmed>22021672</pubmed></ref><ref name=Ramer2021><pubmed>34830856</pubmed></ref>。
ヒトのガン細胞のMGL活性と生存率との関係を調べた研究は多いが、一致した結果は得られていない<ref name=Ramer2021><pubmed>34830856</pubmed></ref>。

（３）抗不安作用
　カンナビノイド系はCB1受容体を介して扁桃体活動に影響を及ぼし、不安の調節に関与していると考えられており<ref name=Viveros2005><pubmed>15927244</pubmed></ref>、カンナビノイド受容体やエンドカンナビノイド分解酵素に作用する薬剤の抗不安作用が調べられてきた<ref name=Zhao2024><pubmed>38882045</pubmed></ref>。動物実験では、アナンダミドの分解酵素であるFAAH（fatty acid amide hydrolase）の阻害剤および2-AG分解酵素MGLの阻害剤の両方について、抗不安作用があることが報告されている。FAAH阻害剤については人を対象とした臨床研究の第２相段階に進んでいるものもあるが、MGL阻害剤はまだ臨床研究には至っていない。

（４）問題点および将来の展望
カンナビノイド系を活性化させる目的でMGL阻害剤を使用する場合は注意が必要である。MGLが阻害されると、2-AG濃度は上昇しCB1受容体を介する作用は亢進すると期待される。しかしそれが長期間続くとCB1受容体の脱感作あるいは発現量の低下が起こり、結果としてカンナビノイド系は機能しなくなる可能性がある。例えば、MGL欠損動物ではCB1受容体の脱感作によりカンナビノイド系によるシナプス可塑性が障害されることが報告されている<ref name=Maccarrone2023><pubmed>37164640</pubmed></ref><ref name=Petrenko2014><pubmed>24906199</pubmed></ref><ref name=Schlosburg2010><pubmed>20729846</pubmed></ref>。これらの問題を回避するため、作用が可逆的なものや血液脳関門を通らずに末梢でのみ作用するものなど、新しいMGL阻害剤の開発が今も進められている<ref name=Gil-Ordonez2018><pubmed>30059673</pubmed></ref><ref name=Hao2024><pubmed>38428273</pubmed></ref>。

【関連語】
エンドカンナビノイド
アラキドン酸
プロスタグランジン