「ディファレンシャルディスプレイ」の版間の差分

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<div align="right">
英語名：differential display　英語略名：DDRT-PCR, DD-PCR &nbsp;ディファレンシャルディスプレイdifferential display(DD法)（別名、ディファレンシャルディスプレイRT-PCR (DDRT-PCR, DD-PCR)）とは、遺伝子発現の量の差異(difference)をPCR法により解析する方法の一種である。ここで、ディスプレイ(display)とは、目的遺伝子をゲル上で視覚的に表示するとの意であり、多数のRNA試料を同時に比較して、様々な発現パターンを示すcDNAを包括的に同定しその発現量を比較できることから、ゲノム科学における遺伝子発現解析 (gene expression profiling)に有力な手法である<ref><pubmed>1354393</pubmed></ref><ref><pubmed>12188186</pubmed></ref>[3]。
<font size="+1">[http://researchmap.jp/read0109518 岸本 泰司]</font><br>
''徳島文理大学''<br>
<font size="+1">[http://researchmap.jp/read0116885 中矢 正]</font><br>
''北海道大学薬学部''<br>
<font size="+1">[http://researchmap.jp/yutakakirino 桐野 豊]</font><br>
''徳島文理大学''<br>
DOI：<selfdoi />　原稿受付日：2011年12月23日　原稿完成日：2012年1月23日<br>
担当編集委員：[http://researchmap.jp/2rikenbsi 林 康紀]（独立行政法人理化学研究所　脳科学総合研究センター）<br>
</div>


英：differential display　英略語：DDRT-PCR, DD-PCR　仏：l'affichage différentiel
<br> '''原理と適用例'''  


{{box|text=　ディファレンシャルディスプレイ（別名、"ディファレンシャルディスプレイRT-PCR (DDRT-PCR, DD-PCR)"）とは、[[wj:遺伝子|遺伝子]][[wj:発現|発現]]の量の差異を[[wj:ポリメラーゼ連鎖反応|PCR]]法により解析する方法の一種である。ここで、ディスプレイ(display)とは、目的遺伝子を[[wj:ゲル|ゲル]]上で視覚的に表示するとの意であり、多数のRNAにおいて、様々な発現パターンを示すmRNAを包括的に同定しその発現量を比較できることから、[[wj:ゲノム|ゲノム]]科学における遺伝子発現解析 に有力な手法である<ref name="Liang_Pardee_Science"><pubmed>1354393</pubmed></ref><ref name="Liang_Biotech"><pubmed>12188186</pubmed></ref><ref>'''野島博'''<br>最新生命科学キーワードブック<br>羊土社: 2007</ref>。  
遺伝子から転写されたRNAの量は、遺伝子機能の量的な面を反映していると考えられるため、遺伝子の発現量から機能を推測しようというのが、この遺伝子発現解析の基本的な概念である。本技法は、1992年に、LiangとPardeeにより、mRNAレベルで真核細胞の試料間で、遺伝子発現の同定比較を行うことできる技術として発表された<ref><pubmed>1354393</pubmed></ref><ref><pubmed>12188186</pubmed></ref>。形態的、遺伝学的、または実験的処置等に異なる試料間で、どの遺伝子発現に変化•差異があるかを見出すことができる。例えば、物質Aの添加により遺伝子Bの発現の増加/減少が見出された場合、この遺伝子Bの発現が物質Aにより誘導/抑制されていると考えられ、防御タンパクや阻害作用の解析などに多くの適応が考えられる。脳•神経科学領域では、ある学習課題が成立した動物個体としていない動物個体の脳神経細胞間で、発現に差のある遺伝子を同定することで、その学習に関与する遺伝子群が同定された適応例がある<ref><pubmed>10531455</pubmed></ref> 。比較的感度が良く、実験操作も簡便に行うことができ、また必要に応じて、2対以上の試料間での比較に拡張することも可能である。原法では、検出方法としてRIを用いていた(RI-DD法)が<ref><pubmed>1354393</pubmed></ref>、その後、蛍光標識されたプライマーを用いて検出する蛍光differential display (FDD) 法が開発され、検出感度、操作性や再現性が高められた<ref><pubmed>7521850</pubmed></ref>, [6]。 <br>
}}


== 原理と適用例  ==
<br> '''利点と不利点'''


[[Image:DD-fig1rev.jpg|thumb|right|300px|<b>図1 Differential Displayの結果例</b>。 条件付けを行ったナメクジ<i><!--IWLINK 6--></i>個体(P, Paired)及び対照群の個体(U, Unpaired)、各群2サンプルから調整したtotal RNAを用いてDDを行った。 用いたOligodTMN primer (N = C)及びArbitrary primerは上部に示す。群間で差があり、且つ2サンプルで再現性のあるバンドを探索した。多くのバンドが再現性良く現れており、群間で差は認められない。*で示すバンドは同一群内で異なる結果を示していることから、本実験では再現性が無い、と判断された。矢印で示す1及び2がPaired群で増加、3及び4が減少しているバンドを示す。右パネルはDNAマーカーを示す。]] 　遺伝子から転写された[[mRNA]]の量は、遺伝子機能の量的な面を反映していると考えられるため、遺伝子の発現量から機能を推測しようというのが、この遺伝子発現解析の基本的な概念である。本技法は、1992年にLiangとPardeeにより、mRNAレベルで[[wj:真核生物|真核細胞]]の試料間で、遺伝子発現の同定比較を行うことできる技術として発表された<ref name="Liang_Pardee_Science" /><ref name="Liang_Biotech" />。形態的、遺伝学的、または実験的処置等に異なる試料間で、どの遺伝子発現に変化・差異があるかを見出すことができる。
本法は、単一ゲル上で多数の試料のバンド分布を同時に比較できることから効率良く遺伝子発現量の差が検出できるため、組織や細胞が発現する遺伝子とその発現量（transcription image）の研究分野に急速に普及した。ただし、任意プライマーを用いてPCR反応を行うことから再現性が高いとは言えず、また、好感度であるが故にPCRの条件設定を厳密に行わないと擬陽性のバンドも出やすい。そのため、2000年代半ばには、高速かつ高感度で大量解析可能なDNAアレイ（DNAチップ）、RNA-seq、RT-PCR(定量的リアルタイムPCR)などの技術の登場によってその相対的重要性は低下している [7]。しかしながら、DNAアレイに比較して、DD法はコスト面、所要時間で未だ有利であり、出発材料が少量でも解析を行えるという利点も有する。また通常のDNAアレイと異なり、DD法では新規遺伝子の検出が可能であることなどの利点もあることから、今後も多くの分野で適用が期待される。 　


　例えば、ある物質の添加によりある遺伝子の発現の増加/減少が見出された場合、この遺伝子の発現がその物質により誘導/抑制されていると考えられる。防御タンパク質や阻害作用の解析などに多くの適用が考えられる。脳神経科学領域では、ある[[学習]]課題が成立した動物個体としていない動物個体の細胞間で、発現に差のある遺伝子を同定することで、その学習に関与する遺伝子群が同定された適応例がある(図1)<ref><pubmed>10531455</pubmed></ref><ref><pubmed>11168596</pubmed></ref>。比較的感度が良く、実験操作も簡便に行うことができ、また必要に応じて、3試料以上の間での比較に拡張することも可能である。
<br>  


　原法では、検出方法として[[wj:放射性同位元素|放射性同位元素]]（radioisotope, RI）を用いていた(RI-DD法)が<ref name="Liang_Pardee_Science" />、その後、蛍光標識された[[wj:プライマー (生物)|プライマー]]を用いて検出する「[[wj:蛍光|蛍光]]ディファレンシャルディスプレイ (FDD) 法」が開発され、検出感度、操作性や再現性が高められた<ref name="Liang_Biotech" /><ref>'''伊藤隆司'''<br>Differential Display<br>実験医学別冊　新遺伝子工学ハンドブック改訂第4版（村松正實、 山本雅編）羊土社: 2003, pp. 60-64 （なお、第5版から本項目は削除されている）</ref>。
&nbsp;なお、狭義には、タンパク質ディファレンシャルディスプレイ法という手法もある[8]。これは、複数種の特定の細胞試料間でタンパク質の構成成分の違いを分析する方法であり、一般的には二次元ゲル電気泳動で各細胞のタンパク質を分離し、そのパターンの差を比較する方法である。以下には、通常のRNA試料を対象としたディファレンシャルディスプレイ法について説明する。 <br> <br> '''方法と手順'''  


== 利点と不利点  ==
細胞中で発現したmRNAすべて（total RNA）を逆転写しtotal cDNAを得た後、これを鋳型にして複数のプライマーミックスを用いたPCRを行う。ここで、特異性を持たせずできるだけ多くの種類の遺伝子を増幅するよう設定した複数のプライマーを用いることにより、非常に多数のバンドが得られる。 得られたバンドの強弱を遺伝子発現の強度の指標とし、特定の物質添加の有無などさまざまな操作•環境の違いによりその細胞のどの遺伝子が変化しているかを見出す。以下に手順を記述する (図)。 <br><br> &nbsp;[[Image:Differentialdisplay.jpg|RTENOTITLE]] <br><br>


　本法は、単一ゲル上で多数の試料のバンド分布を同時に比較できることから効率良く遺伝子発現量の差が検出できるため、組織や細胞が発現する遺伝子とその発現量の解析、つまりtranscription imageの研究分野に急速に普及した。ただし、任意プライマーを用いてPCR反応を行うことから再現性が高いとは言えず、また、高感度であるが故にPCRの条件設定を厳密に行わないと擬陽性のバンドも出やすい。そのため、2000年代半ばには、高速かつ高感度で大量解析可能な[[DNAアレイ]]（DNAチップ）、RNA-seq、定量的[[wj:リアルタイムPCR|リアルタイムPCR]]（RT-PCR）などの技術の登場によってその相対的重要性は低下している<ref>英語版wのDifferential displayの項目。http://en.w.org/wiki/Differential_display</ref>。しかしながら、DNAアレイに比較して、ディファレンシャルディスプレイ法はコスト面、所要時間で未だ有利であり、出発材料が少量でも解析を行えるという利点も有する。また通常のDNAアレイと異なり、ディファレンシャルディスプレイ法では新規遺伝子の検出が可能であることなどの利点もあることから、今後も特定の分野で有効な解析法となり得る。 　
① アンカープライマーによるmRNAの選択的逆転写（第1鎖合成） 比較したい２種類（またはそれ以上）の細胞からそれぞれ抽出したmRNAを、ポリ(A)鎖と結合するアンカープライマー(anchor primer)と逆転写酵素を用いた逆転写反応によってcDNAに変換する。アンカープライマーとしはT(チミジン)12個からなるオリゴヌクレオチドの3’端に１個の任意の塩基を付加したものを用いる。１つの細胞で発現する約15,000種類の遺伝子すべての発現を網羅して探索するために、4種類のアンカープライマーと20種類の混成プライマー(10mer)を用いてPCRを行う。 <br> <br>


　なお、[[wj:蛋白質|タンパク質]]レベルにおける発現量を比較する「タンパク質ディファレンシャルディスプレイ法」という手法もある<ref>'''平野久'''<br>タンパク質のアミノ酸配列と翻訳後修飾の分析<br>タンパク質をみるー構造と挙動（長谷俊治、高尾敏文、高木淳一編）化学同人: 2009 pp. 1-32</ref>。これは、複数種の特定の細胞試料間でタンパク質の発現パターンの違いを分析する方法であり、一般的には二次元[[w:Gel electrophoresis|ゲル電気泳動]]で各細胞のタンパク質を分離し、そのパターンの差を比較する方法である。
② 任意プライマーによるmRNAの選択的第2鎖合成とPCRによる増幅 次に、合成されたcDNAを鋳型に、アンカープライマーと任意の混成塩基配列を持つ（通常10merの）オリゴヌクレオチド群をプライマーとしてPCRを行う。これによって任意の共通塩基配列をもつ複数のcDNA断片を、同時にPCR増幅する。この結果、両端をアンカープライマーと任意プライマーの配列で置換された分子が生じる。サイクルを繰り返すことにより、分子が指数関数的に増幅する。 <br> <br>


== 方法と手順  ==
③ 電気泳動(もしくは蛍光イメージアナライザー等)による発現の分類 反応生成物をポリアクリルアミド電気泳動で展開すると、複数のcDNA断片からなるフィンガープリントが得られる。この中から、強度に変化のある、または特異的な泳動パターンを示すバンドの切り出しを行う。 <br> <br>


　以下、通常のmRNA試料を対象としたディファレンシャルディスプレイ法について説明する (図2)<ref><pubmed> 18265216 </pubmed></ref>。[[Image:DDT-fig2.jpg|thumb|right|300px|'''図2 ディファレンシャルディスプレイ法の手順''']]
④ バンドの再増幅およびクローン化 ゲルからサンプルを回収し、それを基質としてPCRを繰り返し行い、再現性を高めて、cDNAクローンを回収する。 <br> <references /> <br> <br><br>


　細胞中で発現したmRNAすべてを[[wj:逆転写|逆転写]]しcDNAを得た後、これを鋳型にして複数の混合プライマーを用いたPCRを行う。ここで、特異性を持たせずできるだけ多くの種類のcDNA断片を増幅するよう設定した複数のプライマーを用いることにより、非常に多数のバンドが得られる。1つの細胞で発現し得る約15,000種類の遺伝子すべての発現を網羅して探索するために、3種類のアンカープライマーと20種類の混成プライマー(10 mer)を用いてPCRを行う。得られたバンドの強弱を遺伝子発現の強度の指標とし、特定の物質添加の有無などさまざまな操作・環境の違いによりその細胞のどの遺伝子が変化しているかを見出す。
'''参考文献'''


#アンカープライマーによるmRNAの選択的逆転写（第1鎖合成）
1. P Liang, A B Pardee Differential display of eukaryotic messenger RNA by means of the polymerase chain reaction. Science: 1992, 257(5072); 967–71
#:比較したい2種類（またはそれ以上）の細胞からそれぞれ抽出したmRNAを、ポリ(A)鎖と結合するアンカープライマーと逆転写酵素を用いた逆転写反応によってcDNAに変換する。アンカープライマーとしはT（チミジン）12個からなる[[wj:オリゴヌクレオチド|オリゴヌクレオチド]]の3’端に、A,G,Cのうちの1種のヌクレオチド1個を付加したものを用いる（T<sub>12</sub>N、但し、N=A, G, or C）。時にT<sub>12</sub>MN（但し、M=A, G, Cの混合、N=A, G, CまたはT）を用いることもある。
#任意プライマーによるcDNAの選択的第2鎖合成とPCRによる増幅
#:次に、合成されたcDNAを鋳型に、アンカープライマーと任意の混成塩基配列を持つ（通常10merの）オリゴヌクレオチド群をプライマーとしてPCRを行う。これによって任意の共通塩基配列をもつ複数のcDNA断片を、同時にPCR増幅する。この結果、両端をアンカープライマーと任意プライマーの配列で置換された分子が生じる。
#電気泳動（もしくは蛍光イメージアナライザー等）による発現の分類
#:反応生成物をポリアクリルアミド電気泳動で展開すると、複数のcDNA断片からなるフィンガープリントが得られる。この中から、強度に変化のある、または特異的な泳動パターンを示すバンドの切り出しを行う。
#バンドの再増幅およびクローン化
#:ゲルからサンプルを回収し、それを鋳型としてPCRを繰り返し行い増幅し、cDNA[[wj:クローン|クローン]]を回収する。


== 参考文献  ==
2. P Liang A decade of differential display. Biotechniques: 2002, 33(2); 338–46


<references />
3. 野島博 最新生命科学キーワードブック 羊土社 (2007).


4. H Gomi, W Sun, C E Finch, S Itohara, K Yoshimi, R F Thompson Learning induces a CDC2-related protein kinase, KKIAMRE. J. Neurosci.: 1999, 19(21), 9530–37


<keywords content="ディファレンシャルディスプレイ,ディファレンシャルディスプレー,differential display,遺伝子発現,gene expression" />
5.　T Ito, K Kito, N Adachi, Y Mitsui, H Hagiwara, Y Sakaki Fluorescent differential display: arbitrarily primed RT-PCR fingerprinting on an automated DNA sequencer. FEBS Lett.: 1994, 351(2), 231-36 5.
 
6. 伊藤隆司 Differential Display. 実験医学別冊　新遺伝子工学ハンドブック改訂第4版羊土社: 2003, 60-4 （なお、第５版から本項目は削除されている）
 
7. Wikipedia. Differential display. http://en.wikipedia.org/wiki/Differential_display
 
8.　長谷俊治、高尾敏文、高木淳一編　 タンパク質をみるー構造と挙動　化学同人: 2009
 
<br>  
 
（執筆者：岸本泰司、桐野　豊、担当編集委員：）

2011年12月22日 (木) 01:10時点における版

英語名：differential display　英語略名：DDRT-PCR, DD-PCR  ディファレンシャルディスプレイdifferential display(DD法)（別名、ディファレンシャルディスプレイRT-PCR (DDRT-PCR, DD-PCR)）とは、遺伝子発現の量の差異(difference)をPCR法により解析する方法の一種である。ここで、ディスプレイ(display)とは、目的遺伝子をゲル上で視覚的に表示するとの意であり、多数のRNA試料を同時に比較して、様々な発現パターンを示すcDNAを包括的に同定しその発現量を比較できることから、ゲノム科学における遺伝子発現解析 (gene expression profiling)に有力な手法である[1][2][3]。


原理と適用例

遺伝子から転写されたRNAの量は、遺伝子機能の量的な面を反映していると考えられるため、遺伝子の発現量から機能を推測しようというのが、この遺伝子発現解析の基本的な概念である。本技法は、1992年に、LiangとPardeeにより、mRNAレベルで真核細胞の試料間で、遺伝子発現の同定比較を行うことできる技術として発表された[3][4]。形態的、遺伝学的、または実験的処置等に異なる試料間で、どの遺伝子発現に変化•差異があるかを見出すことができる。例えば、物質Aの添加により遺伝子Bの発現の増加/減少が見出された場合、この遺伝子Bの発現が物質Aにより誘導/抑制されていると考えられ、防御タンパクや阻害作用の解析などに多くの適応が考えられる。脳•神経科学領域では、ある学習課題が成立した動物個体としていない動物個体の脳神経細胞間で、発現に差のある遺伝子を同定することで、その学習に関与する遺伝子群が同定された適応例がある[5] 。比較的感度が良く、実験操作も簡便に行うことができ、また必要に応じて、2対以上の試料間での比較に拡張することも可能である。原法では、検出方法としてRIを用いていた(RI-DD法)が[6]、その後、蛍光標識されたプライマーを用いて検出する蛍光differential display (FDD) 法が開発され、検出感度、操作性や再現性が高められた[7], [6]。


利点と不利点

本法は、単一ゲル上で多数の試料のバンド分布を同時に比較できることから効率良く遺伝子発現量の差が検出できるため、組織や細胞が発現する遺伝子とその発現量（transcription image）の研究分野に急速に普及した。ただし、任意プライマーを用いてPCR反応を行うことから再現性が高いとは言えず、また、好感度であるが故にPCRの条件設定を厳密に行わないと擬陽性のバンドも出やすい。そのため、2000年代半ばには、高速かつ高感度で大量解析可能なDNAアレイ（DNAチップ）、RNA-seq、RT-PCR(定量的リアルタイムPCR)などの技術の登場によってその相対的重要性は低下している [7]。しかしながら、DNAアレイに比較して、DD法はコスト面、所要時間で未だ有利であり、出発材料が少量でも解析を行えるという利点も有する。また通常のDNAアレイと異なり、DD法では新規遺伝子の検出が可能であることなどの利点もあることから、今後も多くの分野で適用が期待される。 　


 なお、狭義には、タンパク質ディファレンシャルディスプレイ法という手法もある[8]。これは、複数種の特定の細胞試料間でタンパク質の構成成分の違いを分析する方法であり、一般的には二次元ゲル電気泳動で各細胞のタンパク質を分離し、そのパターンの差を比較する方法である。以下には、通常のRNA試料を対象としたディファレンシャルディスプレイ法について説明する。

方法と手順

細胞中で発現したmRNAすべて（total RNA）を逆転写しtotal cDNAを得た後、これを鋳型にして複数のプライマーミックスを用いたPCRを行う。ここで、特異性を持たせずできるだけ多くの種類の遺伝子を増幅するよう設定した複数のプライマーを用いることにより、非常に多数のバンドが得られる。 得られたバンドの強弱を遺伝子発現の強度の指標とし、特定の物質添加の有無などさまざまな操作•環境の違いによりその細胞のどの遺伝子が変化しているかを見出す。以下に手順を記述する (図)。

 RTENOTITLE

① アンカープライマーによるmRNAの選択的逆転写（第1鎖合成） 比較したい２種類（またはそれ以上）の細胞からそれぞれ抽出したmRNAを、ポリ(A)鎖と結合するアンカープライマー(anchor primer)と逆転写酵素を用いた逆転写反応によってcDNAに変換する。アンカープライマーとしはT(チミジン)12個からなるオリゴヌクレオチドの3’端に１個の任意の塩基を付加したものを用いる。１つの細胞で発現する約15,000種類の遺伝子すべての発現を網羅して探索するために、4種類のアンカープライマーと20種類の混成プライマー(10mer)を用いてPCRを行う。

② 任意プライマーによるmRNAの選択的第2鎖合成とPCRによる増幅 次に、合成されたcDNAを鋳型に、アンカープライマーと任意の混成塩基配列を持つ（通常10merの）オリゴヌクレオチド群をプライマーとしてPCRを行う。これによって任意の共通塩基配列をもつ複数のcDNA断片を、同時にPCR増幅する。この結果、両端をアンカープライマーと任意プライマーの配列で置換された分子が生じる。サイクルを繰り返すことにより、分子が指数関数的に増幅する。

③ 電気泳動(もしくは蛍光イメージアナライザー等)による発現の分類 反応生成物をポリアクリルアミド電気泳動で展開すると、複数のcDNA断片からなるフィンガープリントが得られる。この中から、強度に変化のある、または特異的な泳動パターンを示すバンドの切り出しを行う。

④ バンドの再増幅およびクローン化 ゲルからサンプルを回収し、それを基質としてPCRを繰り返し行い、再現性を高めて、cDNAクローンを回収する。

  1. ↑ Liang, P., & Pardee, A.B. (1992).
    Differential display of eukaryotic messenger RNA by means of the polymerase chain reaction. Science (New York, N.Y.), 257(5072), 967-71. [PubMed:1354393] [WorldCat] [DOI]
  2. ↑ Liang, P. (2002).
    A decade of differential display. BioTechniques, 33(2), 338-44, 346. [PubMed:12188186] [WorldCat] [DOI]
  3. ↑ Liang, P., & Pardee, A.B. (1992).
    Differential display of eukaryotic messenger RNA by means of the polymerase chain reaction. Science (New York, N.Y.), 257(5072), 967-71. [PubMed:1354393] [WorldCat] [DOI]
  4. ↑ Liang, P. (2002).
    A decade of differential display. BioTechniques, 33(2), 338-44, 346. [PubMed:12188186] [WorldCat] [DOI]
  5. ↑ Gomi, H., Sun, W., Finch, C.E., Itohara, S., Yoshimi, K., & Thompson, R.F. (1999).
    Learning induces a CDC2-related protein kinase, KKIAMRE. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience, 19(21), 9530-7. [PubMed:10531455] [PMC] [WorldCat]
  6. ↑ Liang, P., & Pardee, A.B. (1992).
    Differential display of eukaryotic messenger RNA by means of the polymerase chain reaction. Science (New York, N.Y.), 257(5072), 967-71. [PubMed:1354393] [WorldCat] [DOI]
  7. ↑ Ito, T., Kito, K., Adati, N., Mitsui, Y., Hagiwara, H., & Sakaki, Y. (1994).
    Fluorescent differential display: arbitrarily primed RT-PCR fingerprinting on an automated DNA sequencer. FEBS letters, 351(2), 231-6. [PubMed:7521850] [WorldCat] [DOI]




参考文献

1. P Liang, A B Pardee Differential display of eukaryotic messenger RNA by means of the polymerase chain reaction. Science: 1992, 257(5072); 967–71

2. P Liang A decade of differential display. Biotechniques: 2002, 33(2); 338–46

3. 野島博 最新生命科学キーワードブック 羊土社 (2007).

4. H Gomi, W Sun, C E Finch, S Itohara, K Yoshimi, R F Thompson Learning induces a CDC2-related protein kinase, KKIAMRE. J. Neurosci.: 1999, 19(21), 9530–37

5.　T Ito, K Kito, N Adachi, Y Mitsui, H Hagiwara, Y Sakaki Fluorescent differential display: arbitrarily primed RT-PCR fingerprinting on an automated DNA sequencer. FEBS Lett.: 1994, 351(2), 231-36 5.

6. 伊藤隆司 Differential Display. 実験医学別冊　新遺伝子工学ハンドブック改訂第4版羊土社: 2003, 60-4 （なお、第５版から本項目は削除されている）

7. Wikipedia. Differential display. http://en.wikipedia.org/wiki/Differential_display

8.　長谷俊治、高尾敏文、高木淳一編　 タンパク質をみるー構造と挙動　化学同人: 2009


（執筆者：岸本泰司、桐野　豊、担当編集委員：）

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