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環状構造を持つAMPとしては、RNA加水分解の際に中間体として生成される2'-3'-アデノシン一リン酸も存在するが、生理的により重要性の高い3'-5'-アデノシン一リン酸を一般にサイクリックAMPと略記する。本項目においても全て3'-5'-アデノシン一リン酸について解説する。 | 環状構造を持つAMPとしては、RNA加水分解の際に中間体として生成される2'-3'-アデノシン一リン酸も存在するが、生理的により重要性の高い3'-5'-アデノシン一リン酸を一般にサイクリックAMPと略記する。本項目においても全て3'-5'-アデノシン一リン酸について解説する。 | ||
== サイクリックAMPの合成 == | == サイクリックAMPの合成 == | ||
サイクリックAMP合成酵素であるアデニル酸シクラーゼ（adenylyl cyclase; AC） | サイクリックAMP合成酵素であるアデニル酸シクラーゼ（adenylyl cyclase; AC）<ref><pubmed> 17615394 </pubmed></ref>は、ATPを基質としてサイクリックAMP とピロリン酸へ変換する除去付加酵素で、形質膜に存在する膜貫通型アデニル酸シクラーゼ（transmembrane adenylyl cyclase; tmAC）と、細胞質中に存在する可溶性アデニル酸シクラーゼ（soluble adenylyl cyclase; sAC）に大別される。 | ||
=== 膜貫通型アデニル酸シクラーゼ === | === 膜貫通型アデニル酸シクラーゼ === | ||
膜貫通型アデニル酸シクラーゼ（transmembrane adenylyl cyclase; tmAC）は12回膜貫通領域を持ち、その触媒部位は、細胞質側で6番目と7番目の膜貫通領域間を繋ぐ領域に存在するC1ドメインと、同じく細胞質側に露出したC末端に存在するC2ドメインが二量体化して構成される。膜貫通型アデニル酸シクラーゼを介してサイクリックAMP濃度上昇を誘発する細胞外リガンドとしては、エピネフリン、ドーパミン、セロトニン、PGE2、アデノシン、PACAP、SDF1等多数の神経伝達物質やホルモンがあるが、これらの代謝調節型受容体は7回膜貫通型のGタンパク質共役型受容体であり、一般にGsタイプの三量体Gタンパク質を介して膜貫通型アデニル酸シクラーゼを活性化する。逆に、Giタイプの三量体Gタンパク質を介する受容体は、膜貫通型アデニル酸シクラーゼを抑制することでサイクリックAMP濃度を減少させる。また、Ca2+、Ca2+/カルモジュリン、プロテインキナーゼA、プロテインキナーゼC、CaMキナーゼ等の作用によっても膜貫通型アデニル酸シクラーゼの活性は調節を受ける。哺乳類においては9種類（AC1―AC9）の膜貫通型アデニル酸シクラーゼが同定されており、脳神経系においては全種類が存在しているが、特にAC1とAC8が強い発現が見られる。 | 膜貫通型アデニル酸シクラーゼ（transmembrane adenylyl cyclase; tmAC）は12回膜貫通領域を持ち、その触媒部位は、細胞質側で6番目と7番目の膜貫通領域間を繋ぐ領域に存在するC1ドメインと、同じく細胞質側に露出したC末端に存在するC2ドメインが二量体化して構成される。膜貫通型アデニル酸シクラーゼを介してサイクリックAMP濃度上昇を誘発する細胞外リガンドとしては、エピネフリン、ドーパミン、セロトニン、PGE2、アデノシン、PACAP、SDF1等多数の神経伝達物質やホルモンがあるが、これらの代謝調節型受容体は7回膜貫通型のGタンパク質共役型受容体であり、一般にGsタイプの三量体Gタンパク質を介して膜貫通型アデニル酸シクラーゼを活性化する。逆に、Giタイプの三量体Gタンパク質を介する受容体は、膜貫通型アデニル酸シクラーゼを抑制することでサイクリックAMP濃度を減少させる。また、Ca2+、Ca2+/カルモジュリン、プロテインキナーゼA、プロテインキナーゼC、CaMキナーゼ等の作用によっても膜貫通型アデニル酸シクラーゼの活性は調節を受ける。哺乳類においては9種類（AC1―AC9）の膜貫通型アデニル酸シクラーゼが同定されており、脳神経系においては全種類が存在しているが、特にAC1とAC8が強い発現が見られる。 | ||
=== 可溶性アデニル酸シクラーゼ === | === 可溶性アデニル酸シクラーゼ === | ||
細胞質タンパク質である可溶性アデニル酸シクラーゼ（soluble adenylyl cyclase; sAC）は、N末端側にC1ドメインとC2ドメインの二つの触媒部位を持ち、その触媒活性はタンパク質分解によりC末端側が切り離されることで上昇する。また、炭酸水素イオン（HCO<sub>3</sub><sup><sub>-</sub></sup>）とCa<sup>2+</sup>の存在により触媒活性が上昇することも知られている。可溶性アデニル酸シクラーゼは精巣で最も発現が強いが、神経系にも発現している。 | 細胞質タンパク質である可溶性アデニル酸シクラーゼ（soluble adenylyl cyclase; sAC）は、N末端側にC1ドメインとC2ドメインの二つの触媒部位を持ち、その触媒活性はタンパク質分解によりC末端側が切り離されることで上昇する。また、炭酸水素イオン（HCO<sub>3</sub><sup><sub>-</sub></sup>）とCa<sup>2+</sup>の存在により触媒活性が上昇することも知られている。可溶性アデニル酸シクラーゼは精巣で最も発現が強いが、神経系にも発現している。 | ||
== サイクリックAMPの分解 == | == サイクリックAMPの分解 == | ||
=== 環状ヌクレオチドホスホジエステラーゼ === | === 環状ヌクレオチドホスホジエステラーゼ === | ||
サイクリックAMPおよびサイクリックGMPの分解酵素である環状ヌクレオチドホスホジエステラーゼ（cyclic nucleotide phosphodiesterase; PDE） | サイクリックAMPおよびサイクリックGMPの分解酵素である環状ヌクレオチドホスホジエステラーゼ（cyclic nucleotide phosphodiesterase; PDE）<ref><pubmed> 17307970 </pubmed></ref>は、細胞質においてサイクリックAMP／サイクリックGMPの環状リン酸ジエステル結合を5'-AMP／5'-GMPに加水分解する酵素で、哺乳類においては21種類（PDE1A-C、2A、3A、3B、4A-D、5A、6A-C、7A、7B、8A、8B、9A、10A、11A）が同定されている。脳神経系においてはほぼ全てのアイソフォームが発現しているが、PDE6は網膜、PDE1Cは嗅上皮に顕著な発現が見られる。基質選択性は個々のアイソフォームごとに異なり、PDE4、PDE7、PDE8はサイクリックAMPのみを、PDE5、PDE6、PDE9はサイクリックGMPのみを、それ以外は両方を分解する。活性制御機構もアイソフォームごとに異なるが、基本的な様式としては、環状ヌクレオチドの直接結合や、サイクリックAMP／サイクリックGMPの主要な効果器であるプロテインキナーゼA／プロテインキナーゼGによるリン酸化によって活性化され、上昇した環状ヌクレオチド濃度を速やかに元のレベルに低下させるという負のフィードバック制御を担う。これ以外にも、Ca<sup>2+</sup>/カルモジュリン、CaMキナーゼII、プロテインキナーゼC、PI3キナーゼ等によっても活性調節を受ける。 | ||
== サイクリックAMPの効果器 == | == サイクリックAMPの効果器 == | ||
サイクリックAMPが直接結合することで活性化される効果器タンパク質として、上述の環状ヌクレオチドホスホジエステラーゼに加えて、プロテインキナーゼA、Epac、CNGチャネルの3種が良く知られている。 | サイクリックAMPが直接結合することで活性化される効果器タンパク質として、上述の環状ヌクレオチドホスホジエステラーゼに加えて、プロテインキナーゼA、Epac、CNGチャネルの3種が良く知られている。 | ||
=== プロテインキナーゼA === | === プロテインキナーゼA === | ||
プロテインキナーゼA（cAMP-dependent protein kinase A; PKA） | プロテインキナーゼA（cAMP-dependent protein kinase A; PKA）<ref><pubmed> 11749379 </pubmed></ref>は、サイクリックAMP依存的に活性化されるセリン／スレオニンリン酸化酵素で、最も重要かつ広範に働くサイクリックAMP効果器である。プロテインキナーゼAは、サイクリックAMP 結合部位を持つ調節サブユニット二つと、リン酸化触媒部位を持つ触媒サブユニット二つにより構成される四量体ホロ酵素であり、サイクリックAMPが調節サブユニットに結合すると、調節サブユニットと触媒サブユニットの結合が解離し、これにより触媒サブユニットのリン酸化活性が出現する。調節サブユニットはRIa、RI、RII、RIIの4種、触媒サブユニットはC、C、Cの3種があり、ホロ酵素としては調節サブユニットの種類によってタイプIとタイプIIの二種のアイソフォームに分類される。サイクリックAMP親和性はタイプIの方がより高い。プロテインキナーゼAによりリン酸化を受ける基質タンパク質は、電位依存性Ca2+チャネル、電位依存性Na+チャネル、AMPA型グルタミン酸受容体、IP3受容体等のイオンチャネル、Ena/VASP、SCG10等の細胞骨格制御因子、単量体Gタンパク質RhoA、接着分子4インテグリン、ミオシン軽鎖キナーゼ等、非常に多くの種類が同定されている。また、CREB（cAMP response element binding protein）<ref><pubmed> 20223527 </pubmed></ref>、NF-B、NFAT等の転写因子をリン酸化することで遺伝子発現をも制御する。 | ||
=== Epac === | === Epac === | ||
Epac（exchange protein directly activated by cAMP） | Epac（exchange protein directly activated by cAMP）<ref><pubmed> 2825350 </pubmed></ref>は、細胞接着や細胞極性、分泌など様々な細胞機能に関与する単量体Gタンパク質の一種であるRapのグアニンヌクレオチド交換因子（guanine nucleotide exchange factor; GEF）として発見された。Epac1とEpac2の2種類のアイソフォームが存在し、さらにEpac2にはEpac2AとEpac2Bの2種のスプライスバリアントが存在する。Epac1とEpac2Bには一箇所、Epac2Aには二箇所のサイクリックAMP結合ドメインが存在し、サイクリックAMP結合によりGEF活性が上昇する。Epac1は心臓と腎臓に発現が多いが、脳を含む他の多くの組織にも偏在している。一方Epac2は脳と副腎に顕著な発現が見られる。Rap以外のEpac効果器として、R-Ras、ホスホリパーゼC、MAPキナーゼ、Akt、PI3キナーゼ等が同定されている。 | ||
=== CNGチャネル === | === CNGチャネル === | ||
CNGチャネル（cyclic nucleotide gated channel; CNG channel）[6]は、網膜光受容器と嗅覚神経細胞において発見された非選択性のカチオンチャネルで、サイクリックAMPまたはサイクリックGMPが直接結合することで開口する。嗅覚神経細胞においては、匂い分子が匂い分子受容体（Gタンパク質共役型受容体）に結合すると、Gタンパク質を介して膜貫通型アデニル酸シクラーゼが活性化され、これにより産生されたサイクリックAMPがCNGチャネルを開口させることで細胞外からNa<sup>+</sup>やCa<sup>2+</sup>が流入し、受容器電位が発生する。光・匂い受容器以外にもCNGチャネルは多くの神経細胞やグリア細胞にも発現が見られる。 | CNGチャネル（cyclic nucleotide gated channel; CNG channel）[6]は、網膜光受容器と嗅覚神経細胞において発見された非選択性のカチオンチャネルで、サイクリックAMPまたはサイクリックGMPが直接結合することで開口する。嗅覚神経細胞においては、匂い分子が匂い分子受容体（Gタンパク質共役型受容体）に結合すると、Gタンパク質を介して膜貫通型アデニル酸シクラーゼが活性化され、これにより産生されたサイクリックAMPがCNGチャネルを開口させることで細胞外からNa<sup>+</sup>やCa<sup>2+</sup>が流入し、受容器電位が発生する。光・匂い受容器以外にもCNGチャネルは多くの神経細胞やグリア細胞にも発現が見られる。 | ||
== サイクリックAMPシグナルの局在化機構 == | == サイクリックAMPシグナルの局在化機構 == | ||
プロテインキナーゼAの触媒サブユニットは、AKAP（A kinase anchoring protein）と総称されるタンパク質に結合することで特定の細胞内コンパートメントに局在化される[7]。AKAPはプロテインキナーゼA以外にも多くの機能タンパク質と結合することでシグナル分子複合体形成のプラットホームとなる。環状ヌクレオチドホスホジエステラーゼの多くもAKAPと結合する。これにより、サイクリックAMPシグナルの局在化が可能になると考えられている。例えば、AKAP79/150はプロテインキナーゼAをシナプス後肥厚に局在させ、シナプス後膜上のNMDA型グルタミン酸受容体、AMPA型グルタミン酸受容体、L型電位依存性Ca2+チャネル等の活性を制御することでシナプス伝達を調節する。また、AKAPの一種であるWAVE1（Wiskott-Aldrich verprolin-homology protein 1）は、神経成長円錐のアクチン骨格にプロテインキナーゼA、Rac、Arp2/3複合体などを局在化させることで細胞運動に関与する。 | プロテインキナーゼAの触媒サブユニットは、AKAP（A kinase anchoring protein）と総称されるタンパク質に結合することで特定の細胞内コンパートメントに局在化される[7]。AKAPはプロテインキナーゼA以外にも多くの機能タンパク質と結合することでシグナル分子複合体形成のプラットホームとなる。環状ヌクレオチドホスホジエステラーゼの多くもAKAPと結合する。これにより、サイクリックAMPシグナルの局在化が可能になると考えられている。例えば、AKAP79/150はプロテインキナーゼAをシナプス後肥厚に局在させ、シナプス後膜上のNMDA型グルタミン酸受容体、AMPA型グルタミン酸受容体、L型電位依存性Ca2+チャネル等の活性を制御することでシナプス伝達を調節する。また、AKAPの一種であるWAVE1（Wiskott-Aldrich verprolin-homology protein 1）は、神経成長円錐のアクチン骨格にプロテインキナーゼA、Rac、Arp2/3複合体などを局在化させることで細胞運動に関与する。 | ||
== 神経系におけるサイクリックAMPの作用 == | == 神経系におけるサイクリックAMPの作用 == | ||
サイクリックAMPは、発生期から成熟期に至るまでの神経細胞の多種多彩な機能の調節に関与する。以下に一部の代表例を列挙する。発生期において神経細胞の分化、生存、突起伸長を促進する神経栄養因子は、サイクリックAMP濃度上昇を促す[8]。神経極性形成過程において、サイクリックAMPが上昇した一本の神経突起は軸索に分化し、それ以外の神経突起は樹状突起に分化する[9]。ネトリン1や神経成長因子等の誘引性軸索ガイダンス因子は、成長円錐内のサイクリックAMP濃度を上昇させる[10]。成長円錐内のサイクリックAMP濃度は軸索ガイダンス因子に対する成長円錐の応答性決定に重要で、高サイクリックAMP濃度状態では成長円錐は誘引され、低サイクリックAMP濃度状態では同じガイダンス因子に対して反発を呈する。損傷を受けた成体中枢神経軸索の再生は困難であるが、サイクリックAMP濃度を薬剤により高めることで軸索再生促進および運動機能回復が見られる[11]。シナプス前終末におけるサイクリックAMP濃度上昇は神経伝達物質の放出を促進する[12]。シナプス後部において、シナプス伝達効率の長期増強に関わるAMPA型グルタミン酸受容体のシナプス後膜への挿入は、プロテインキナーゼA依存的リン酸化によって誘発される[13]。シナプス伝達効率の後期長期増強は遺伝子の転写とタンパク質合成に依存する過程であるが、この転写はプロテインキナーゼA依存的な転写因子CREBのリン酸化によって誘発される[4,14]。 | サイクリックAMPは、発生期から成熟期に至るまでの神経細胞の多種多彩な機能の調節に関与する。以下に一部の代表例を列挙する。発生期において神経細胞の分化、生存、突起伸長を促進する神経栄養因子は、サイクリックAMP濃度上昇を促す[8]。神経極性形成過程において、サイクリックAMPが上昇した一本の神経突起は軸索に分化し、それ以外の神経突起は樹状突起に分化する[9]。ネトリン1や神経成長因子等の誘引性軸索ガイダンス因子は、成長円錐内のサイクリックAMP濃度を上昇させる[10]。成長円錐内のサイクリックAMP濃度は軸索ガイダンス因子に対する成長円錐の応答性決定に重要で、高サイクリックAMP濃度状態では成長円錐は誘引され、低サイクリックAMP濃度状態では同じガイダンス因子に対して反発を呈する。損傷を受けた成体中枢神経軸索の再生は困難であるが、サイクリックAMP濃度を薬剤により高めることで軸索再生促進および運動機能回復が見られる[11]。シナプス前終末におけるサイクリックAMP濃度上昇は神経伝達物質の放出を促進する[12]。シナプス後部において、シナプス伝達効率の長期増強に関わるAMPA型グルタミン酸受容体のシナプス後膜への挿入は、プロテインキナーゼA依存的リン酸化によって誘発される[13]。シナプス伝達効率の後期長期増強は遺伝子の転写とタンパク質合成に依存する過程であるが、この転写はプロテインキナーゼA依存的な転写因子CREBのリン酸化によって誘発される[4,14]。 | ||
==関連項目== | == 関連項目 == | ||
サイクリックAMP依存因子 | |||
サイクリックAMP依存因子 サイクリックGMP カルシウム シグナル伝達 | |||
== 参考文献 == | |||
1. D. Willoughby, D. M. Cooper, Organization and Ca2+ regulation of adenylyl cyclases in cAMP microdomains. | |||
Physiol Rev. 2007, 87; 965-1010 | Physiol Rev. 2007, 87; 965-1010 | ||
2. K. Omori, J. Kotera, | 2. K. Omori, J. Kotera, Overview of PDEs and their regulation. Circ Res. 2007, 100; 309-27 | ||
Overview of PDEs and their regulation. | |||
Circ Res. 2007, 100; 309-27 | |||
3. J. B. Shabb, | 3. J. B. Shabb, Physiological substrates of cAMP-dependent protein kinase. Chem Rev. 2001, 101; 2381-411 | ||
Physiological substrates of cAMP-dependent protein kinase. | |||
Chem Rev. 2001, 101; 2381-411 | |||
4. E. Benito, A. Barco, | 4. E. Benito, A. Barco, CREB's control of intrinsic and synaptic plasticity: implications for CREB-dependent memory models. Trends Neurosci. 2010, 33; 230-40 | ||
CREB's control of intrinsic and synaptic plasticity: implications for CREB-dependent memory models. | |||
Trends Neurosci. 2010, 33; 230-40 | |||
5. M. Grandoch, S. S. Roscioni, M. Schmidt, | 5. M. Grandoch, S. S. Roscioni, M. Schmidt, The role of Epac proteins, novel cAMP mediators, in the regulation of immune, lung and neuronal function. Br J Pharmacol. 2010, 159; 265-84 | ||
The role of Epac proteins, novel cAMP mediators, in the regulation of immune, lung and neuronal function. | |||
Br J Pharmacol. 2010, 159; 265-84 | |||
6. U. B. Kaupp, R. Seifert, | 6. U. B. Kaupp, R. Seifert, Cyclic nucleotide-gated ion channels. Physiol Rev. 2002, 82; 769-824 | ||
Cyclic nucleotide-gated ion channels. | |||
Physiol Rev. 2002, 82; 769-824 | |||
7. W. Wong, J. D. Scott, | 7. W. Wong, J. D. Scott, AKAP signalling complexes: focal points in space and time. Nat Rev Mol Cell Biol. 2004, 5; 959-70 | ||
AKAP signalling complexes: focal points in space and time. | |||
Nat Rev Mol Cell Biol. 2004, 5; 959-70 | |||
8. D. Cai, Y. Shen, M. De Bellard, S. Tang, M. T. Filbin, | 8. D. Cai, Y. Shen, M. De Bellard, S. Tang, M. T. Filbin, Prior exposure to neurotrophins blocks inhibition of axonal regeneration by MAG and myelin via a cAMP-dependent mechanism. Neuron. 1999, 22; 89-101 | ||
Prior exposure to neurotrophins blocks inhibition of axonal regeneration by MAG and myelin via a cAMP-dependent mechanism. | |||
Neuron. 1999, 22; 89-101 | |||
9. M. Shelly, M. M. Poo, | 9. M. Shelly, M. M. Poo, Role of LKB1-SAD/MARK pathway in neuronal polarization. Dev Neurobiol. 2011, 71; 508-27 | ||
Role of LKB1-SAD/MARK pathway in neuronal polarization. | |||
Dev Neurobiol. 2011, 71; 508-27 | |||
10. T. Tojima, J. H. Hines, J. R. Henley, H. Kamiguchi, | 10. T. Tojima, J. H. Hines, J. R. Henley, H. Kamiguchi, Second messengers and membrane trafficking direct and organize growth cone steering. Nat Rev Neurosci. 2011, 12; 191-203 | ||
Second messengers and membrane trafficking direct and organize growth cone steering. | |||
Nat Rev Neurosci. 2011, 12; 191-203 | |||
11. S. S. Hannila, M. T. Filbin, | 11. S. S. Hannila, M. T. Filbin, The role of cyclic AMP signaling in promoting axonal regeneration after spinal cord injury. Exp Neurol. 2008, 209; 321-32 | ||
The role of cyclic AMP signaling in promoting axonal regeneration after spinal cord injury. | |||
Exp Neurol. 2008, 209; 321-32 | |||
12. S. Seino, T. Shibasaki, | 12. S. Seino, T. Shibasaki, PKA-dependent and PKA-independent pathways for cAMP-regulated exocytosis. Physiol Rev. 2005, 85; 1303-42 | ||
PKA-dependent and PKA-independent pathways for cAMP-regulated exocytosis. | |||
Physiol Rev. 2005, 85; 1303-42 | |||
13. P. V. Nguyen, N. H. Woo, | 13. P. V. Nguyen, N. H. Woo, Regulation of hippocampal synaptic plasticity by cyclic AMP-dependent protein kinases. Prog Neurobiol. 2003, 71; 401-37 | ||
Regulation of hippocampal synaptic plasticity by cyclic AMP-dependent protein kinases. | |||
Prog Neurobiol. 2003, 71; 401-37 | |||
14. Z. Xia, D. R. Storm, | 14. Z. Xia, D. R. Storm, The role of calmodulin as a signal integrator for synaptic plasticity. Nat Rev Neurosci. 2005, 6; 267-76 | ||
The role of calmodulin as a signal integrator for synaptic plasticity. | |||
Nat Rev Neurosci. 2005, 6; 267-76 | |||
執筆者：戸島 拓郎、上口 裕之 担当編集委員：尾藤 晴彦） | 執筆者：戸島 拓郎、上口 裕之 担当編集委員：尾藤 晴彦） | ||