「ヒストンメチル基転移酵素」の版間の差分

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#redirect [[ヒストン#.E3.83.A1.E3.83.81.E3.83.AB.E5.8C.96]]
<font size="+1">久能 修、[http://researchmap.jp/kinichinakashima 中島 欽一]</font><br>
''九州大学 大学院医学研究院 応用幹細胞医科学部門 基盤幹細胞学分野''<br>
DOI：<selfdoi />　原稿受付日：2023年5月13日　原稿完成日：2023年5月21日<br>
担当編集委員：[http://researchmap.jp/read0192882 古屋敷 智之]（神戸大学大学院医学研究科・医学部 薬理学分野）<br>
</div>
英：histone methyl transferase<br>
英略称：HMT
 
{{box|text=　ヒストンメチル基転移酵素はヒストンは特定のアミノ酸残基をメチル化する。それにより、遺伝子発現、細胞周期、ゲノムの安定性、核構造の調節など、細胞の重要な機能が制御される。ヒストンメチル基転移酵素はヒストンリジンメチル基転移酵素（KMT）とタンパク質アルギニンメチル基転移酵素（PRMT）の2つに分類され、ヒストンリジンメチル基転移酵素はさらにSETドメイン型と非SETドメイン型に分類される。神経系では、ヒストンメチル基転移酵素はニューロンの発生、成熟、機能、維持に関与しており、その異常な活性化または不活性化は、神経疾患に繋がる。}}
 
== 歴史・背景 ==
[[ファイル:Nakashima HMT Fig1.png|サムネイル|'''図1. ヒストンリジンメチル基転移酵素(KMT)のメチル化機構'''<br>AdoMet: S-adenosyl-L-methionine、AdoHcy: S adenosyl-L-homocysteine。文献<ref name=Tsukada2007><pubmed>17763704</pubmed> [https://www.jbsoc.or.jp/seika/wp-content/uploads/2018/12/79-07-09.pdf PDF]</ref> より改変。]][[ファイル:Nakashima HMT Fig2.png|サムネイル|'''図2. タンパク質アルギニンメチル基転移酵素素(PRMT)のメチル化機構'''<br>AdoMet: S-adenosyl-L-methionine、AdoHcy: S adenosyl-L-homocysteine。文献<ref name=Tsukada2007><pubmed>17763704</pubmed> [https://www.jbsoc.or.jp/seika/wp-content/uploads/2018/12/79-07-09.pdf PDF]</ref> より改変。]]　1964年に[[ゲノム]][[DNA]]の[[mRNA]]への[[転写]]が[[ヒストン]]タンパク質の[[リジン]]のε-アミノ基のメチル化によって調節されることが見出された<ref name=Allfrey1964><pubmed>17836360</pubmed></ref>('''図1''')。しかし、[[w:Thomas Jenuwein|Thomas Jenuwein]]らにより、最初の[[ヒストンリジンメチル基転移酵素]]である[[ヒト]]および[[マウス]] [[suppressor of variegation 3-9 homolog1]] ([[SUV39H1]]、[[KMT1A]]としても知られる) が報告されたのは2000年になってからのことであった。その後、[[ショウジョウバエ]]の３つのタンパク質、[[Su(var)3-9]]、[[Enhancer of Zeste]]、[[Trithorax]]が共通して持つ[[SETドメイン]]とのホモロジー検索により、多くのヒストンリジンメチル基転移酵素が同定された<ref name=Dillon2005><pubmed>16086857</pubmed></ref><ref name=Jenuwein2006><pubmed>16857008</pubmed></ref>。
 
　一方、タンパク質アルギニンメチル基転移酵素は、ヒストンやその他のタンパク質のアルギニン残基のメチル化を触媒することによって様々な生物学的プロセスに関与する('''図2''')。ヒストンタンパク質のアルギニン残基のメチル化が発見された1967年以降から現在までに哺乳類で9つが同定されている。
 
　いずれも[[S-アデノシル-L-メチオニン]] ([[S-adenosyl-L-methionine]], [[SAM]]/[[Adomet]])を[[補因子]]として、リジンあるいはアルギニン残基にメチル基を転移させる。[[酵母]]からヒトまで広く[[真核生物]]で進化的に保存されている<ref name=Rea2000><pubmed>10949293</pubmed></ref>。
 
== 分類 ==
　ドメイン構造、標的分子となるヒストン残基とメチル化の数で分類される('''表1''')。
===ヒストンリジンメチル基転移酵素===
　SETドメイン型、非SETドメイン型の2つのクラスから構成される。
==== SETドメイン型 ====
　SETドメインを持ち、ヒストンリジンメチル基転移酵素の大部分を占める。
 
　SETドメインは、一次配列のN末端とC末端によって形成される2つの領域からなり、それぞれSET-NとSET-Cという。それぞれの領域には、3〜4本の短い[[β-ストランド]]、短い[[ヘリックス]]、およびこれらの二次構造をつなぐいくつかのループが含まれている<ref name=Marmorstein2003><pubmed>12575990</pubmed></ref>。またSETに隣接する領域は、SETドメイン構造の安定化とともにメチル化酵素の活性に必要である<ref name=Marmorstein2003><pubmed>12575990</pubmed></ref>。
 
==== 非SETドメイン型 ====
　SETドメインの代わりにseven-beta-strand (7βS)ドメインを持ち、このドメインが[[ヌクレオソーム]]表面に露出しているヒストン H3 の79番目のリジン残基（H3K79）に対するメチル基供与活性を持つ<ref name=Husmann2019><pubmed>31582846</pubmed></ref><ref name=Kim2014><pubmed>24526115</pubmed></ref><ref name=Park2022><pubmed>35794091</pubmed></ref>。Dot1 like protein ([[DOT1L]]。[[KMT4]]としても知られる）の1種類のみが属する<ref name=Okada2005><pubmed>15851025</pubmed></ref><ref name=vanLeeuwen2002><pubmed>12086673</pubmed></ref>。
 
=== タンパク質アルギニンメチル基転移酵素 ===
　共通のメチルトランスフェラーゼ（MTase）ドメインを持つ。また一部には、[[リン酸化]]や[[酸化]]などの修飾を介してシグナル伝達に関与するドメインを持つものも存在する<ref name=Lee2005><pubmed>16051612</pubmed></ref><ref name=Iwasaki2007><pubmed>17971302</pubmed></ref>。
 
　メチル化機構の様式によりタイプI（[[PRMT1]]~[[PRMT4|4]], [[PRMT6|6]], [[PRMT8|8]]; PRMT4は[[CARM1]]とも呼ばれる）、タイプII（PRMT5, [[PRMT9|9]]）、タイプIII（[[PRMT7]]）に分類される。タイプIとIIの タンパク質アルギニンメチル基転移酵素のみが、モノメチル化されたアルギニンをさらに二次メチル化する触媒作用を持ち、タイプIIIタンパク質アルギニンメチル基転移酵素はモノメチル化活性のみが知られている<ref name=Hashimoto2021><pubmed>33127433</pubmed></ref>。タイプIとIIの違いは、タイプIは非対称型ジメチルアルギニンを形成し、タイプIIは対称型ジメチルアルギニン（SDMA）を形成する点である('''図2''')。タイプI タンパク質アルギニンメチル基転移酵素のうち，PRMT1は[[哺乳類]]において85%の非対称型ジメチルアルギニンの生合成を担っている<ref name=Tang2000><pubmed>10713084</pubmed></ref>。
 
{| class="wikitable"
|+表1. ヒストンメチル基転移酵素のドメインと標的分子による分類
!  !!標的!!酵素名(供与できるメチル基)
|-
!rowspan="24"|ヒストンリジンメチル基転移酵素(SETドメイン型)
|-
|rowspan="9"|H3K4 ||[[SETD1A]] (me1, me2, me3)
|-
|[[SETD1B]] (me1, me2, me3)
|-
|[[MLL1]] (me1, me2, me3)
|-
|[[MLL2]] (me1, me2, me3)
|-
|[[MLL3]] (me1, me2, me3)
|-
|[[MLL4]] (me1, me2, me3)
|-
|[[SETD7]] (me1)
|-
|[[SMYD3]] (me2, me3)
|-
|[[PRDM9]] (me3)
|-
|rowspan="6"|H3K9 ||SETDB1 (me1, me2, me3)
|-
|[[G9a]] (me1, me2)
|-
|[[EHMT1]] (me1, me2)
|-
|[[PRDM2]] (me1, me2)
|-
|[[SUV39H1]] (me2, me3)
|-
|[[SUV39H2]] (me2, me3)
|-
|rowspan="2"|H3K27 ||[[EZH1]] (me2, me3)
|-
|[[EZH2]] (me2, me3)
|-
|rowspan="6"|H3K36 ||[[SETD2]] (me1, me2, me3)
|-
|[[NSD1]] (me1, me2)
|-
|[[NSD2]] (me1, me2)
|-
|[[NSD3]] (me1, me2)
|-
|[[ASH1L]] (me1, me2)
|-
|[[SMYD2]] (me2)
|-
! ヒストンリジンメチル基転移酵素(非SETドメイン型)
|H3K79||[[DOT1L]] (me1, me2, me3)
|-
!rowspan="3"|ヒストンリジンメチル基転移酵素(SETドメイン型)
|rowspan="3"|H4K20 ||[[SETD8]] (me1)
|-
||[[SUV420H1]] (me2, me3)
|-
|[[SUV420H2]] (me2, me3)
|-
!rowspan="13"|タンパク質アルギニンメチル基転移酵素
|rowspan="4"|H3R2 ||[[CARM1]] ([[PRMT4]]) (me1, me2(a))
|-
|[[PRMT5]] (me1, me2(s))
|-
|[[PRMT6]] (me1, me2(a))
|-
|[[PRMT7]] (me1, me2(s))
|-
|H3R8 ||[[PRMT5]] (me1, me2(s))
|-
|H3R17 ||CARM1 (me1, me2(a))
|-
|H3R26 ||CARM1 (me1, me2(a))
|-
|rowspan="3"|H4R3 ||[[PRMT1]] (me1, me2(a))
|-
|PRMT5 (me1, me2(s))
|-
|PRMT6 (me1, me2(a))
|-
|rowspan="2"|未同定||[[PRMT2]]
|-
|[[PRMT3]]
|}
 
凡例：me1, me2, me3はそれぞれモノメチル化、ジメチル化、トリメチル化を表す。<br>
(s)は対称 (symmetric), (a)は非対称 (asymmetric) なジメチル化を表す。<br>
それぞれのメチル化機構は'''図1'''にまとめた。
 
==組織・細胞分布 ==
　多くのヒストンメチル基転移酵素は様々な組織で発現しているが、中でもいくつかのヒストンリジンメチル基転移酵素は組織特異的な発現、細胞特異的な発現を示す。組織特異的な発現のある主なヒストンメチル基転移酵素を'''表2'''、組織特異的な発現は示さないが、細胞特異的な発現を示すヒストンメチル基転移酵素を'''表3'''に示した。詳細は[https://www.proteinatlas.org/ The Human Protein Atlas]を参考。
{| class="wikitable"
|+表2. 組織特異的な発現を示すヒストンメチル基転移酵素
! 酵素名 !! 特異的に発現する組織 !! 特異的に発現する細胞
|-
| [[PRDM9]] || [[脳]]、[[精巣上体]]、[[精巣]] || [[精母細胞]]
|-
| SUV39H2 || 精巣 || 初期[[精子]]細胞
|-
| EZH1 || [[網膜]] ||
|-
| EZH2 || [[骨髄]]、[[リンパ系組織]]、精巣 || 初期精子細胞、[[有糸分裂]]細胞（[[大腸]]）
|-
| SMYD2 || [[心筋]] || 心筋細胞、[[壁細胞]]（[[胃]]）、[[セルトリ細胞]]（精巣）
|-
| DOT1L || 精巣 || 初期精子細胞
|-
| CARM1 || [[骨格筋]] || [[脂肪前駆細胞]]（[[内臓脂肪]]）
|-
| [[PRMT8]] || 脳、網膜、精巣 || 腸管[[内分泌]]細胞（大腸）、[[線毛上皮]]細胞（[[肺]]）、精子細胞
|}
{| class="wikitable"
|+表3. 細胞特異的な発現を示すヒストンメチル基転移酵素
! 酵素名 !! 特異的に発現する細胞
|-
| SETD1A || 精原細胞
|-
| MLL2 || 精母細胞、精原細胞
|-
| SETD7 || セルトリ細胞
|-
| SMYD3 || 脂肪前駆細胞
|-
| SETDB1 || 精母細胞
|-
| SUV39H1 || 脂肪細胞、セルトリ細胞
|-
| SETD2 || 精母細胞
|-
| NSD1 || [[甲状腺]]細胞
|-
| NSD2 || 精母細胞
|-
| ASH1L || 精母細胞
|-
| SETD8 || 角化細胞、甲状腺細胞
|-
| PRMT5 || 精母細胞、[[精原細胞]]
|-
| PRMT6 || 甲状腺細胞
|-
| PRMT9 || 初期精子細胞、精母細胞
|}
 
== 分子機能 ==
　各クラスは触媒ドメインは異なるものの、いずれもメチル基供与体として [[S-アデノシル-L-メチオニン]] ([[SAM]]/[[Adomet]]) を使用する<ref name=Dillon2005><pubmed>16086857</pubmed></ref><ref name=Nguyen2011><pubmed>21724828</pubmed></ref>。リジン残基には1～3個のメチル基が、アルギニン残基に1あるいは2個のメチル基が付加される('''図1, 2''')。モノ・ジ・トリメチル化のどの状態まで触媒するかは'''表1'''に示したようにそれぞれの特異性によって分かれている。ヒストンH3のリジン残基ではK4(4番目のリジン残基)、K9、K27、K36、K79が、アルギニン残基ではR2(2番目のアルギニン残基)、R8、R17、R26がメチル化され、ヒストンH4ではK20、R3がメチル化される。
 
　それぞれメチル化される残基の位置によって転写の活性化に関与するものと抑制に関与するものが存在しており、一般的にはH3K4、K36、K79、R17は転写活性化、H3K9、K27、H4K20は転写抑制に関与すると考えられている<ref name=DiNisio2021><pubmed>33859667</pubmed></ref><ref name=Park2022><pubmed>35794091</pubmed></ref><ref name=Bauer2002><pubmed>11751582</pubmed></ref>。
 
== 神経細胞での機能 ==
===ヒストンリジンメチル基転移酵素 ===
　[[神経幹細胞]]は自己複製能と[[ニューロン]]、[[アストロサイト]]及び[[オリゴデンドロサイト]]への[[多分化能]]を持っており、脳の発達と[[恒常性]]にとって重要な役割を果たしているが、神経幹細胞の[[増殖]]・[[複製]]と[[分化]]には多くのヒストンリジンメチル基転移酵素が関与している。増殖にはSetd8の関与が示唆されており、Setd8に変異を加えることで機能が失われると、脳内のH4K20モノメチル化が失われるとともに休止状態にある神経幹細胞の再活性化が遅れることが報告されている<ref name=Wickramasekara2019><pubmed>30832413</pubmed></ref>。また、Setd8は[[サイクリン依存性キナーゼ１]]([[Cdk1]])や[[Wntシグナル経路]]の転写コアクチベーターである[[earthbound1]]/[[jerky]]([[Ebd1]])の[[プロモーター]]領域に結合し、脳内でのCdk1およびEbd1の発現に必要であることも報告されている <ref name=Huang2021><pubmed>33565211</pubmed></ref>。Setd8と同様に、Cdk1とEbd1は神経幹細胞の再活性化を促進することがわかっており、Cdk1とEbd1の過剰発現によってSetd8変異脳で観察された神経幹細胞再活性化の障害を改善できることが示されている。これらの結果からSetd8は、Wntシグナル伝達と[[細胞周期]]の進行を調節することにより、神経幹細胞の再活性化を促進すると考えられる<ref name=Huang2021><pubmed>33565211</pubmed></ref>。
 
　神経前駆細胞からニューロンへの分化においてはSetdb1が重要な役割を果たしている。Setdb1は脳の発生初期の神経前駆細胞において高発現しており、ニューロン分化に必要な遺伝子の発現を抑制しているが、発生進行に伴いSetdb1の発現は低下するため、ニューロンへの分化が可能になる。しかし、発生初期からSetdb1が欠失すると、メカニズムは不明であるが、ニューロンへの分化と成熟に必要な遺伝子の発現が阻害され、ニューロン生成は妨げられる<ref name=Tan2012><pubmed>22991445</pubmed></ref>。一方で、分化後のニューロンにおいてSetdb1を過剰発現させると、[[空間認知障害]]や[[うつ様行動]]が誘発されるなど、Setdb1はニューロンのそれぞれの分化過程において異なる作用を持っている<ref name=Bharadwaj2014><pubmed>25467983</pubmed></ref><ref name=Jiang2010><pubmed>20505083</pubmed></ref>。
 
　G9aや[[G9a-like protein]] ([[GLP]])も神経系において重要な役割を果たしている。[[前脳]]ニューロン特異的なG9aまたはGlpの欠損（ノックアウト）マウスにおいて、生後間もない状態では、明らかなニューロンの早期発達や構造上の欠陥は見られないが、生後6～8週齢のマウスでは、成熟ニューロン特異的な遺伝子発現パターンの変化や[[学習]]・[[記憶]]や[[意欲]]・[[報酬系]]の障害が見られる<ref name=Schaefer2009><pubmed>20005824</pubmed></ref>。さらに[[コカイン]]の反復曝露によって、G9aの発現レベルが[[側坐核]]ニューロンで特異的に低下し、H3K9me2のレベルが有意に低下する<ref name=Maze2010><pubmed>20056891</pubmed></ref>。G9aの発現レベル低下を補完すると、コカインによるニューロンの形態変化、薬物依存行動としての常同行動の増加やストレスへの強い反応などに代表される行動変化は抑制される。また、側座核ニューロンにおいてG9aを特異的に不活性化すると、コカインに曝露せずともニューロン形態変化が変化し、コカインに対する嗜好性も増強される。以上よりG9aの発現抑制の解除はコカインへの渇望を抑制するための効果的治療法となりうると考えられる<ref name=Shinkai2011><pubmed>21498567</pubmed></ref>。
 
　Ezh2とSuv4-20hは、[[グリア線維性酸性タンパク質]]（[[glial fibrillary acidic protein]], [[GFAP]])陽性の[[放射状グリア細胞]]においてニューロンへの分化を共同で調節しており、両遺伝子の欠失は[[海馬]]の発達に劇的な欠陥を引き起こす（単一ノックアウトでは観察されない）<ref name=Chang2022><pubmed>34890048</pubmed></ref>。また成体海馬においては、Ezh2とSuv4-20hが[[神経前駆細胞]]で異なる役割を果たすことが報告されており<ref name=Rhodes2023><pubmed>36018148</pubmed></ref> 、Ezh2は早期分化を抑制することにより神経前駆細胞集団の維持に大きな役割を果たし、一方でSuv4-20hは神経前駆細胞の細胞周期の[[S期]]進行を仲介することで神経前駆細胞の増殖に影響を与えると考えられている<ref name=Rhodes2018><pubmed>29433384</pubmed></ref><ref name=Rhodes2017>'''Rhodes, C. (2017).'''<br>Epigenetic Repression in the Context of Adult Neurogenesis. 2017, The University of Texas at San Antonio.</ref>。
 
　Suv39h1/2によるH3K9メチル化は、成体海馬の神経前駆細胞からニューロンへの分化を制御していることがわかっている。成体海馬の神経前駆細胞におけるSuv39h1/2の薬理学的阻害は、ニューロン分化を阻害する一方で増殖を亢進させた<ref name=Guerra2021><pubmed>35096813</pubmed></ref>。さらに、[[歯状回]]でSuv39h1/2をノックダウンするとニューロン新生が阻害されたことから、Suv39h1/2を介したH3K9me3が成体海馬のニューロン新生に重要な役割を果たしていると考えられる<ref name=Guerra2021><pubmed>35096813</pubmed></ref>。
 
　成体での[[脳室下帯]]のニューロン新生においてはMll1が必須であり、Mll1欠損の神経幹細胞ではニューロンへの分化がほとんど起こらず、グリア系列に分化したという報告がある<ref name=Potts2014><pubmed>24887289</pubmed></ref><ref name=Lim2009><pubmed>19212323</pubmed></ref>。脳室下帯に存在する神経前駆細胞では、通常[[Dlx2]]遺伝子の転写開始点が高レベルのH3K4me3を有することで転写が活性化されている。一方Mll1欠損神経前駆細胞では、[[Dlx2]]遺伝子の[[クロマチン]]でこのH3K4me3が維持され、また[[転写抑制]]に関与するH3K27me3により二重にマークされることで、Dlx2の発現が抑制されている<ref name=Lim2009><pubmed>19212323</pubmed></ref>。
 
===タンパク質アルギニンメチル基転移酵素===
　近年の研究により、ヒストンリジンメチル基転移酵素に加え、タンパク質アルギニンメチル基転移酵素も[[中枢神経系]]の発生や維持に関与していることが報告されており、Prmt6は、発達中のマウス[[大脳皮質]]における神経前駆細胞の分化・増殖に必須であることが明らかになった<ref name=Bouchard2018><pubmed>30232013</pubmed></ref>。
 
　Prmt1はマウス胚の神経幹/前駆細胞で高発現しており、神経幹/前駆細胞でのPrmt1のノックダウンは[[アストロサイト]]への分化を抑制するという報告がある<ref name=Honda2017><pubmed>28695568</pubmed></ref>。神経幹/前駆細胞のアストロサイト分化には転写因子である[[シグナル伝達兼転写活性化因子3]] ([[signal transducer and activator of transcription 3]], [[STAT3]])が重要であることが知られているが<ref name=Nakashima1999><pubmed>10205054</pubmed></ref> 、Prmt1はSTAT3のアルギニン残基をメチル化してSTAT3の転写活性化能を増強することにより、神経幹/前駆細胞のアストロサイト分化を促進する<ref name=Honda2017><pubmed>28695568</pubmed></ref>。またPrmt1の中枢神経系特異的欠損マウスでは、野生型マウスと同様に出生するものの生後2週間ほどで死亡し、脳では成熟[[オリゴデンドロサイト]]やその[[オリゴデンドロサイト前駆細胞|前駆細胞]]の減少が認められた<ref name=Hashimoto2016><pubmed>26637354</pubmed></ref>。
 
　Prmt5は大脳皮質の神経幹細胞発生時に[[Schwann cell factor 1]]（[[SC1]]）によって標的遺伝子にリクルートされることで、神経幹細胞の増殖能と多分化能を維持することが報告されている<ref name=Chittka2012><pubmed>23048031</pubmed></ref>。
 
== 疾患との関わり ==
===脳神経系疾患===
====ヒストンリジンメチル基転移酵素====
　Setdb1は、[[脳腫瘍]]において一般的に過剰発現され、主にヒストンH3K9me3を誘導し、[[腫瘍抑制遺伝子]]の発現を抑制する<ref name=Sepsa2015><pubmed>25602259</pubmed></ref>。また、[[統合失調症]]や[[うつ病]]などの[[気分障害]]、[[認知障害]]では、Setdb1の発現が上昇し、[[NMDA型グルタミン酸受容体]]サブユニット[[Grin2B]]の発現を抑制する<ref name=Bharadwaj2014><pubmed>25467983</pubmed></ref><ref name=Avramopoulos2007><pubmed>18007143</pubmed></ref>。これらの疾患では、[[陰性症状]]優位の表現型や疾患予後の悪化と関連している。さらに、[[ハンチントン病]]ではSetdb1の発現が上昇し、ハンチントン病の病因に関与する重要な遺伝子の発現低下と関連するとの報告がある<ref name=Ryu2006><pubmed>17142323</pubmed></ref>。
 
　一方、Setdb1遺伝子が欠損すると、[[シナプス形成]]に重要な[[IL1RAPL1]]（Interleukin-1 receptor accessory protein-like 1）遺伝子の[[エンハンサー]]が活性化され、その発現が亢進する<ref name=Sun2018><pubmed>30103804</pubmed></ref><ref name=Markouli2021><pubmed>33279625</pubmed></ref>。この遺伝子の発現亢進が[[自閉スペクトラム症]]を含む精神・神経疾患の原因である可能性が示されている。
 
　また、[[レット症候群]]の原因遺伝子[[Mecp2]]との関与も報告されており、レット症候群のモデル動物であるMecp2ノックアウトマウスの、ニューロンにおけるSetdb1を介したH3K9の過度なメチル化は、MeCP2の欠損のみによる表現型を、さらに悪化させることがわかっている<ref name=Jiang2011><pubmed>20869373</pubmed></ref>。
 
====タンパク質アルギニンメチル基転移酵素ファミリー====
　Prmt1が神経系疾患に関与していることが報告されている。[[fused in sarcoma]] ([[FUS]])遺伝子の変異は[[筋萎縮性側索硬化症]] ([[amyotrophic lateral sclerosis]], [[ALS]])の原因の１つであり、[[前頭側頭型認知症]] ([[frontotemporal dementia]], [[FTD]])にも関与するが、Prmt1をノックアウトするとこれらの疾患に関連するFUS変異体による[[細胞毒性]]が増強される<ref name=Vance2009><pubmed>19251628</pubmed></ref><ref name=Tradewell2012><pubmed>21965298</pubmed></ref><ref name=Yamaguchi2012><pubmed>23152885</pubmed></ref>。この結果から、Prmt1がFUSのメチル化を介して、細胞内での凝集体形成や細胞毒性の抑制に寄与することが示唆されている。
 
　さらにPrmt1 は、アポトーシス促進性の[[BCL-2 antagonist of cell death]]（[[BAD]]）タンパク質をメチル化することにより[[Akt]]からのリン酸化を阻害し、その結果アポトーシスを亢進させることが示されている<ref name=Sakamaki2011><pubmed>21444773</pubmed></ref>。最近の報告によると、[[Btg1]]ノックアウト[[髄芽腫]]モデルマウスでは、Prmt1の発現が増加し、このPrmt1-BAD軸を介して腫瘍のアポトーシスを亢進することで、腫瘍の発生を抑制している。<ref name=Ceccarelli2020><pubmed>32231994</pubmed></ref>。一方で[[神経膠腫]]細胞株においてPrmt1をノックダウンすると、細胞周期が停止し、アポトーシスに至った<ref name=Wang2012><pubmed>22917032</pubmed></ref>。これらの結果は、Prmt1が様々な種類の腫瘍細胞において異なる機能を果たす可能性を示唆している。
 
===腫瘍===
====ヒストンリジンメチル基転移酵素====
　[[ポリコーム抑制複合体]]（[[polycomb repressive complex]], [[PRC]]）は、発生過程において体の[[前後軸]]や[[体節]]を決定する[[ホメオボックス遺伝子]]の発現制御にかかわるものとして知られるが、その制御には特に[[PRC2]]複合体に含まれるEzh2の作用が重要である。Ezh2は、そのヒストンメチル基転移酵素活性を使用してH3K27me3を触媒し、[[E-カドへリン]]、[[p16INK4α]]、[[p57]]、[[PSP94]]などの[[腫瘍抑制遺伝子]]を抑制しており<ref name=Cao2002><pubmed>12351676</pubmed></ref> 、Ezh2の過剰発現は[[子宮内膜がん]]、[[肺がん]]、[[黒色腫]]、[[乳がん]]、[[膀胱がん]]および[[結腸直腸がん]]におけるがん細胞の増殖、移動、および浸潤を促進する<ref name=Eskander2013><pubmed>23792601</pubmed></ref><ref name=Serresi2018><pubmed>30487290</pubmed></ref><ref name=Yomtoubian2020><pubmed>31968251</pubmed></ref>。
 
====タンパク質アルギニンメチル基転移酵素====
　タンパク質アルギニンメチル基転移酵素の過剰発現によってがんの増殖と転移を促進するとの報告がある。PRMT1は、[[急性骨髄性白血病]]における白血病細胞の増殖を促進することが示されており<ref name=He2019><pubmed>31217189</pubmed></ref><ref name=Zhu2019><pubmed>31395602</pubmed></ref><ref name=Liu2019><pubmed>31667013</pubmed></ref> 、他の研究では、PRMT1 の過剰発現によってE-カドへリンと [[Twist1]]（[[Twist family BHLH transcription factor 1]]）のメチル化を介して肺がんの転移と浸潤を促進する<ref name=Avasarala2015><pubmed>25847239</pubmed></ref>。またPRMT1が[[c-GAS]]のアルギニン残基をメチル化して二量体化を阻害し、腫瘍細胞において、[[自然免疫]]経路であるc-GAS/[[STING]]シグナルを抑制することで、腫瘍化を促進することも報告された<ref name=Liu2023><pubmed>37193698</pubmed></ref>。PRMT5 については、[[上皮成長因子受容体]] ([[epidermal growth factor receptor]], [[EGFR]])/ AKT / [[β-カテニン]]シグナル伝達経路を介して[[膵臓がん]]細胞の悪性度を高める<ref name=Ge2020><pubmed>31851779</pubmed></ref>。
 
==関連語==
* [[ヒストン]]
* [[ヒストン脱メチル化酵素]]
* [[エピジェネティクス]]
* [[メチル化]]
 
==参考文献==
<references />

2013年11月24日 (日) 10:03時点における版

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