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<font size="+1">[http://researchmap.jp/hota-koba/?lang=japanese 小林 穂高]、[http://researchmap.jp/mitsunorifukuda/?lang=japanese 福田 光則]</font><br>
''東北大学大学院生命科学研究科生命機能科学専攻''<br>
DOI：<selfdoi />　原稿受付日：2012年4月11日　原稿完成日：2013年5月25日<br>
担当編集委員：[http://researchmap.jp/2rikenbsi 林 康紀]（独立行政法人理化学研究所 脳科学総合研究センター）<br>
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英語名：endosome　独：Endosom　仏：endosome
英語名：endosome


{{box
　エンドソームはエンドサイトーシスによって細胞内へと取り込まれた様々な物質の選別・分解・再利用などを制御するオルガネラの総称である。エンドソームは形態的な特徴や機能的な特徴をもとに、初期エンドソーム（early endosome）[1] [2]・後期エンドソーム（late endosome）[3] [4]・リサイクリングエンドソーム（recycling endosome）[5] [6]に大別される。エンドソームはメンブレントラフィックの中継地点として機能することで細胞内の物質輸送を司ることから、神経機能をはじめとする様々な生命現象において重要な役割を果たしている。
|text=　エンドソームは[[エンドサイトーシス]]によって細胞内へと取り込まれた様々な物質の選別・分解・再利用などを制御する[[wikipedia:JA:オルガネラ|オルガネラ]]の総称である。エンドソームは形態的な特徴や機能的な特徴をもとに、初期エンドソーム（early endosome）<ref name=ref1><pubmed>20110990</pubmed></ref> <ref name=ref2><pubmed>21955996</pubmed></ref>・後期エンドソーム（late endosome）<ref name=ref3><pubmed>18502633</pubmed></ref><ref name=ref4><pubmed>21878991</pubmed></ref>・リサイクリングエンドソーム（recycling endosome）<ref name=ref5><pubmed>16636069</pubmed></ref><ref name=ref6><pubmed>19696797</pubmed></ref>に大別される。エンドソームは膜輸送の中継地点として機能することで細胞内の物質輸送を司ることから、神経機能をはじめとする様々な生命現象において重要な役割を果たしている。}}


== エンドソームの種類と機能 ==
== 種類と機能 ==


[[image:エンドソーム図1 new.png|thumb|400px|'''図１　エンドソームの種類とエンドソームを介した小胞輸送（膜輸送）経路'''<br>エンドソームは初期エンドソーム・後期エンドソーム・リサイクリングエンドソームに大別される。エンドサイトーシスによって細胞内へと取り込まれた物質は、まず初期エンドソームへと輸送される。初期エンドソームを起点として、分解される物質（TrkA）は分解経路へと、細胞膜で再利用される物質（β1-インテグリン、N-カドヘリン）はリサイクリング経路へと選別されていく。初期エンドソームにおいて分解経路へと選別された物質は、初期エンドソームに留まる。そして初期エンドソームが後期エンドソームへと成熟すると、後期エンドソームがリソソームと融合し、内腔小胞ごと膜貫通型のタンパク質も分解される。初期エンドソームにおいてリサイクリング経路へと選別された物質は、初期エンドソームから直接、あるいは核近傍のリサイクリングエンドソームへと輸送されたのち、細胞膜へと戻され再利用される。]]
　エンドソームは形態的な特徴や機能的な特徴をもとに、初期エンドソーム・後期エンドソーム・リサイクリングエンドソームに大別される（図１）。


　エンドソームは形態的な特徴や機能的な特徴をもとに、初期エンドソーム・後期エンドソーム・リサイクリングエンドソームに大別される（図１）。


=== 初期エンドソーム ===
=== 初期エンドソーム ===


　初期エンドソームは、エンドサイトーシスされた物質を選別する場として機能するオルガネラである<ref name=ref1><pubmed>20110990</pubmed></ref> <ref name=ref2><pubmed>21955996</pubmed></ref>。このため、初期エンドソームは選別エンドソーム（sorting endosome）とも呼ばれている。エンドサイトーシスによって細胞内へと取り込まれた物質は、まず細胞辺縁部に存在する初期エンドソームへと輸送される。初期エンドソームを起点として、分解される物質は分解経路へと、[[細胞膜]]で再利用される物質はリサイクリング経路へと選別されていく。分解経路へと選別される物質としては[[受容体型チロシンキナーゼ]]のような[[シグナル伝達]]因子[[受容体]]が良く知られており、モノ[[ユビキチン化]]などが選別のシグナルとして用いられている。一方、リサイクリング経路へと選別される物質としては[[インテグリン]]や[[カドヘリン]]といった[[接着因子]]などが知られているが、選別のシグナルについては未だ良くわかっていない。
　初期エンドソームは、エンドサイトーシスされた物質を選別する場として機能するオルガネラである[1] [2]。このため、初期エンドソームは選別エンドソーム（sorting endosome）とも呼ばれている。エンドサイトーシスによって細胞内へと取り込まれた物質は、まず細胞辺縁部に存在する初期エンドソームへと輸送される。初期エンドソームを起点として、分解される物質は分解経路へと、細胞膜で再利用される物質はリサイクリング経路へと選別されていく。分解経路へと選別される物質としては受容体型チロシンキナーゼのようなシグナル伝達因子受容体が良く知られており、モノユビキチン化などが選別のシグナルとして用いられている。一方、リサイクリング経路へと選別される物質としてはインテグリンやカドヘリンといった接着因子などが知られているが、選別のシグナルについては未だ良くわかっていない。また、初期エンドソームはエンドサイトーシスされた受容体を用いることでシグナル伝達の場としても機能することがあるため、シグナリングエンドソーム（signaling endosome）と呼ばれることもある[7]。初期エンドソームを識別するためのマーカータンパク質としては、Rab5 やEEA-1（初期エンドソーム抗原-1）が有名である。
 
　また、初期エンドソームはエンドサイトーシスされた受容体を用いることでシグナル伝達の場としても機能することがあるため、シグナリングエンドソーム（signaling endosome）と呼ばれることもある<ref name=ref7><pubmed>19696798</pubmed></ref>。初期エンドソームを識別するためのマーカータンパク質としては、[[Rab]]5や[[wikipedia:EEA1|初期エンドソーム抗原-1]]（Early endosome antigen, EEA1）が有名である。また、初期エンドソームには、[[ホスファチジルイノシトール]]の一種である[[PI(3)P]]が豊富に存在しており、EEA-1などのタンパク質の初期エンドソームへの局在化などに寄与している<ref name=ref8><pubmed>15170460</pubmed></ref>。


=== 後期エンドソーム ===
=== 後期エンドソーム ===


　後期エンドソームは、[[リソソーム]]と融合することで内容物を分解へと導くオルガネラである<ref name=ref3 /><ref name=ref4><pubmed>21878991</pubmed></ref>。初期エンドソームにおいて分解経路へと選別された物質は、後期エンドソームを介して最終的にリソソームで分解される。ただし、後期エンドソームは初期エンドソームが成熟したオルガネラであるため、分解される物質は膜輸送によって初期エンドソームから後期エンドソームへと輸送されるわけではない。後期エンドソームは初期エンドソームから成熟するにともない、[[プロトンポンプ]]の働きによって内腔の[[wikipedia:JA:pH|pH]]が低下するとともに、[[wikipedia:JA:核|核]]近傍へと[[移動]]していく。さらに、後期エンドソームではシグナル伝達因子受容体のような[[wikipedia:JA:膜タンパク質|膜貫通型タンパク質]]がモノ[[ユビキチン化]]などによって認識され、エンドソーム膜ごと内腔へとくびり取られる。このため、後期エンドソームの内部には多数の内腔小胞が存在することになり、後期エンドソームは多胞体（MVB: multivesicular body）とも呼ばれる。後期エンドソームがリソソームと融合すると、内腔小胞ごと膜貫通型のタンパク質も分解される。
　後期エンドソームは、リソソームと融合することで内容物を分解へと導くオルガネラである[3] [4]。初期エンドソームにおいて分解経路へと選別された物質は、後期エンドソームを介して最終的にリソソームで分解される。ただし、後期エンドソームは初期エンドソームが成熟したオルガネラであるため、分解される物質はメンブレントラフィックによって初期エンドソームから後期エンドソームへと輸送されるわけではない。後期エンドソームは初期エンドソームから成熟するにともない、プロトンポンプの働きによって内腔のpH が低下するとともに、核近傍へと移動していく。さらに、後期エンドソームではシグナル伝達因子受容体のような膜貫通型タンパク質がモノユビキチン化などによって認識され、エンドソーム膜ごと内腔へとくびり取られる。このため、後期エンドソームの内部には多数の内腔小胞が存在することになり、後期エンドソームは多胞体（MVB: multivesicular body）とも呼ばれる。後期エンドソームがリソソームと融合すると、内腔小胞ごと膜貫通型のタンパク質も分解される。また、後期エ
 
ンドソームはゴルジ体との間でメンブレントラフィックによる物質のやり取りを行っているため、後期エンドソームはリソソームで働く分解酵素をゴルジ体からリソソームへと輸送するための中継オルガネラとしても機能している[8]。後期エンドソームを識別するためのマーカータンパク質としては、Rab7やM6PR（マンノース-6 リン酸受容体）が有名である。
　また、後期エンドソームは[[ゴルジ体]]との間で[[膜輸送]]による物質のやり取りを行っているため、後期エンドソームはリソソームで働く分解酵素をゴルジ体からリソソームへと輸送するための中継オルガネラとしても機能している<ref name=ref9><pubmed>19879268</pubmed></ref>。後期エンドソームを識別するためのマーカータンパク質としては、[[Rab7]]や[[w:Mannose_6-phosphate_receptor|マンノース-6リン酸受容体]]（M6PR）が有名である。また、後期エンドソームには、ホスファチジルイノシトールの一種である[[PI(3,5)P2]]が豊富に存在しており、MVBの形成促進などに関与することが知られている<ref name=ref8><pubmed>15170460</pubmed></ref>。


=== リサイクリングエンドソーム ===
=== リサイクリングエンドソーム ===


　リサイクリングエンドソームは、エンドサイトーシスされた物質を再び細胞膜へと戻す過程を制御するオルガネラである）<ref name=ref5><pubmed>16636069</pubmed></ref><ref name=ref6><pubmed>19696797</pubmed></ref>。初期エンドソームにおいてリサイクリング経路へと選別された物質は、初期エンドソームから直接、あるいは核近傍のリサイクリングエンドソームへと輸送されたのち、細胞膜へと戻され再利用される。このエンドサイトーシスによって細胞内へと取り込んだ物質を再び細胞膜へと戻す過程はendocytic recyclingと呼ばれているため、リサイクリングエンドソームはERC（endocytic recycling compartment）とも呼ばれる。リサイクリングエンドソームは、小胞やオルガネラの輸送過程においてレールとして機能する[[微小管]]の集合地点、[[微小管形成中心]]（MTOC: microtubule-organizingcenter）を取り囲むように存在しており、COS-1 細胞などでは初期エンドソームや後期エンドソームとは空間的な配置が明らかに異なる<ref name=ref10><pubmed>17606221</pubmed></ref>。この微小管形成中心を取り囲むようなリサイクリングエンドソームの配置は、ある方向から細胞内へと取り込んだ物質を別の異なる方向へと戻すendocytic recyclingに重要と考えられる。実際、リサイクリングエンドソームは、神経細胞のような[[wikipedia:JA:極性|極性]]を持つ細胞の極性輸送を制御するオルガネラとしても知られている。ただし、リサイクリングエンドソームを介してリサイクルされる物質の全てが極性をもってリサイクルされるわけではない。
　リサイクリングエンドソームは、エンドサイトーシスされた物質を再び細胞膜へと戻す過程を制御するオルガネラである[5] [6]。初期エンドソームにおいてリサイクリング経路へと選別された物質は、初期エンドソームから直接、あるいは核近傍のリサイクリングエンドソームへと輸送されたのち、細胞膜へと戻され再利用される。このエンドサイトーシスによって細胞内へと取り込んだ物質を再び細胞膜へと戻す過程はendocytic recycling と呼ばれているため、リサイクリングエンドソームはERC（endocytic recycling compartment）とも呼ばれる。リサイクリングエンドソームは、小胞やオルガネラの輸送過程においてレールとして機能する微小管の集合地点、微小管形成中心（MTOC: microtubule-organizingcenter）を取り囲むように存在しており、COS-1 細胞などでは初期エンドソームや後期エンドソームとは空間的な配置が明らかに異なる[9]。この微小管形成中心を取り囲むようなリサイクリングエンドソームの配置は、ある方向から細胞内へと取り込んだ物質を別の異なる方向へと戻すendocytic recycling に重要と考えられる。実際、リサイクリングエンドソームは、神経細胞のような極性を持つ細胞の極性輸送を制御するオルガネラとしても知られている。ただし、リサイクリングエンドソームを介してリサイクルされる物質の全てが極性をもってリサイクルされるわけではない。


　リサイクリングエンドソームは、後期エンドソームと同様にゴルジ体との間で膜輸送による物質のやり取りを行っていることが報告されている<ref name=ref11><pubmed>15534004</pubmed></ref>。このため、リサイクリングエンドソームは初期エンドソームと[[ゴルジ体]]を、あるいはゴルジ体と細胞膜を繋ぐ中継オルガネラとしても機能している。最近、リサイクリングエンドソームとリソソームとの間でも膜輸送よる物質のやり取りの可能性が示唆されており<ref name=ref12><pubmed>21718402</pubmed></ref>、中継オルガネラとしてのリサイクリングエンドソームの機能は今後さらに注目されるものと考えられる。リサイクリングエンドソームを識別するためのマーカータンパク質としては、[[Rab11]]や[[トランスフェリン受容体]]（TfR）が有名である。また、リサイクリングエンドソームには、[[ホスファチジルセリン]]（PS）や、[[PI(4)P]]、[[PI(4,5)P2]]といった脂質が存在しており、中でもPSはリサイクリングエンドソームからゴルジ体への輸送経路に必要なことが最近明らかになっている<ref name=ref13><pubmed>19369419</pubmed></ref><ref name=ref14><pubmed>21911378</pubmed></ref>。
　リサイクリングエンドソームは、後期エンドソームと同様にゴルジ体との間でメンブレントラフィックによる物質のやり取りを行っていることが報告されている[10]。このため、リサイクリングエンドソームは初期エンドソームとゴルジ体を、あるいはゴルジ体と細胞膜を繋ぐ中継オルガネラとしても機能している。最近、リサイクリングエンドソームとリソソームとの間でもメンブレントラフィックよる物質のやり取りの可能性が示唆されており[11]、中継オルガネラとしてのリサイクリングエンドソームの機能は今後さらに注目されるものと考えられる。リサイクリングエンドソームを識別するためのマーカータンパク質としては、Rab11 やTfR（トランスフェリン受容体）が有名である。


== エンドソームを介する膜輸送と神経機能 ==
== エンドソームを介するメンブレントラフィックと神経機能 ==


　エンドソームは[[小胞輸送]]（膜輸送）の中継地点として機能することで細胞内の物質輸送を司ることから、神経機能をはじめとする様々な生命現象において重要な役割を果たしている。
　神経細胞の分化・生存を制御する神経成長因子（NGF: nerve growth factor）の受容体TrkA はエンドサイトーシスによって初期エンドソームへと輸送されたのち、後期エンドソームを介してリソソームへと輸送される[12]（図１）。TrkA をリソソームへと輸送し分解へと導くことは、NGF によるシグナル伝達を適切なタイミングで止める上で重要と考えられている。実際、TrkA の初期エンドソームへの輸送は低分子量G タンパク質のRab5 によって制御されており、Rab5 の機能が損なわれると神経細胞の分化が過度に進行することが報告されている[13]。さらに、TrkA の後期エンドソームからリソソームへの輸送はRab7 によって制御されており、Rab7 の機能が損なわれることによっても神経細胞の分化が過度に進行することが報告されている[14]。


===神経成長因子のシグナル伝達===
　一方、神経細胞の移動・形態形成を制御する接着因子であるβ1-インテグリンやN-カドヘリンは、エンドサイトーシスによって初期エンドソームへと輸送されたのち、リサイクリングエンドソームを介して再び細胞膜へと輸送される[15]（図１）。このβ1-インテグリンやN-カドヘリンのendocytic recycling は、神経細胞の移動・形態形成に必要な接着部位の再編成を行う上で重要と考えられている。実際、Rab5 依存的なN-カドヘリンの初期エンドソームへの輸送が損なわれると、大脳皮質の神経細胞の移動が阻害されることが報告されている[16]。また、β1-インテグリンのリサイクリングエンドソームから細胞膜への輸送は、Rab11 によって制御されており、Rab11 の機能が損なわれると神経細胞の形態形成に異常が生じることも報告されている[17]。さらに、リサイクリングエンドソームを介するメンブレントラフィックは神経突起の形成・伸長過程を制御するだけでなく[18] [19] [20] [21]、後シナプス内での神経伝達物質受容体のリサイクリングを制御することにより、長期増強などの記憶・学習にも関与することが明らかになっている[22]。
　神経細胞の[[分化]]・生存を制御する[[神経成長因子]]（NGF: nerve growth factor）の受容体[[TrkA]]はエンドサイトーシスによって初期エンドソームへと輸送されたのち、後期エンドソームを介してリソソームへと輸送される<ref name=ref15><pubmed>17917104</pubmed></ref>（図１）。TrkAをリソソームへと輸送し分解へと導くことは、NGFによるシグナル伝達を適切なタイミングで止める上で重要と考えられている。実際、TrkA の初期エンドソームへの輸送は[[低分子量GTP結合タンパク質]]の[[Rab5]]によって制御されており、Rab5の機能が損なわれると神経細胞の分化が過度に進行することが報告されている<ref name=ref16><pubmed>17267689</pubmed></ref>。さらに、TrkAの後期エンドソームからリソソームへの輸送はRab7によって制御されており、Rab7の機能が損なわれることによっても神経細胞の分化が過度に進行することが報告されている<ref name=ref17><pubmed>16306406</pubmed></ref>。


===神経細胞の移動・形態形成===
== 参考文献 ==
　神経細胞の移動・形態形成を制御する[[細胞接着因子]]であるβ1-インテグリンやN-カドヘリンは、エンドサイトーシスによって初期エンドソームへと輸送されたのち、リサイクリングエンドソームを介して再び細胞膜へと輸送される<ref name=ref18><pubmed>17058193</pubmed></ref>（図１）。このβ1-インテグリンやN-カドヘリンのendocytic recyclingは、神経細胞の移動・形態形成に必要な接着部位の再編成を行う上で重要と考えられている。実際、Rab5依存的なN-カドヘリンの初期エンドソームへの輸送が損なわれると、[[大脳皮質]]の[[神経細胞移動]]が阻害されることが報告されている<ref name=ref19><pubmed>20797536</pubmed></ref>。また、β1-インテグリンのリサイクリングエンドソームから細胞膜への輸送は、Rab11によって制御されており、[[Rab11]] の機能が損なわれると神経細胞の形態形成に異常が生じることも知られている<ref name=ref20><pubmed>20810886</pubmed></ref>。最近では、リサイクリングエンドソームに局在し、神経細胞の形態形成に関与する因子として[[Rab17]]や[[Rab35]]といった因子も報告されている<ref name=ref21><pubmed>22291024</pubmed></ref><ref name=ref22><pubmed>22344257</pubmed></ref>。さらに、神経細胞でのendocytic recyclingの方向性を決定する重要な因子の一つとして、[[Protrudin]]と呼ばれるRab11結合因子が知られている<ref name=ref23><pubmed>19540123</pubmed></ref><ref name=ref24><pubmed>17082457</pubmed></ref>。
 
===シナプス小胞の形成・シナプス可塑性===
　エンドソームは、[[シナプス前終末]]におけるシナプス小胞のリサイクリングにも密接に関与している。例えば、神経伝達物質の放出後、細胞膜上に移行したシナプス小胞の構成因子はクラスリン依存性のエンドサイトーシスによって取り込まれ、初期エンドソームへと輸送される。そして初期エンドソームにおいてシナプス小胞の構成因子の再選別・再濃縮が行われ、再びシナプス小胞が形成される<ref name=ref25><pubmed>15217342</pubmed></ref>。ただし、シナプス小胞のリサイクリングの全てがこの過程を経るわけではない。さらに、エンドソームは[[長期増強]]・[[長期抑圧]]などの[[記憶]]・[[学習]]にも関与することが明らかになっている。
 
　例えば、カルシウム流入に伴う[[AMPA型グルタミン酸受容体]]の[[シナプス後膜]]への輸送は長期増強を促進することが知られているが<ref name=ref26><pubmed>10851179</pubmed></ref>、このAMPA型グルタミン酸受容体はリサイクリングエンドソームから供給される<ref name=ref27><pubmed>18984164</pubmed></ref>。一方、シナプス後膜上のAMPA型グルタミン酸受容体がエンドサイトーシスによって取り込まれ、初期エンドソームを経由して後期エンドソームへ輸送されると、長期抑圧が促進される<ref name=ref28><pubmed>11439178</pubmed></ref><ref name=ref29><pubmed>12052905</pubmed></ref>。従って、エンドサイトーシスによって初期エンドソームへと取り込まれたAMPA型グルタミン酸受容体を、後期エンドソーム（分解経路）とリサイクリングエンドソーム（リサイクリング経路）のどちらに選別するかは、長期増強・長期抑圧を制御する上で極めて重要である。この選別機構の詳細なメカニズムは未だ明らかになっていないが、興味深いことにAMPA型グルタミン酸受容体の主要なサブユニットである[[GluR2]]は、[[NMDA]]刺激依存的に分解経路へ、AMPA刺激依存的にリサイクリング経路へと選別されることが報告されている<ref name=ref30><pubmed>15260958</pubmed></ref>。


==関連項目==
1. Scita, G. & Di Fiore, P. P. The endocytic matrix. Nature 463, 464–473 (2010).
*[[エンドサイトーシス]]
PMID: 20110990
*[[シナプス小胞]]
2. Piper, R. C. & Lehner, P. J. Endosomal transport via ubiquitination. Trends Cell
*[[リソソーム]]
Biol. 21, 647–655 (2011). PMID: 21955996
*[[Rabファミリー低分子量Gタンパク質]]
3. Woodman, P. G. & Futter, C. E. Multivesicular bodies: co-ordinated progression to
maturity. Curr. Opin. Cell Biol. 20, 408–414 (2008). PMID: 18502633
4. Huotari, J. & Helenius, A. Endosome maturation. EMBO J. 30, 3481–3500 (2011).
PMID: 21878991
5. van Ijzendoorn, S. C. D. Recycling endosomes. J. Cell. Sci 119, 1679–1681 (2006).
PMID: 16636069
6. Grant, B. D. & Donaldson, J. G. Pathways and mechanisms of endocytic recycling.
Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 10, 597–608 (2009). PMID: 19696797
7. Sorkin, A. & von Zastrow, M. Endocytosis and signalling: intertwining molecular
networks. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 10, 609–622 (2009). PMID: 19696798
8. Pfeffer, S. R. Multiple routes of protein transport from endosomes to the trans Golgi
network. FEBS Lett. 583, 3811–3816 (2009). PMID: 19879268
9. Misaki, R., Nakagawa, T., Fukuda, M., Taniguchi, N. & Taguchi, T. Spatial
segregation of degradation- and recycling-trafficking pathways in COS-1 cells.
Biochem. Biophys. Res. Commun. 360, 580-585 (2007). PMID: 17606221
10. Ang, A. L. et al. Recycling endosomes can serve as intermediates during transport
from the Golgi to the plasma membrane of MDCK cells. J. Cell Biol. 167, 531–543
(2004). PMID: 15534004
11. Matsui, T., Itoh, T. & Fukuda, M. Small GTPase Rab12 regulates constitutive
degradation of transferrin receptor. Traffic 12, 1432-1443 (2011). PMID: 21718402
10
12. Moises, T. et al. Tracking TrkA’s Trafficking: NGF Receptor Trafficking Controls
NGF Receptor Signaling. Molecular Neurobiology 35, 151–159 (2007). PMID:
17917104
13. Liu, J., Lamb, D., Chou, M. M., Liu, Y.-J. & Li, G. Nerve growth factor-mediated
neurite outgrowth via regulation of Rab5. Mol. Biol. Cell 18, 1375–1384 (2007).
PMID: 17267689
14. Saxena, S., Bucci, C., Weis, J. & Kruttgen, A. The small GTPase Rab7 controls the
endosomal trafficking and neuritogenic signaling of the nerve growth factor
receptor TrkA. J. Neurosci. 25, 10930–10940 (2005). PMID: 16306406
15. Blackmore, M. & Letourneau, P. C. L1, beta1 integrin, and cadherins mediate
axonal regeneration in the embryonic spinal cord. J. Neurobiol. 66, 1564–1583
(2006). PMID: 17058193
16. Kawauchi, T. et al. Rab GTPases-dependent endocytic pathways regulate neuronal
migration and maturation through N-cadherin trafficking. Neuron 67, 588–602
(2010). PMID: 20797536
17. Eva, R. et al. Rab11 and its effector Rab coupling protein contribute to the
trafficking of beta 1 integrins during axon growth in adult dorsal root ganglion
neurons and PC12 cells. J. Neurosci. 30, 11654–11669 (2010). PMID: 20810886
18. Sann, S., Wang, Z., Brown, H. & Jin, Y. Roles of endosomal trafficking in neurite
outgrowth and guidance. Trends. Cell Biol. 19, 317-324 (2009). PMID: 19540123
19. Shirane, M. & Nakayama, K. I. Protrudin induces neurite formation by directional
membrane trafficking. Science 314, 818-821 (2006). PMID: 17082457
20. Kobayashi, H. & Fukuda, M. Rab35 regulates Arf6 activity through centaurin
β2/ACAP2 during neurite outgrowth. J. Cell Sci. (2012). PMID: 22344257
21. Mori, Y., Matsui, T., Furutani, Y., Yoshihara, Y. & Fukuda, M. Small GTPase
Rab17 regulates dendritic morphogenesis and postsynaptic development of
hippocampal neurons. J. Biol. Chem. 287, 8963-8973 (2012). PMID: 22291024
11
22. Wang, Z. et al. Myosin Vb mobilizes recycling endosomes and AMPA receptors for
postsynaptic plasticity. Cell 135, 535-548 (2008). PMID: 18984164


== 参考文献 ==


<references/>
小林穂高、福田光則（東北大学大学院 生命科学研究科）

2012年4月11日 (水) 17:03時点における版

英語名：endosome

　エンドソームはエンドサイトーシスによって細胞内へと取り込まれた様々な物質の選別・分解・再利用などを制御するオルガネラの総称である。エンドソームは形態的な特徴や機能的な特徴をもとに、初期エンドソーム（early endosome）[1] [2]・後期エンドソーム（late endosome）[3] [4]・リサイクリングエンドソーム（recycling endosome）[5] [6]に大別される。エンドソームはメンブレントラフィックの中継地点として機能することで細胞内の物質輸送を司ることから、神経機能をはじめとする様々な生命現象において重要な役割を果たしている。

種類と機能

　エンドソームは形態的な特徴や機能的な特徴をもとに、初期エンドソーム・後期エンドソーム・リサイクリングエンドソームに大別される（図１）。


初期エンドソーム

　初期エンドソームは、エンドサイトーシスされた物質を選別する場として機能するオルガネラである[1] [2]。このため、初期エンドソームは選別エンドソーム（sorting endosome）とも呼ばれている。エンドサイトーシスによって細胞内へと取り込まれた物質は、まず細胞辺縁部に存在する初期エンドソームへと輸送される。初期エンドソームを起点として、分解される物質は分解経路へと、細胞膜で再利用される物質はリサイクリング経路へと選別されていく。分解経路へと選別される物質としては受容体型チロシンキナーゼのようなシグナル伝達因子受容体が良く知られており、モノユビキチン化などが選別のシグナルとして用いられている。一方、リサイクリング経路へと選別される物質としてはインテグリンやカドヘリンといった接着因子などが知られているが、選別のシグナルについては未だ良くわかっていない。また、初期エンドソームはエンドサイトーシスされた受容体を用いることでシグナル伝達の場としても機能することがあるため、シグナリングエンドソーム（signaling endosome）と呼ばれることもある[7]。初期エンドソームを識別するためのマーカータンパク質としては、Rab5 やEEA-1（初期エンドソーム抗原-1）が有名である。

後期エンドソーム

　後期エンドソームは、リソソームと融合することで内容物を分解へと導くオルガネラである[3] [4]。初期エンドソームにおいて分解経路へと選別された物質は、後期エンドソームを介して最終的にリソソームで分解される。ただし、後期エンドソームは初期エンドソームが成熟したオルガネラであるため、分解される物質はメンブレントラフィックによって初期エンドソームから後期エンドソームへと輸送されるわけではない。後期エンドソームは初期エンドソームから成熟するにともない、プロトンポンプの働きによって内腔のpH が低下するとともに、核近傍へと移動していく。さらに、後期エンドソームではシグナル伝達因子受容体のような膜貫通型タンパク質がモノユビキチン化などによって認識され、エンドソーム膜ごと内腔へとくびり取られる。このため、後期エンドソームの内部には多数の内腔小胞が存在することになり、後期エンドソームは多胞体（MVB: multivesicular body）とも呼ばれる。後期エンドソームがリソソームと融合すると、内腔小胞ごと膜貫通型のタンパク質も分解される。また、後期エ ンドソームはゴルジ体との間でメンブレントラフィックによる物質のやり取りを行っているため、後期エンドソームはリソソームで働く分解酵素をゴルジ体からリソソームへと輸送するための中継オルガネラとしても機能している[8]。後期エンドソームを識別するためのマーカータンパク質としては、Rab7やM6PR（マンノース-6 リン酸受容体）が有名である。

リサイクリングエンドソーム

　リサイクリングエンドソームは、エンドサイトーシスされた物質を再び細胞膜へと戻す過程を制御するオルガネラである[5] [6]。初期エンドソームにおいてリサイクリング経路へと選別された物質は、初期エンドソームから直接、あるいは核近傍のリサイクリングエンドソームへと輸送されたのち、細胞膜へと戻され再利用される。このエンドサイトーシスによって細胞内へと取り込んだ物質を再び細胞膜へと戻す過程はendocytic recycling と呼ばれているため、リサイクリングエンドソームはERC（endocytic recycling compartment）とも呼ばれる。リサイクリングエンドソームは、小胞やオルガネラの輸送過程においてレールとして機能する微小管の集合地点、微小管形成中心（MTOC: microtubule-organizingcenter）を取り囲むように存在しており、COS-1 細胞などでは初期エンドソームや後期エンドソームとは空間的な配置が明らかに異なる[9]。この微小管形成中心を取り囲むようなリサイクリングエンドソームの配置は、ある方向から細胞内へと取り込んだ物質を別の異なる方向へと戻すendocytic recycling に重要と考えられる。実際、リサイクリングエンドソームは、神経細胞のような極性を持つ細胞の極性輸送を制御するオルガネラとしても知られている。ただし、リサイクリングエンドソームを介してリサイクルされる物質の全てが極性をもってリサイクルされるわけではない。

　リサイクリングエンドソームは、後期エンドソームと同様にゴルジ体との間でメンブレントラフィックによる物質のやり取りを行っていることが報告されている[10]。このため、リサイクリングエンドソームは初期エンドソームとゴルジ体を、あるいはゴルジ体と細胞膜を繋ぐ中継オルガネラとしても機能している。最近、リサイクリングエンドソームとリソソームとの間でもメンブレントラフィックよる物質のやり取りの可能性が示唆されており[11]、中継オルガネラとしてのリサイクリングエンドソームの機能は今後さらに注目されるものと考えられる。リサイクリングエンドソームを識別するためのマーカータンパク質としては、Rab11 やTfR（トランスフェリン受容体）が有名である。

エンドソームを介するメンブレントラフィックと神経機能

　神経細胞の分化・生存を制御する神経成長因子（NGF: nerve growth factor）の受容体TrkA はエンドサイトーシスによって初期エンドソームへと輸送されたのち、後期エンドソームを介してリソソームへと輸送される[12]（図１）。TrkA をリソソームへと輸送し分解へと導くことは、NGF によるシグナル伝達を適切なタイミングで止める上で重要と考えられている。実際、TrkA の初期エンドソームへの輸送は低分子量G タンパク質のRab5 によって制御されており、Rab5 の機能が損なわれると神経細胞の分化が過度に進行することが報告されている[13]。さらに、TrkA の後期エンドソームからリソソームへの輸送はRab7 によって制御されており、Rab7 の機能が損なわれることによっても神経細胞の分化が過度に進行することが報告されている[14]。

　一方、神経細胞の移動・形態形成を制御する接着因子であるβ1-インテグリンやN-カドヘリンは、エンドサイトーシスによって初期エンドソームへと輸送されたのち、リサイクリングエンドソームを介して再び細胞膜へと輸送される[15]（図１）。このβ1-インテグリンやN-カドヘリンのendocytic recycling は、神経細胞の移動・形態形成に必要な接着部位の再編成を行う上で重要と考えられている。実際、Rab5 依存的なN-カドヘリンの初期エンドソームへの輸送が損なわれると、大脳皮質の神経細胞の移動が阻害されることが報告されている[16]。また、β1-インテグリンのリサイクリングエンドソームから細胞膜への輸送は、Rab11 によって制御されており、Rab11 の機能が損なわれると神経細胞の形態形成に異常が生じることも報告されている[17]。さらに、リサイクリングエンドソームを介するメンブレントラフィックは神経突起の形成・伸長過程を制御するだけでなく[18] [19] [20] [21]、後シナプス内での神経伝達物質受容体のリサイクリングを制御することにより、長期増強などの記憶・学習にも関与することが明らかになっている[22]。

参考文献

1. Scita, G. & Di Fiore, P. P. The endocytic matrix. Nature 463, 464–473 (2010). PMID: 20110990 2. Piper, R. C. & Lehner, P. J. Endosomal transport via ubiquitination. Trends Cell Biol. 21, 647–655 (2011). PMID: 21955996 3. Woodman, P. G. & Futter, C. E. Multivesicular bodies: co-ordinated progression to maturity. Curr. Opin. Cell Biol. 20, 408–414 (2008). PMID: 18502633 4. Huotari, J. & Helenius, A. Endosome maturation. EMBO J. 30, 3481–3500 (2011). PMID: 21878991 5. van Ijzendoorn, S. C. D. Recycling endosomes. J. Cell. Sci 119, 1679–1681 (2006). PMID: 16636069 6. Grant, B. D. & Donaldson, J. G. Pathways and mechanisms of endocytic recycling. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 10, 597–608 (2009). PMID: 19696797 7. Sorkin, A. & von Zastrow, M. Endocytosis and signalling: intertwining molecular networks. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 10, 609–622 (2009). PMID: 19696798 8. Pfeffer, S. R. Multiple routes of protein transport from endosomes to the trans Golgi network. FEBS Lett. 583, 3811–3816 (2009). PMID: 19879268 9. Misaki, R., Nakagawa, T., Fukuda, M., Taniguchi, N. & Taguchi, T. Spatial segregation of degradation- and recycling-trafficking pathways in COS-1 cells. Biochem. Biophys. Res. Commun. 360, 580-585 (2007). PMID: 17606221 10. Ang, A. L. et al. Recycling endosomes can serve as intermediates during transport from the Golgi to the plasma membrane of MDCK cells. J. Cell Biol. 167, 531–543 (2004). PMID: 15534004 11. Matsui, T., Itoh, T. & Fukuda, M. Small GTPase Rab12 regulates constitutive degradation of transferrin receptor. Traffic 12, 1432-1443 (2011). PMID: 21718402 10 12. Moises, T. et al. Tracking TrkA’s Trafficking: NGF Receptor Trafficking Controls NGF Receptor Signaling. Molecular Neurobiology 35, 151–159 (2007). PMID: 17917104 13. Liu, J., Lamb, D., Chou, M. M., Liu, Y.-J. & Li, G. Nerve growth factor-mediated neurite outgrowth via regulation of Rab5. Mol. Biol. Cell 18, 1375–1384 (2007). PMID: 17267689 14. Saxena, S., Bucci, C., Weis, J. & Kruttgen, A. The small GTPase Rab7 controls the endosomal trafficking and neuritogenic signaling of the nerve growth factor receptor TrkA. J. Neurosci. 25, 10930–10940 (2005). PMID: 16306406 15. Blackmore, M. & Letourneau, P. C. L1, beta1 integrin, and cadherins mediate axonal regeneration in the embryonic spinal cord. J. Neurobiol. 66, 1564–1583 (2006). PMID: 17058193 16. Kawauchi, T. et al. Rab GTPases-dependent endocytic pathways regulate neuronal migration and maturation through N-cadherin trafficking. Neuron 67, 588–602 (2010). PMID: 20797536 17. Eva, R. et al. Rab11 and its effector Rab coupling protein contribute to the trafficking of beta 1 integrins during axon growth in adult dorsal root ganglion neurons and PC12 cells. J. Neurosci. 30, 11654–11669 (2010). PMID: 20810886 18. Sann, S., Wang, Z., Brown, H. & Jin, Y. Roles of endosomal trafficking in neurite outgrowth and guidance. Trends. Cell Biol. 19, 317-324 (2009). PMID: 19540123 19. Shirane, M. & Nakayama, K. I. Protrudin induces neurite formation by directional membrane trafficking. Science 314, 818-821 (2006). PMID: 17082457 20. Kobayashi, H. & Fukuda, M. Rab35 regulates Arf6 activity through centaurin β2/ACAP2 during neurite outgrowth. J. Cell Sci. (2012). PMID: 22344257 21. Mori, Y., Matsui, T., Furutani, Y., Yoshihara, Y. & Fukuda, M. Small GTPase Rab17 regulates dendritic morphogenesis and postsynaptic development of hippocampal neurons. J. Biol. Chem. 287, 8963-8973 (2012). PMID: 22291024 11 22. Wang, Z. et al. Myosin Vb mobilizes recycling endosomes and AMPA receptors for postsynaptic plasticity. Cell 135, 535-548 (2008). PMID: 18984164


小林穂高、福田光則（東北大学大学院 生命科学研究科）

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