「上皮成長因子」の版間の差分
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EGFは1962年にCohenによって、唾液腺抽出物に含まれるマウス新生仔に注射すると早く目が開き切歯が生えてくるという活性として報告された。その後、胃酸の分泌を抑制する小腸粘膜由来の物質としてUrogastroneという名前で分子として同定された。53アミノ酸からなるポリペプチドで、1217アミノ酸という大きなグリコシル化された膜貫通型前駆体タンパク質から切り出されて分泌される。この前駆体自身も後述のEGF受容体に結合することができ、細胞間の接触によってもシグナルの活性化をおこなうことが可能である。 | EGFは1962年にCohenによって、唾液腺抽出物に含まれるマウス新生仔に注射すると早く目が開き切歯が生えてくるという活性として報告された。その後、胃酸の分泌を抑制する小腸粘膜由来の物質としてUrogastroneという名前で分子として同定された。53アミノ酸からなるポリペプチドで、1217アミノ酸という大きなグリコシル化された膜貫通型前駆体タンパク質から切り出されて分泌される。この前駆体自身も後述のEGF受容体に結合することができ、細胞間の接触によってもシグナルの活性化をおこなうことが可能である。 | ||
シグナル伝達 | ==シグナル伝達 == | ||
EGFは transforming growth factor(TGF)α、amphiregulin、heparin-binding EGF-like growth factor(HB-EGF)、betacellulin、neu differentiation factorとともにEGFファミリーを形成している。EGFの主要な受容体は、受容体型チロシンキナーゼEGF receptor(EGFR、HER1、erbB-1とも呼ばれる)である。EGF以外にもTGFα、amphiregulin、HB-EGF、betacellulinがEGFRに結合/活性化する。他の受容体型チロシンキナーゼと同様に、活性化されたEGFRは自らのチロシン残基をリン酸化し、これがさまざまなsrc homology 2(SH2)ドメインを持つタンパク質の結合部位となる。活性化されたEGFRに直接結合するタンパク質として、phospholipase Cγ、Ras-GAP、Grb2、Nck、Shc、SHP-2が挙げられる。Phospholipase Cγはphosphatidylinositol-4, 5-biphosphateを分解してdiacylglycerolと1, 4, 5-triphsophate(IP-3)を作る。Diacylglycerolはprotein kinase Cを活性化し、IP-3は細胞内のカルシウムイオン濃度を上昇させることでシグナル伝達をおこなう。Grb2はRasを介してMAP kinase経路を活性化させる。EGFはこれらの主要なシグナル伝達経路以外にも、PI3-kinase経路やJak/stat経路を活性化することが知られている。 | EGFは transforming growth factor(TGF)α、amphiregulin、heparin-binding EGF-like growth factor(HB-EGF)、betacellulin、neu differentiation factorとともにEGFファミリーを形成している。EGFの主要な受容体は、受容体型チロシンキナーゼEGF receptor(EGFR、HER1、erbB-1とも呼ばれる)である。EGF以外にもTGFα、amphiregulin、HB-EGF、betacellulinがEGFRに結合/活性化する。他の受容体型チロシンキナーゼと同様に、活性化されたEGFRは自らのチロシン残基をリン酸化し、これがさまざまなsrc homology 2(SH2)ドメインを持つタンパク質の結合部位となる。活性化されたEGFRに直接結合するタンパク質として、phospholipase Cγ、Ras-GAP、Grb2、Nck、Shc、SHP-2が挙げられる。Phospholipase Cγはphosphatidylinositol-4, 5-biphosphateを分解してdiacylglycerolと1, 4, 5-triphsophate(IP-3)を作る。Diacylglycerolはprotein kinase Cを活性化し、IP-3は細胞内のカルシウムイオン濃度を上昇させることでシグナル伝達をおこなう。Grb2はRasを介してMAP kinase経路を活性化させる。EGFはこれらの主要なシグナル伝達経路以外にも、PI3-kinase経路やJak/stat経路を活性化することが知られている。 | ||
== 神経系における活性 == | |||
多くの受容体チロシンキナーゼリガンドと同様、EGFは細胞増殖や細胞の生存を促進する活性を持つ。EGFRのノックアウトマウスでは大脳皮質のニューロン新生が低下することから、EGFRシグナルが神経系前駆細胞の増殖や生存に重要な役割を持っていることが示されている。また、成体ラット脳質へのEGF投与は側脳室のsubventricular zone(SVZ)における前駆細胞の増加をうながす。しかし、TGFαのノックアウトマウスでSVZの前駆細胞の増殖が大きく損なわれることから、正常時にSVZの前駆細胞の増殖を活性化しているのは、TGFα/EGFRの組み合わせかもしれない。一方で、ドーパミン産生ニューロンの投射がSVZ前駆細胞にコンタクトしており、ドーパミン受容体の活性化によって前駆細胞細胞の増殖を促進していること、SVZの神経前駆細胞自体がEGFを発現しており、EGFRの阻害剤によってドーパミンによる増殖促進効果が抑制されることから、ドーパミンがEGFの発現誘導を介してSVZ神経前駆細胞の増殖を促進している可能性が示唆されている。ともあれ、実験的に障害を受けた脳幹について、EGFとアルブミンの同時投与がニューロン新生、特にparvalbumin発現インターニューロンの増加を促進することが報告されており、EGFの細胞増殖活性の神経障害治療への応用が考えられる。また、EGFやTGFαは嗅上皮において基底細胞の増殖を促進することも知られている。嗅上皮は成体で継続して神経新生がおきている場所として知られており、大脳側脳室とともにEGFによって細胞増殖が制御されている部位であると考えられる。 | 多くの受容体チロシンキナーゼリガンドと同様、EGFは細胞増殖や細胞の生存を促進する活性を持つ。EGFRのノックアウトマウスでは大脳皮質のニューロン新生が低下することから、EGFRシグナルが神経系前駆細胞の増殖や生存に重要な役割を持っていることが示されている。また、成体ラット脳質へのEGF投与は側脳室のsubventricular zone(SVZ)における前駆細胞の増加をうながす。しかし、TGFαのノックアウトマウスでSVZの前駆細胞の増殖が大きく損なわれることから、正常時にSVZの前駆細胞の増殖を活性化しているのは、TGFα/EGFRの組み合わせかもしれない。一方で、ドーパミン産生ニューロンの投射がSVZ前駆細胞にコンタクトしており、ドーパミン受容体の活性化によって前駆細胞細胞の増殖を促進していること、SVZの神経前駆細胞自体がEGFを発現しており、EGFRの阻害剤によってドーパミンによる増殖促進効果が抑制されることから、ドーパミンがEGFの発現誘導を介してSVZ神経前駆細胞の増殖を促進している可能性が示唆されている。ともあれ、実験的に障害を受けた脳幹について、EGFとアルブミンの同時投与がニューロン新生、特にparvalbumin発現インターニューロンの増加を促進することが報告されており、EGFの細胞増殖活性の神経障害治療への応用が考えられる。また、EGFやTGFαは嗅上皮において基底細胞の増殖を促進することも知られている。嗅上皮は成体で継続して神経新生がおきている場所として知られており、大脳側脳室とともにEGFによって細胞増殖が制御されている部位であると考えられる。 | ||
前駆細胞だけでなく、一部のニューロンもEGFRを発現しており、さまざまな活性が見られる。培養下において大脳皮質ニューロンに対して生存や神経突起伸長を促す。また、EGFは培養ドーパミン産生ニューロンの長期生存や神経突起の伸長を促進する。前者については直接ニューロンに働きかけているものであるが、後者についてはアストロサイトを介した間接的なものであると考えられている。また、EGFはEGFRを発現する海馬由来のニューロンについて、NMDA受容体を介した細胞内カルシウムイオンの上昇を促進することから、海馬においてシナプスの可塑性の制御に関わっている可能性がある。これに関連して、EGFはラット海馬のスライス培養下でシャッファー側枝や交連繊維(Schaffer/commissural)/CA1 錐体細胞(pyramidal cell)シナプスの長期増強(long-term potentiation、LTP)を増加させ、in vivoにおいてラットの貫通繊維路(perforant path)/歯状回顆粒細胞(dentate granule cell)シナプスのLTP形成を促進する。一方、マウス新生仔へのEGFの投与によって、大脳新皮質におけるAMPA受容体(GluR1やGluR2/3)の発現上昇が抑制されることや、大脳皮質のスライス培養下でのEGF処理がGABA産生ニューロンの興奮性シナプス後電流(post synaptic | 前駆細胞だけでなく、一部のニューロンもEGFRを発現しており、さまざまな活性が見られる。培養下において大脳皮質ニューロンに対して生存や神経突起伸長を促す。また、EGFは培養ドーパミン産生ニューロンの長期生存や神経突起の伸長を促進する。前者については直接ニューロンに働きかけているものであるが、後者についてはアストロサイトを介した間接的なものであると考えられている。また、EGFはEGFRを発現する海馬由来のニューロンについて、NMDA受容体を介した細胞内カルシウムイオンの上昇を促進することから、海馬においてシナプスの可塑性の制御に関わっている可能性がある。これに関連して、EGFはラット海馬のスライス培養下でシャッファー側枝や交連繊維(Schaffer/commissural)/CA1 錐体細胞(pyramidal cell)シナプスの長期増強(long-term potentiation、LTP)を増加させ、in vivoにおいてラットの貫通繊維路(perforant path)/歯状回顆粒細胞(dentate granule cell)シナプスのLTP形成を促進する。一方、マウス新生仔へのEGFの投与によって、大脳新皮質におけるAMPA受容体(GluR1やGluR2/3)の発現上昇が抑制されることや、大脳皮質のスライス培養下でのEGF処理がGABA産生ニューロンの興奮性シナプス後電流(post synaptic current)を減弱させることが示されており<ref><pubmed> 17284178 </pubmed></ref>、ニューロンのタイプによってEGFシグナルのシナプス形成と機能への効果は異なるようである。 | ||
== 参考文献 == | |||
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2012年5月8日 (火) 16:30時点における版
上皮成長因子 英語名:epidermal growth factor英語略称名:EGF
EGFは1962年にCohenによって、唾液腺抽出物に含まれるマウス新生仔に注射すると早く目が開き切歯が生えてくるという活性として報告された。その後、胃酸の分泌を抑制する小腸粘膜由来の物質としてUrogastroneという名前で分子として同定された。53アミノ酸からなるポリペプチドで、1217アミノ酸という大きなグリコシル化された膜貫通型前駆体タンパク質から切り出されて分泌される。この前駆体自身も後述のEGF受容体に結合することができ、細胞間の接触によってもシグナルの活性化をおこなうことが可能である。
シグナル伝達
EGFは transforming growth factor(TGF)α、amphiregulin、heparin-binding EGF-like growth factor(HB-EGF)、betacellulin、neu differentiation factorとともにEGFファミリーを形成している。EGFの主要な受容体は、受容体型チロシンキナーゼEGF receptor(EGFR、HER1、erbB-1とも呼ばれる)である。EGF以外にもTGFα、amphiregulin、HB-EGF、betacellulinがEGFRに結合/活性化する。他の受容体型チロシンキナーゼと同様に、活性化されたEGFRは自らのチロシン残基をリン酸化し、これがさまざまなsrc homology 2(SH2)ドメインを持つタンパク質の結合部位となる。活性化されたEGFRに直接結合するタンパク質として、phospholipase Cγ、Ras-GAP、Grb2、Nck、Shc、SHP-2が挙げられる。Phospholipase Cγはphosphatidylinositol-4, 5-biphosphateを分解してdiacylglycerolと1, 4, 5-triphsophate(IP-3)を作る。Diacylglycerolはprotein kinase Cを活性化し、IP-3は細胞内のカルシウムイオン濃度を上昇させることでシグナル伝達をおこなう。Grb2はRasを介してMAP kinase経路を活性化させる。EGFはこれらの主要なシグナル伝達経路以外にも、PI3-kinase経路やJak/stat経路を活性化することが知られている。
神経系における活性
多くの受容体チロシンキナーゼリガンドと同様、EGFは細胞増殖や細胞の生存を促進する活性を持つ。EGFRのノックアウトマウスでは大脳皮質のニューロン新生が低下することから、EGFRシグナルが神経系前駆細胞の増殖や生存に重要な役割を持っていることが示されている。また、成体ラット脳質へのEGF投与は側脳室のsubventricular zone(SVZ)における前駆細胞の増加をうながす。しかし、TGFαのノックアウトマウスでSVZの前駆細胞の増殖が大きく損なわれることから、正常時にSVZの前駆細胞の増殖を活性化しているのは、TGFα/EGFRの組み合わせかもしれない。一方で、ドーパミン産生ニューロンの投射がSVZ前駆細胞にコンタクトしており、ドーパミン受容体の活性化によって前駆細胞細胞の増殖を促進していること、SVZの神経前駆細胞自体がEGFを発現しており、EGFRの阻害剤によってドーパミンによる増殖促進効果が抑制されることから、ドーパミンがEGFの発現誘導を介してSVZ神経前駆細胞の増殖を促進している可能性が示唆されている。ともあれ、実験的に障害を受けた脳幹について、EGFとアルブミンの同時投与がニューロン新生、特にparvalbumin発現インターニューロンの増加を促進することが報告されており、EGFの細胞増殖活性の神経障害治療への応用が考えられる。また、EGFやTGFαは嗅上皮において基底細胞の増殖を促進することも知られている。嗅上皮は成体で継続して神経新生がおきている場所として知られており、大脳側脳室とともにEGFによって細胞増殖が制御されている部位であると考えられる。 前駆細胞だけでなく、一部のニューロンもEGFRを発現しており、さまざまな活性が見られる。培養下において大脳皮質ニューロンに対して生存や神経突起伸長を促す。また、EGFは培養ドーパミン産生ニューロンの長期生存や神経突起の伸長を促進する。前者については直接ニューロンに働きかけているものであるが、後者についてはアストロサイトを介した間接的なものであると考えられている。また、EGFはEGFRを発現する海馬由来のニューロンについて、NMDA受容体を介した細胞内カルシウムイオンの上昇を促進することから、海馬においてシナプスの可塑性の制御に関わっている可能性がある。これに関連して、EGFはラット海馬のスライス培養下でシャッファー側枝や交連繊維(Schaffer/commissural)/CA1 錐体細胞(pyramidal cell)シナプスの長期増強(long-term potentiation、LTP)を増加させ、in vivoにおいてラットの貫通繊維路(perforant path)/歯状回顆粒細胞(dentate granule cell)シナプスのLTP形成を促進する。一方、マウス新生仔へのEGFの投与によって、大脳新皮質におけるAMPA受容体(GluR1やGluR2/3)の発現上昇が抑制されることや、大脳皮質のスライス培養下でのEGF処理がGABA産生ニューロンの興奮性シナプス後電流(post synaptic current)を減弱させることが示されており[1]、ニューロンのタイプによってEGFシグナルのシナプス形成と機能への効果は異なるようである。
参考文献
- ↑
Nagano, T., Namba, H., Abe, Y., Aoki, H., Takei, N., & Nawa, H. (2007).
In vivo administration of epidermal growth factor and its homologue attenuates developmental maturation of functional excitatory synapses in cortical GABAergic neurons. The European journal of neuroscience, 25(2), 380-90. [PubMed:17284178] [WorldCat] [DOI]