「カルシウムドメイン」の版間の差分

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英語名:Calcium domain
英語名:Calcium domain


 カルシウムイオン(Ca2+)がチャネルを通過して生じる細胞内の遊離Ca2+濃度上昇の空間的分布領域。カルシウムドメインは細胞外からのCa2+流入、または小胞体からのCa2+流出によって形成される。
 カルシウムイオン(Ca<sup>2+</sup>)がチャネルを通過して生じる細胞内の遊離Ca<sup>2+</sup>濃度上昇の空間的分布領域。カルシウムドメインは細胞外からのCa<sup>2+</sup>流入、または小胞体からのCa<sup>2+</sup>流出によって形成される。


== カルシウムドメイン仮説 ==
== カルシウムドメイン仮説 ==
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[[image:calciumdomain-1.png|thumb|350px|'''図1''']]
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 Chad & Eckert<ref name=ref1><pubmed>6329349</pubmed></ref>によって提唱された。電位依存性Ca2+チャネルが短時間、開口することにより、細胞外から細胞内に流入したCa2+は、細胞質にある内在性Ca2+バッファーの作用により、細胞膜の内側に沿って半円形に濃度分布すると推定され、その空間分布をカルシウムドメインと呼んだ(図1)。カルシウムドメインを形成する最小ユニットは単一チャネルであるが、複数チャネルのカルシウムドメインが重複すると、より大きなカルシウムドメインが形成される。カルシウムドメインの重複の程度はチャネル当たりのCa2+流入量と、Ca2+チャネルの分布密度によって決定される。
 Chad & Eckert<ref name=ref1><pubmed>6329349</pubmed></ref>によって提唱された。電位依存性Ca<sup>2+</sup>チャネルが短時間、開口することにより、細胞外から細胞内に流入したCa<sup>2+</sup>は、細胞質にある内在性Ca<sup>2+</sup>バッファーの作用により、細胞膜の内側に沿って半円形に濃度分布すると推定され、その空間分布をカルシウムドメインと呼んだ(図1)。カルシウムドメインを形成する最小ユニットは単一チャネルであるが、複数チャネルのカルシウムドメインが重複すると、より大きなカルシウムドメインが形成される。カルシウムドメインの重複の程度はチャネル当たりのCa<sup>2+</sup>流入量と、Ca<sup>2+</sup>チャネルの分布密度によって決定される。


== カルシウムドメインを形成するチャネル ==
== カルシウムドメインを形成するチャネル ==


#細胞外Ca2+の細胞内流入を媒介するチャネル:電位依存性Ca2+チャネル、Ca2+透過型チャネル(NMDA受容体チャネル、機械力受容チャネル、TRPチャネル、環状ヌクレオチド依存性チャネル、store-operated CRACチャネルなど)<BR>
#細胞外Ca<sup>2+</sup>の細胞内流入を媒介するチャネル:電位依存性Ca<sup>2+</sup>チャネル、Ca<sup>2+</sup>透過型チャネル(NMDA受容体チャネル、機械力受容チャネル、TRPチャネル、環状ヌクレオチド依存性チャネル、store-operated CRACチャネルなど)<BR>
#細胞内Ca2+ストアから細胞質への流出を媒介するチャネル:リアノジン受容体チャネル、IP3受容体チャネル。
#細胞内Ca<sup>2+</sup>ストアから細胞質への流出を媒介するチャネル:リアノジン受容体チャネル、IP3受容体チャネル。


== カルシウムドメインの機能的役割 ==
== カルシウムドメインの機能的役割 ==


#Ca2+チャネルの調節:細部内Ca2+によってCa2+チャネルは活性化または不活性化される。
#Ca<sup>2+</sup>チャネルの調節:細部内Ca<sup>2+</sup>によってCa<sup>2+</sup>チャネルは活性化または不活性化される。
#Ca2+依存性チャネルの活性化:Ca2+依存性K+チャネル、Ca2+依存性Cl-チャネルが知られる。
#Ca<sup>2+</sup>依存性チャネルの活性化:Ca<sup>2+</sup>依存性K<sup>+</sup>チャネル、Ca<sup>2+</sup>依存性Cl-チャネルが知られる。
#神経伝達物質の開口放出:Synaptotagminなどの低親和性Ca2+結合タンパク質により媒介される。
#神経伝達物質の開口放出:Synaptotagminなどの低親和性Ca<sup>2+</sup>結合タンパク質により媒介される。
#シナプス小胞の取り込み(エンドサイトーシス):Synaptotagminなどの低親和性Ca2+結合タンパク質により媒介されるものと、Calmodulinなどの比較的低親和性Ca2+結合タンパク質により媒介されるものがある。
#シナプス小胞の取り込み(エンドサイトーシス):Synaptotagminなどの低親和性Ca<sup>2+</sup>結合タンパク質により媒介されるものと、Calmodulinなどの比較的低親和性Ca<sup>2+</sup>結合タンパク質により媒介されるものがある。
#シナプス伝達の修飾:Calmodulinとの結合を介して、後シナプス受容体の密度、または前シナプス末端からの伝達物質放出を増強する。
#シナプス伝達の修飾:Calmodulinとの結合を介して、後シナプス受容体の密度、または前シナプス末端からの伝達物質放出を増強する。
#筋収縮。
#筋収縮。
#細胞内ストアCa2+の放出促進(リアノジン受容体チャネル、IP3受容体チャネルからのCa2+に依存したCa2+の放出)。
#細胞内ストアCa<sup>2+</sup>の放出促進(リアノジン受容体チャネル、IP3受容体チャネルからのCa<sup>2+</sup>に依存したCa<sup>2+</sup>の放出)。
#成長円錐の伸長(TRPCチャネルなどからのCa2+流入)。
#成長円錐の伸長(TRPCチャネルなどからのCa<sup>2+</sup>流入)。


== カルシウムドメインのサイズ  ==
== カルシウムドメインのサイズ  ==


 カルシウムドメインのサイズは、多くの場合、光学解像度の限界を超えるため実測できない。そのため次善の策として、Ca2+結合速度の異なるカルシウムキレート剤(表1)を細胞内に負荷して、それによるカルシウム依存性機能の抑制率を定量して、ドメインサイズを推定することが行われている。  
 カルシウムドメインのサイズは、多くの場合、光学解像度の限界を超えるため実測できない。そのため次善の策として、Ca<sup>2+</sup>結合速度の異なるカルシウムキレート剤(表1)を細胞内に負荷して、それによるカルシウム依存性機能の抑制率を定量して、ドメインサイズを推定することが行われている。  


'''表1'''<ref name="ref2"><pubmed>9278532</pubmed></ref>  
'''表1'''<ref name="ref2"><pubmed>9278532</pubmed></ref>  
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| キレート剤  
| キレート剤  
| Kon(1/M.s)  
| K<sub>on</sub>(1/M.s)  
| KD (μM)
| K<sub>D</sub> (μM)
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| BAPTA  
| BAPTA  
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で近似される。ここでDCaは細胞質内におけるCa2+の拡散定数(220 μm2/s)<ref name="ref2"><pubmed>9278532</pubmed></ref>、Bはキレート剤の濃度に相当する。 この式から推定される カルシウムドメインのサイズは図1のようになる。 例えば、細胞内カルシウムドメインに依存する機能が10 mM EGTAによってブロックされた場合、この機能に関わるカルシウムドメインのサイズは&gt; 94 nmと推定される。10 mM EGTA によってはブロックされないが1 mM BAPTAによって完全にブロックされる場合は23 nm- 94 nm、10 mM BAPTAでブロックされない場合は&lt; 7.4 nmと推定される。
キレート剤の存在下におけるCa2+の拡散距離 λは
 
λ = (D<sub>Ca</sub>/K<sub>on</sub>B)0.5
 
で近似される。ここでD<sub>Ca</sub>は細胞質内におけるCa<sup>2+</sup>の拡散定数(220 μm2/s)<ref name="ref2"><pubmed>9278532</pubmed></ref>、Bはキレート剤の濃度に相当する。 この式から推定される カルシウムドメインのサイズは図1のようになる。 例えば、細胞内カルシウムドメインに依存する機能が10 mM EGTAによってブロックされた場合、この機能に関わるカルシウムドメインのサイズは&gt; 94 nmと推定される。10 mM EGTA によってはブロックされないが1 mM BAPTAによって完全にブロックされる場合は23 nm- 94 nm、10 mM BAPTAでブロックされない場合は&lt; 7.4 nmと推定される。


== カルシウムマイクロドメインとカルシウムナノドメイン ==
== カルシウムマイクロドメインとカルシウムナノドメイン ==

2012年10月19日 (金) 09:51時点における版

英語名:Calcium domain

 カルシウムイオン(Ca2+)がチャネルを通過して生じる細胞内の遊離Ca2+濃度上昇の空間的分布領域。カルシウムドメインは細胞外からのCa2+流入、または小胞体からのCa2+流出によって形成される。

カルシウムドメイン仮説

図1

 Chad & Eckert[1]によって提唱された。電位依存性Ca2+チャネルが短時間、開口することにより、細胞外から細胞内に流入したCa2+は、細胞質にある内在性Ca2+バッファーの作用により、細胞膜の内側に沿って半円形に濃度分布すると推定され、その空間分布をカルシウムドメインと呼んだ(図1)。カルシウムドメインを形成する最小ユニットは単一チャネルであるが、複数チャネルのカルシウムドメインが重複すると、より大きなカルシウムドメインが形成される。カルシウムドメインの重複の程度はチャネル当たりのCa2+流入量と、Ca2+チャネルの分布密度によって決定される。

カルシウムドメインを形成するチャネル

  1. 細胞外Ca2+の細胞内流入を媒介するチャネル:電位依存性Ca2+チャネル、Ca2+透過型チャネル(NMDA受容体チャネル、機械力受容チャネル、TRPチャネル、環状ヌクレオチド依存性チャネル、store-operated CRACチャネルなど)
  2. 細胞内Ca2+ストアから細胞質への流出を媒介するチャネル:リアノジン受容体チャネル、IP3受容体チャネル。

カルシウムドメインの機能的役割

  1. Ca2+チャネルの調節:細部内Ca2+によってCa2+チャネルは活性化または不活性化される。
  2. Ca2+依存性チャネルの活性化:Ca2+依存性K+チャネル、Ca2+依存性Cl-チャネルが知られる。
  3. 神経伝達物質の開口放出:Synaptotagminなどの低親和性Ca2+結合タンパク質により媒介される。
  4. シナプス小胞の取り込み(エンドサイトーシス):Synaptotagminなどの低親和性Ca2+結合タンパク質により媒介されるものと、Calmodulinなどの比較的低親和性Ca2+結合タンパク質により媒介されるものがある。
  5. シナプス伝達の修飾:Calmodulinとの結合を介して、後シナプス受容体の密度、または前シナプス末端からの伝達物質放出を増強する。
  6. 筋収縮。
  7. 細胞内ストアCa2+の放出促進(リアノジン受容体チャネル、IP3受容体チャネルからのCa2+に依存したCa2+の放出)。
  8. 成長円錐の伸長(TRPCチャネルなどからのCa2+流入)。

カルシウムドメインのサイズ

 カルシウムドメインのサイズは、多くの場合、光学解像度の限界を超えるため実測できない。そのため次善の策として、Ca2+結合速度の異なるカルシウムキレート剤(表1)を細胞内に負荷して、それによるカルシウム依存性機能の抑制率を定量して、ドメインサイズを推定することが行われている。

表1[2]

キレート剤 Kon(1/M.s) KD (μM)
BAPTA 4.0 x 108 0.22
EGTA 2.5 x 106 0.18

キレート剤の存在下におけるCa2+の拡散距離 λは

λ = (DCa/KonB)0.5

で近似される。ここでDCaは細胞質内におけるCa2+の拡散定数(220 μm2/s)[2]、Bはキレート剤の濃度に相当する。 この式から推定される カルシウムドメインのサイズは図1のようになる。 例えば、細胞内カルシウムドメインに依存する機能が10 mM EGTAによってブロックされた場合、この機能に関わるカルシウムドメインのサイズは> 94 nmと推定される。10 mM EGTA によってはブロックされないが1 mM BAPTAによって完全にブロックされる場合は23 nm- 94 nm、10 mM BAPTAでブロックされない場合は< 7.4 nmと推定される。

カルシウムマイクロドメインとカルシウムナノドメイン

 便宜上、カルシウムドメインのサイズが10-20 nm以下のものをナノドメイン、100-200 nm以上のものをマイクロドメインと呼び分けることが行われている[3]。しかし一方「マイクロドメイン」はカルシウムドメインの総称としても使われるので注意を要する。

参考文献

  1. Chad, J.E., & Eckert, R. (1984).
    Calcium domains associated with individual channels can account for anomalous voltage relations of CA-dependent responses. Biophysical journal, 45(5), 993-9. [PubMed:6329349] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  2. 2.0 2.1 Naraghi, M., & Neher, E. (1997).
    Linearized buffered Ca2+ diffusion in microdomains and its implications for calculation of [Ca2+] at the mouth of a calcium channel. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience, 17(18), 6961-73. [PubMed:9278532] [WorldCat]
  3. Neher, E. (1998).
    Vesicle pools and Ca2+ microdomains: new tools for understanding their roles in neurotransmitter release. Neuron, 20(3), 389-99. [PubMed:9539117] [WorldCat] [DOI]


(執筆者:高橋智幸 担当編集委員:尾藤晴彦)