「Gastrulation brain homeoboxファミリー」の版間の差分
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''[[Antp]]''クラスに分類される[[ホメオボックス遺伝子]]群の一つで<ref name=Holland2005><pubmed>16144637</pubmed></ref><ref name=Pollard2000><pubmed>10996074</pubmed></ref>、[[無脊椎動物]]、[[脊椎動物]]を問わず[[動物界]]に広く存在する('''表1''')。名称は、[[原腸形成]](gastrulation)期の[[アフリカツメガエル]]胚および発生初期の[[マウス]][[脳]]に発現が認められたことに由来する<ref name=Bulfone1993><pubmed>7687285</pubmed></ref><ref name=Frohman>'''Frohman, M.A.'''''Personal communication.''</ref>。 | ''[[Antp]]''クラスに分類される[[ホメオボックス遺伝子]]群の一つで<ref name=Holland2005><pubmed>16144637</pubmed></ref><ref name=Pollard2000><pubmed>10996074</pubmed></ref>、[[無脊椎動物]]、[[脊椎動物]]を問わず[[動物界]]に広く存在する('''表1''')。名称は、[[原腸形成]](gastrulation)期の[[アフリカツメガエル]]胚および発生初期の[[マウス]][[脳]]に発現が認められたことに由来する<ref name=Bulfone1993><pubmed>7687285</pubmed></ref><ref name=Frohman>'''Frohman, M.A.'''''Personal communication.''</ref>。 | ||
[[縮重プライマー]]を用いた[[PCR]] | [[縮重プライマー]]を用いた[[PCR]]による新たな[[Hox型ホメオボックス遺伝子|''Hox''型ホメオボックス遺伝子]]の同定検索の過程で同定された。脊椎動物では二つのパラログ遺伝子、''[[Gbx1]]''と''[[Gbx2]]''が知られており、多くの種で原腸形成以降様々な領域で発現するが、特に脳で顕著である。研究の初期では、脊椎動物胚での[[中脳後脳境界]][[midbrain–hindbrain boundary]] ([[MHB]])の決定と[[峡部]]形成、[[中脳]]・[[小脳]]を誘導する[[オーガナイザー]]活性との関わりから注目を浴びたが、[[中枢神経系]]の発生を始めとして多様な局面で役割が明らかになりつつある。 | ||
なお、最初に報告されたのは[[ニワトリ]]''Gbx1''であり、当初''[[Chox7]]''<ref name=Fainsod1989><pubmed>2473919</pubmed></ref>と呼ばれ、引き続いてマウスでは''[[MMoxB]]''と命名された<ref name=Murtha1991><pubmed>1720547</pubmed></ref>。一方、''Gbx2''は、同定時には''[[MMoxA]]''<ref name=Murtha1991><pubmed>1720547</pubmed></ref>あるいは''[[Stra7]]''<ref name=Bouillet1995><pubmed>8601031</pubmed></ref>と呼ばれていた。 | なお、最初に報告されたのは[[ニワトリ]]''Gbx1''であり、当初''[[Chox7]]''<ref name=Fainsod1989><pubmed>2473919</pubmed></ref>と呼ばれ、引き続いてマウスでは''[[MMoxB]]''と命名された<ref name=Murtha1991><pubmed>1720547</pubmed></ref>。一方、''Gbx2''は、同定時には''[[MMoxA]]''<ref name=Murtha1991><pubmed>1720547</pubmed></ref>あるいは''[[Stra7]]''<ref name=Bouillet1995><pubmed>8601031</pubmed></ref>と呼ばれていた。 | ||
これまで、''Gbx1''、''Gbx2''についてはヒトおよび主だった[[モデル動物|モデル脊椎動物]]で初期の研究が行われた('''表1''')。さらに、原始的脊椎動物である[[無顎類]]、脊椎動物と同じく[[脊索動物]]に属する[[頭索類]]<ref name=Holland2005><pubmed>16144637</pubmed></ref>、そして脊索動物とともに[[後口動物]]とされる[[半索動物]]<ref name=Bouillet1995><pubmed>8601031</pubmed></ref><ref name=Lowe2003><pubmed>12837244</pubmed></ref>と[[棘皮動物]]<ref name=Mito1997><pubmed>9299226</pubmed></ref><ref name=Morris1997><pubmed>9409777</pubmed></ref>でも見出された。また、[[前後軸]]を持つ[[多細胞動物]]のもう一つの主要系統である[[前口動物]]でも、[[節足動物]]([[ショウジョウバエ]])( | これまで、''Gbx1''、''Gbx2''についてはヒトおよび主だった[[モデル動物|モデル脊椎動物]]で初期の研究が行われた('''表1''')。さらに、原始的脊椎動物である[[無顎類]]、脊椎動物と同じく[[脊索動物]]に属する[[頭索類]]<ref name=Holland2005><pubmed>16144637</pubmed></ref>、そして脊索動物とともに[[後口動物]]とされる[[半索動物]]<ref name=Bouillet1995><pubmed>8601031</pubmed></ref><ref name=Lowe2003><pubmed>12837244</pubmed></ref>と[[棘皮動物]]<ref name=Mito1997><pubmed>9299226</pubmed></ref><ref name=Morris1997><pubmed>9409777</pubmed></ref>でも見出された。また、[[前後軸]]を持つ[[多細胞動物]]のもう一つの主要系統である[[前口動物]]でも、[[節足動物]]([[ショウジョウバエ]])([[unplugged]], ''[[unpg]]'')<ref name=Chiang1995></ref>、[[軟体動物]]<ref name=Mesías-Gansbiller2012><pubmed>22245384</pubmed></ref><ref name=Focareta2014><pubmed>25286399</pubmed></ref><ref name=Wollesen2017><pubmed>28710480</pubmed></ref>、[[環形動物]]で同定された<ref name=Lee2003><pubmed>12718333</pubmed></ref><ref name=Steinmetz2011><pubmed>21210944</pubmed></ref>。さらに近年、[[左右相称動物]]のみならず、[[放射相称動物]]である[[刺胞動物]]でも存在が知られるようになった<ref name=He2023><pubmed>37315559</pubmed></ref>。なお、これら無脊椎動物では''Gbx1''と''Gbx2''への[[遺伝子重複]]は確認されていない('''表1''')。意外なことに、脊椎動物に最も近縁とされ、原始的形質を保持する脊索動物の[[尾索類]]([[ホヤ]]、''[[Ciona]]'')のゲノムでは見出されておらず<ref name=Wada2003><pubmed>12736825</pubmed></ref>、この系統では二次的に喪失したと考えられる。 | ||
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|+ 表1.動物界における''Gbx''遺伝子の分布 | |+ 表1.動物界における''Gbx''遺伝子の分布 | ||
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|rowspan="3"|脊椎動物||''Gbx''|| [[ヤツメウナギ]](''Petromyzon marinus'') || <ref name=Bouillet1995><pubmed>8601031</pubmed></ref> | |rowspan="3"|脊椎動物||''Gbx''|| [[ヤツメウナギ]](''Petromyzon marinus'') || <ref name=Bouillet1995><pubmed>8601031</pubmed></ref> | ||
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|''Gbx1''<ref group="脚注1 -">''Xenopus''の''gbx1''については現時点ではゲノム配列からの予測に留まっている(2026年3月時点)。</ref> || [[ヒト]](''Homo sapiens'')、[[マウス]](''Mus musculus'')、[[ニワトリ]](''Gallus gallus'') || ヒト<ref name=Matsui1993a><pubmed>8097731</pubmed></ref>、マウス<ref name=Murtha1991><pubmed>1720547</pubmed></ref><ref name=Waters2003><pubmed>12799077</pubmed></ref>、ニワトリ<ref name=Fainsod1989><pubmed>2473919</pubmed></ref><ref name=Obinata2001><pubmed>11162634</pubmed></ref>、[[ゼブラフィッシュ]]<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref><ref name=Rhinn2003><pubmed>12963112</pubmed></ref> | |''Gbx1''<ref group="脚注1 -">''Xenopus''の''gbx1''については現時点ではゲノム配列からの予測に留まっている(2026年3月時点)。</ref> || [[ヒト]](''Homo sapiens'')、[[マウス]](''Mus musculus'')、[[ニワトリ]](''Gallus gallus'')、ゼブラフィッシュ(''Danio rerio'')|| ヒト<ref name=Matsui1993a><pubmed>8097731</pubmed></ref>、マウス<ref name=Murtha1991><pubmed>1720547</pubmed></ref><ref name=Waters2003><pubmed>12799077</pubmed></ref>、ニワトリ<ref name=Fainsod1989><pubmed>2473919</pubmed></ref><ref name=Obinata2001><pubmed>11162634</pubmed></ref>、[[ゼブラフィッシュ]]<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref><ref name=Rhinn2003><pubmed>12963112</pubmed></ref> | ||
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|''Gbx2''|| ヒト、マウス、ニワトリ、[[アフリカツメガエル]](''Xenopus laevis'' | |''Gbx2''|| ヒト、マウス、ニワトリ、[[アフリカツメガエル]](''Xenopus laevis'')、ゼブラフィッシュ||ヒト<ref name=Chapman1995><pubmed>7758585</pubmed></ref><ref name=Lin1996><pubmed>8838315</pubmed></ref><ref name=Matsui1993b><pubmed> 7903253 </pubmed></ref>、マウス<ref name=Bulfone1993><pubmed>7687285</pubmed></ref><ref name=Murtha1991><pubmed>1720547</pubmed></ref>、ニワトリ<ref name=Kowenz-Leutz1997><pubmed>9346236</pubmed></ref><ref name=Niss1998><pubmed>9767154</pubmed></ref>、アフリカツメガエル<ref name=von_Bubnoff1996><pubmed>8652408</pubmed></ref><ref name=Tour2001><pubmed>11684099</pubmed></ref>、ゼブラフィッシュ<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref><ref name=Rhinn2003><pubmed>12963112</pubmed></ref><ref name=Su2002></ref> | ||
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<references group="脚注1 -" /> | <references group="脚注1 -" /> | ||
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脊椎動物Gbx1は313–418アミノ酸からなり、種間では全長で60–73%の一致、Gbx2は340–348アミノ酸からなり、種間では65–72%の一致を示す。Gbx2内には、特に保存性の高い4つの領域(CD1, CD2、[[ホメオドメイン]]、CD3)が存在する('''図1A''')<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref>。Gbxタンパク質のホメオドメインは、[[Antp]]クラスの中で[[EHGbox]]グループ<ref name=Pollard2000><pubmed>10996074</pubmed></ref>または[[Extended Hoxグループ]]に分類される<ref name=Holland2005><pubmed>16144637</pubmed></ref>。Gbx2およびGbx1のホメオドメインは、それぞれ脊椎動物種間でほぼ完全に保存されており、両者の間でも96%が一致する。さらにGbx2のホメオドメインとショウジョウバエGbx(Unplugged;以下Unpg)の間でもやはり高い相同性が見られる(92%)('''図1B''')。 | 脊椎動物Gbx1は313–418アミノ酸からなり、種間では全長で60–73%の一致、Gbx2は340–348アミノ酸からなり、種間では65–72%の一致を示す。Gbx2内には、特に保存性の高い4つの領域(CD1, CD2、[[ホメオドメイン]]、CD3)が存在する('''図1A''')<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref>。Gbxタンパク質のホメオドメインは、[[Antp]]クラスの中で[[EHGbox]]グループ<ref name=Pollard2000><pubmed>10996074</pubmed></ref>または[[Extended Hoxグループ]]に分類される<ref name=Holland2005><pubmed>16144637</pubmed></ref>。Gbx2およびGbx1のホメオドメインは、それぞれ脊椎動物種間でほぼ完全に保存されており、両者の間でも96%が一致する。さらにGbx2のホメオドメインとショウジョウバエGbx(Unplugged;以下Unpg)の間でもやはり高い相同性が見られる(92%)('''図1B''')。 | ||
N末側領域に位置するCD1配列についてはその内部のN-terminal | N末側領域に位置するCD1配列についてはその内部のN-terminal Core Region (NCR)配列がGbx1でも保存されている<ref name=Nakayama2013><pubmed>23933069</pubmed></ref>('''図1C''')。N-terminal Core Regionには、[[転写]]抑制活性をもつとされる[[Eh1]]様配列<ref name=Heimbucher2007><pubmed>17060451</pubmed></ref>に加え、Gbx2においては転写活性化能を持つとされるプロリンリッチ(Pro-rich)配列<ref name=Mermod1989><pubmed>2504497</pubmed></ref>が含まれており<ref name=Bouillet1995><pubmed>8601031</pubmed></ref>、さらにPro-rich様配列がGbx1とGbx2の両者で認められる。明確なCD2相同配列はGbx1では見られないが、CD3配列はGbx1のC末端領域と比較的高い相同性を示し、Unpgでも部分的に保存されている('''図1D''')。以上より、Gbx1、Unpgのいずれも分子的機能についてGbx2とは共通性があるとともに違いも予想される。なお、ゼブラフィッシュ胚での[[強制発現]]実験では、Gbx1とGbx2は同等の前方脳形成抑制効果を示しており<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref>、両者の機能は少なくとも初期脊椎動物胚では類似していると考えられる。 | ||
[[ファイル:Yamasu Gbx family Fig2.jpg|サムネイル|'''図2.峡部オーガナイザーの形成に関わる遺伝子カスケード'''<br>主としてマウス、ニワトリ、ゼブラフィッシュでの研究から推定された。原腸形成期で働く''Gbx''は四足類では''Gbx2''、ゼブラフィッシュでは''gbx1''と考えられる。出典は本文参照。ただし、1–3のゼブラフィッシュ遺伝子については文献<ref name=Belting2001><pubmed> 11684654 </pubmed></ref><ref name=Burgess2002><pubmed>11861474</pubmed></ref><ref name=Tallafuß2001><pubmed>11641225</pubmed></ref><ref name=Dworkin2012><pubmed>22223680</pubmed></ref>参照。]] | [[ファイル:Yamasu Gbx family Fig2.jpg|サムネイル|'''図2.峡部オーガナイザーの形成に関わる遺伝子カスケード'''<br>主としてマウス、ニワトリ、ゼブラフィッシュでの研究から推定された。原腸形成期で働く''Gbx''は四足類では''Gbx2''、ゼブラフィッシュでは''gbx1''と考えられる。出典は本文参照。ただし、1–3のゼブラフィッシュ遺伝子については文献<ref name=Belting2001><pubmed> 11684654 </pubmed></ref><ref name=Burgess2002><pubmed>11861474</pubmed></ref><ref name=Tallafuß2001><pubmed>11641225</pubmed></ref><ref name=Dworkin2012><pubmed>22223680</pubmed></ref>参照。]] | ||
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==発現 == | ==発現 == | ||
===''Gbx1''=== | ===''Gbx1''=== | ||
マウスの場合、E7.5から胚体の後方領域で後端ほど強く発現しており、発現前端は''Gbx2''のものよりやや後方にある。その後、[[後脳]]第2-第7[[菱脳]]節(r2-7)、[[脊髄]]、[[眼胞]]、[[内側基底核原基]]([[medial ganglionic eminence | マウスの場合、E7.5から胚体の後方領域で後端ほど強く発現しており、発現前端は''Gbx2''のものよりやや後方にある。その後、[[後脳]]第2-第7[[菱脳]]節(r2-7)、[[脊髄]]、[[眼胞]]、[[内側基底核原基]]([[medial ganglionic eminence]])、[[前脳基底部]]などで発現が見られる<ref name=Rhinn2004><pubmed>14745958</pubmed></ref>。神経系以外では、[[原条]]、[[尿嚢]]、[[側板中胚葉]]でも発現する<ref name=Waters2003><pubmed>12799077</pubmed></ref><ref name=Rhinn2004><pubmed>14745958</pubmed></ref>。 | ||
ニワトリでは、13日胚の脳と[[骨格筋]]で発現が検出された<ref name=Kowenz-Leutz1997><pubmed>9346236</pubmed></ref>。さらに、胚由来の[[表皮]]や[[腸]]の[[粘膜]][[上皮]] | ニワトリでは、13日胚の脳と[[骨格筋]]で発現が検出された<ref name=Kowenz-Leutz1997><pubmed>9346236</pubmed></ref>。さらに、胚由来の[[表皮]]や[[腸]]の[[粘膜]][[上皮]]については培養系において発現が確認されている<ref name=Obinata2001><pubmed>11162634</pubmed></ref>。 | ||
ゼブラフィッシュでは、原腸形成期においてマウスとは発現パターンに大きな違いが見られる。この動物の場合、''gbx1''は、''gbx2''の発現がまだ見られない原腸形成中期(75% epiboly)において、[[Orthodenticle homeobox 2]] (''[[otx2]]'')の発現する前方脳領域と接して(相補的に)[[神経板]]の後方で広く発現する<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref><ref name=Rhinn2003><pubmed>12963112</pubmed></ref> ('''図2, 3''')。こうした発現はマウス''Gbx1''では知られておらず、下述する[[四足類]]での''Gbx2''の発現と一致する。一方、[[体節]]形成期以降での発現は、マウスに類似している。まず、後脳では前端(r1)で発現が消失する一方、より後方の菱脳節(r2-7)、そして脊髄全域で発現する<ref name=Wang2018><pubmed>29289755</pubmed></ref>('''図2, 3''')。[[咽頭胚期]](30 hpf以降)になると、[[外套]]下部([[終脳]]腹側)の内側基底核原基領域、そして後脳の[[鰓弓]][[運動ニューロン]]でも発現している<ref name=Rhinn2003><pubmed>12963112</pubmed></ref><ref name=Wang2018><pubmed>29289755</pubmed></ref>。 | ゼブラフィッシュでは、原腸形成期においてマウスとは発現パターンに大きな違いが見られる。この動物の場合、''gbx1''は、''gbx2''の発現がまだ見られない原腸形成中期(75% epiboly)において、[[Orthodenticle homeobox 2]] (''[[otx2]]'')の発現する前方脳領域と接して(相補的に)[[神経板]]の後方で広く発現する<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref><ref name=Rhinn2003><pubmed>12963112</pubmed></ref> ('''図2, 3''')。こうした発現はマウス''Gbx1''では知られておらず、下述する[[四足類]]での''Gbx2''の発現と一致する。一方、[[体節]]形成期以降での発現は、マウスに類似している。まず、後脳では前端(r1)で発現が消失する一方、より後方の菱脳節(r2-7)、そして脊髄全域で発現する<ref name=Wang2018><pubmed>29289755</pubmed></ref>('''図2, 3''')。[[咽頭胚期]](30 hpf以降)になると、[[外套]]下部([[終脳]]腹側)の内側基底核原基領域、そして後脳の[[鰓弓]][[運動ニューロン]]でも発現している<ref name=Rhinn2003><pubmed>12963112</pubmed></ref><ref name=Wang2018><pubmed>29289755</pubmed></ref>。 | ||
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マウスおよびニワトリでは、''[[Otx2]]''と''[[Gbx2]]''の発現は原腸形成期に独立して始まり、重なりがみられるが、原腸形成後に両遺伝子の発現は排他的になり、明確な境界を形成する。なお、この時期に後脳前端で''[[Fgf8]]''の発現が始まり、峡部オーガナイザーが形成される<ref name=Garda2001><pubmed>11231064</pubmed></ref><ref name=Li2001><pubmed>11748135</pubmed></ref>('''図2''')。 | マウスおよびニワトリでは、''[[Otx2]]''と''[[Gbx2]]''の発現は原腸形成期に独立して始まり、重なりがみられるが、原腸形成後に両遺伝子の発現は排他的になり、明確な境界を形成する。なお、この時期に後脳前端で''[[Fgf8]]''の発現が始まり、峡部オーガナイザーが形成される<ref name=Garda2001><pubmed>11231064</pubmed></ref><ref name=Li2001><pubmed>11748135</pubmed></ref>('''図2''')。 | ||
原腸形成以降は様々な領域で発現する。マウスでは<ref name=Bouillet1995><pubmed>8601031</pubmed></ref><ref name=Wassarman1997><pubmed>9247335</pubmed></ref>、E8.5では[[前腸]]と[[尾芽]]、E9.5において脊髄全域、[[内耳]]原基([[耳胞]])、[[咽頭弓]]で発現し、E11.5になると、[[視床]]、[[線条体]]、[[小脳]]、[[延髄]] | 原腸形成以降は様々な領域で発現する。マウスでは<ref name=Bouillet1995><pubmed>8601031</pubmed></ref><ref name=Wassarman1997><pubmed>9247335</pubmed></ref>、E8.5では[[前腸]]と[[尾芽]]、E9.5において脊髄全域、[[内耳]]原基([[耳胞]])、[[咽頭弓]]で発現し、E11.5になると、[[視床]]、[[線条体]]、[[小脳]]、[[延髄]]、脊髄背側、内耳上皮、咽頭弓でも発現が観察される。成体では視床、[[膝状体]]、[[扁桃体]]で発現し、さらに[[脾臓]]とメス[[生殖管]]で発現が認められている<ref name=Bouillet1995><pubmed>8601031</pubmed></ref>。ニワトリ<ref name=Martínez-de-la-Torre2002><pubmed>11923005</pubmed></ref><ref name=Niss1998><pubmed>9767154</pubmed></ref><ref name=Shamim1998><pubmed>9767156</pubmed></ref>とアフリカツメガエル<ref name=von_Bubnoff1996><pubmed>8652408</pubmed></ref><ref name=Tour2001><pubmed>11684099</pubmed></ref>でもマウスと類似する(詳細は'''表2'''参照)。なお、ニワトリでは、様々な造血系組織([[骨髄]]、[[ファブリキウス嚢]]、[[肝臓]]、[[脾臓]]、[[胸腺]])でも発現が観察されている<ref name=Kowenz-Leutz1997><pubmed>9346236</pubmed></ref>。 | ||
ゼブラフィッシュの発現パターンも、原腸形成終了後になると四足類のものと共通性が高いが<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref><ref name=Rhinn2003><pubmed>12963112</pubmed></ref><ref name=Su2002><pubmed>11900984</pubmed></ref>、発生初期(原腸形成期)においては''gbx1''の場合と同様に大きな違いが見られる。ゼブラフィッシュでも原腸形成期から神経板で発現するが<ref name=Mori1994><pubmed>7898305</pubmed></ref>、発現開始時期が遅く、原腸形成終期(90% epiboly)に後脳前端(r1)で初めて発現が検出され<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref><ref name=Rhinn2003><pubmed>12963112</pubmed></ref><ref name=Su2002><pubmed>11900984</pubmed></ref>、原腸形成終了後も維持される('''図2, 3''')。[[体節形成期]](18–24 hpf)では終脳で一過的な発現が認められ、36 hpf以降には[[視床原基]]でも発現が観察される<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref><ref name=Su2002><pubmed>11900984</pubmed></ref> | ゼブラフィッシュの発現パターンも、原腸形成終了後になると四足類のものと共通性が高いが<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref><ref name=Rhinn2003><pubmed>12963112</pubmed></ref><ref name=Su2002><pubmed>11900984</pubmed></ref>、発生初期(原腸形成期)においては''gbx1''の場合と同様に大きな違いが見られる。ゼブラフィッシュでも原腸形成期から神経板で発現するが<ref name=Mori1994><pubmed>7898305</pubmed></ref>、発現開始時期が遅く、原腸形成終期(90% epiboly)に後脳前端(r1)で初めて発現が検出され<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref><ref name=Rhinn2003><pubmed>12963112</pubmed></ref><ref name=Su2002><pubmed>11900984</pubmed></ref>、原腸形成終了後も維持される('''図2, 3''')。[[体節形成期]](18–24 hpf)では終脳で一過的な発現が認められ、36 hpf以降には[[視床原基]]でも発現が観察される<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref><ref name=Su2002><pubmed>11900984</pubmed></ref>。体節形成期以降、[[内耳原基]]/[[耳胞]]、移動中の[[神経堤細胞]]、咽頭弓、尾芽などでも発現が認められる。 | ||
=== 無脊椎動物の''Gbx''=== | === 無脊椎動物の''Gbx''=== | ||
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| マウス | | マウス | ||
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E7.5から後方で強く発現する。発現前端は''Gbx2''のものよりやや後方にあり、後方に向けて発現が強くなる。その後、後脳第2–第7菱脳節(r2–r7)、脊髄([[脳室帯]])、[[眼胞]] | E7.5から後方で強く発現する。発現前端は''Gbx2''のものよりやや後方にあり、後方に向けて発現が強くなる。その後、後脳第2–第7菱脳節(r2–r7)、脊髄([[脳室帯]])、[[眼胞]]、内側基底核原基、前脳基底部などで発現が見られる。後脳では特にr3とr5で発現が顕著となる。<br> | ||
尿素、尿嚢、側板中胚葉でも発現が見られる。 | 尿素、尿嚢、側板中胚葉でも発現が見られる。 | ||
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| 97行目: | 97行目: | ||
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13日齢の脳と骨格筋で発現が検出された。<br> | 13日齢の脳と骨格筋で発現が検出された。<br> | ||
胚由来の表皮、そして腸の粘膜上皮でも培養系で発現が見られている。 | |||
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<ref name=Kowenz-Leutz1997></ref><br> | <ref name=Kowenz-Leutz1997></ref><br> | ||
| 108行目: | 108行目: | ||
| ゼブラフィッシュ | | ゼブラフィッシュ | ||
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原腸形成中期(75% | 原腸形成中期(75% epiboly)から''otx2''の発現する前方領域とほぼ相補的に神経板の後方で広く発現する。<br> | ||
体節形成以降、後脳では前端(r1)で発現が消失する一方、より後方の菱脳節及び脊髄で発現が見られる。各菱脳節での発現レベルはダイナミックに変動する。<br> | 体節形成以降、後脳では前端(r1)で発現が消失する一方、より後方の菱脳節及び脊髄で発現が見られる。各菱脳節での発現レベルはダイナミックに変動する。<br> | ||
咽頭期(30 hpf以降)、外套下部(内側基底核原基)で発現が観察され、後脳運動ニューロンでも発現する。 | 咽頭期(30 hpf以降)、外套下部(内側基底核原基)で発現が観察され、後脳運動ニューロンでも発現する。 | ||
| 119行目: | 119行目: | ||
| マウス | | マウス | ||
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頭尾軸(E7.5–7. | 頭尾軸(E7.5–7.75)に後方の3胚葉全てで発現し、その後中枢神経系で発現は顕著となる。E7.75には中脳後脳境界周辺を前端として後方中枢神経系で広く認められるが、徐々に前方に限定され、E10.5では後脳前端に収束する。<br> | ||
中脳後脳境界周辺以外においても多様な部位で発現する。E8.5胚では前腸と尾芽、E9.5胚では脊髄全域、内耳原基(耳胞)、咽頭弓、E11.5では視床、線条体、小脳、延髄の一部、脊髄背側、内耳上皮、咽頭弓で発現が検出される。成体では脳、脾臓、扁桃体で発現する。 | 中脳後脳境界周辺以外においても多様な部位で発現する。E8.5胚では前腸と尾芽、E9.5胚では脊髄全域、内耳原基(耳胞)、咽頭弓、E11.5では視床、線条体、小脳、延髄の一部、脊髄背側、内耳上皮、咽頭弓で発現が検出される。成体では脳、脾臓、扁桃体で発現する。 | ||
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| 139行目: | 139行目: | ||
| アフリカツメガエル | | アフリカツメガエル | ||
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''gbx2''遺伝子は2つ同定されており(''gbx2a'',''gbx2b'')。''gbx2a''はマウスやニワトリと同様、原腸形成初期・中期(st.10.5/11)から後方の背・側外胚葉で広く発現し、st.13/14では中脳後脳境界に対応する鮮明な前方発現境界を示す。その後r1、脊髄、後方後脳、耳胞、移動中の神経堤細胞、咽頭弓で発現が見られる。''gbx2b''も同様の発現を示すが開始が遅く、発現レベルが低い。一方で[[血島]]での発現が観察される。 | ''gbx2''遺伝子は2つ同定されており(''gbx2a'', ''gbx2b'')。''gbx2a''はマウスやニワトリと同様、原腸形成初期・中期(st.10.5/11)から後方の背・側外胚葉で広く発現し、st.13/14では中脳後脳境界に対応する鮮明な前方発現境界を示す。その後r1、脊髄、後方後脳、耳胞、移動中の神経堤細胞、咽頭弓で発現が見られる。''gbx2b''も同様の発現を示すが開始が遅く、発現レベルが低い。一方で[[血島]]での発現が観察される。 | ||
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<ref name=von_Bubnoff1996><pubmed>8652408</pubmed></ref><br> | <ref name=von_Bubnoff1996><pubmed>8652408</pubmed></ref><br> | ||
| 195行目: | 195行目: | ||
一方、初期発生で脳形成を制御する遺伝子に対しては転写抑制性に働く例が多い。Gbx2はゼブラフィッシュにおいて、TAATTAを含む''[[fgf8a]]''の[[中脳・後脳境界]] (midbrain–hindbrain boundary, MHB)[[エンハンサー]]内配列に結合して転写抑制的に作用する<ref name=Inoue2008><pubmed>18280464</pubmed></ref>。マウスでは、''[[Otx2]]''の[[前・中脳エンハンサー]]内にあるTAATTAに結合して転写を抑制すること<ref name=Inoue2012><pubmed>22566684</pubmed></ref>、''[[Lmo3]]''の上流領域にあるCTAATTAGに結合して[[Lhx2]]依存性の転写を抑制することが報告されている<ref name=Chatterjee2012><pubmed>23136391</pubmed></ref>。実際、少なくとも発生初期の脳形成においては、直接の制御かどうかは不明であるものの、多くの脳形成制御遺伝子に対して発現抑制効果が観察されている。なお、アフリカツメガエルおよびゼブラフィッシュにおいて、''Gbx2''には前・中脳形成抑制活性が見られるが、[[VP16]] の転写活性化領域、あるいは[[Engrailed]]の転写抑制領域を用いたキメラ遺伝子の過剰発現が示す効果から、Gbx2タンパク質が転写抑制因子として働くことが示唆された<ref name=Tour2002><pubmed>11850185</pubmed></ref><ref name=Nakayama2013><pubmed>23933069</pubmed></ref>。 | 一方、初期発生で脳形成を制御する遺伝子に対しては転写抑制性に働く例が多い。Gbx2はゼブラフィッシュにおいて、TAATTAを含む''[[fgf8a]]''の[[中脳・後脳境界]] (midbrain–hindbrain boundary, MHB)[[エンハンサー]]内配列に結合して転写抑制的に作用する<ref name=Inoue2008><pubmed>18280464</pubmed></ref>。マウスでは、''[[Otx2]]''の[[前・中脳エンハンサー]]内にあるTAATTAに結合して転写を抑制すること<ref name=Inoue2012><pubmed>22566684</pubmed></ref>、''[[Lmo3]]''の上流領域にあるCTAATTAGに結合して[[Lhx2]]依存性の転写を抑制することが報告されている<ref name=Chatterjee2012><pubmed>23136391</pubmed></ref>。実際、少なくとも発生初期の脳形成においては、直接の制御かどうかは不明であるものの、多くの脳形成制御遺伝子に対して発現抑制効果が観察されている。なお、アフリカツメガエルおよびゼブラフィッシュにおいて、''Gbx2''には前・中脳形成抑制活性が見られるが、[[VP16]] の転写活性化領域、あるいは[[Engrailed]]の転写抑制領域を用いたキメラ遺伝子の過剰発現が示す効果から、Gbx2タンパク質が転写抑制因子として働くことが示唆された<ref name=Tour2002><pubmed>11850185</pubmed></ref><ref name=Nakayama2013><pubmed>23933069</pubmed></ref>。 | ||
この様にGbxタンパク質は状況に応じて転写活性化因子、転写抑制因子の両方の活性を示す。実際、''Gbx2''下流遺伝子に関する網羅的解析でも、遺伝子発現の活性化、抑制の両方に関与することが示されている<ref name=Mallika2015><pubmed>26297811</pubmed></ref><ref name=Roeseler2012><pubmed>23144817</pubmed></ref><ref name=Nakayama2017><pubmed>28756106</pubmed></ref>。Gbxタンパク質で見られる保存領域の役割については、ゼブラフィッシュ胚で欠失導入の効果が検討され<ref name=Nakayama2013><pubmed>23933069</pubmed></ref>、Gbx2の前・中脳の形成抑制活性には[[Eh1配列]]と[[CD3配列]]の双方が寄与することが示された。Gbx2による前方脳抑制活性に Eh1配列が必要であることは[[メダカ]]でも観察されており、この場合、[[Groucho]]/[[Tle4]] との結合が必要とされた<ref name=Heimbucher2007><pubmed>17060451</pubmed></ref>。''Gbx2''は[[神経堤]]細胞の形成にも関与するが、これに由来する[[色素細胞]]の分化制御にはGbx2タンパク質のN末領域の関与が報告されている<ref name=Hozumi2018><pubmed>29787751</pubmed></ref> | |||
。 | 。 | ||
| 218行目: | 218行目: | ||
| <ref name=Roeseler2012></ref> | | <ref name=Roeseler2012></ref> | ||
|- | |- | ||
| | | ニワトリ''MGF''プロモーター | ||
| ATTAA | | ATTAA | ||
| レポーターアッセイ | | レポーターアッセイ | ||
| 225行目: | 225行目: | ||
| <ref name=Kowenz-Leutz1997></ref> | | <ref name=Kowenz-Leutz1997></ref> | ||
|- | |- | ||
| | | ヒト''IL-6''プロモーター | ||
| ATTA | | ATTA | ||
| レポーターアッセイ | | レポーターアッセイ | ||
| 232行目: | 232行目: | ||
| <ref name=Gao2000></ref> | | <ref name=Gao2000></ref> | ||
|- | |- | ||
| | | ''EEF1A1''プロモーター | ||
| TATATAA | | TATATAA | ||
| レポーターアッセイ | | レポーターアッセイ | ||
| 272行目: | 272行目: | ||
: ''Gbx2''遺伝子破壊(KO)マウス胚では、峡部、小脳、そして r1-3 が欠損する一方で、中脳は尾側に拡大していた<ref name=Wassarman1997><pubmed>9247335</pubmed></ref>。この実験は、峡部発生、そして結果的には小脳と中脳の発生において''Gbx2''が不可欠であることを初めて示したものである。一方、''Otx2''を後脳前方に異所的に発現させた[[ノックイン]]マウスでは、新たに生じた''Otx2''の発現後端に従って中脳後脳境界遺伝子の発現領域も後方へシフトしていた<ref name=Broccoli1999><pubmed>10490025</pubmed></ref>。これに対し、''Gbx2''を中脳後方に異所的に発現させたノックインマウスでは、''Gbx2''の発現前端とともに中脳後脳境界遺伝子の発現について前方へのシフトが見られた<ref name=Millet1999><pubmed>10490024</pubmed></ref>。以上より、原腸形成時における''Otx2''と''Gbx2''の発現境界が中脳後脳境界の位置を決定すると考えられる<ref name=Simeone2000><pubmed>10827447</pubmed></ref><ref name=Joyner2000><pubmed>11063941</pubmed></ref>。また、中脳-r1 領域に''Gbx2''を異所的に発現させると、中脳、小脳が欠損することから<ref name=Sunmonu2009><pubmed>19603509</pubmed></ref>、''Gbx2''は前方脳の形成には抑制的であると考えられる。中脳後脳境界遺伝子(''Fgf8'',''Wnt1'',''Pax2'',''En'')の発現開始は''Otx2''及び''Gbx2''とは独立して起きるが、その後の発現制御には''Otx2-Gbx2''相互作用が必要である<ref name=Li2001><pubmed>11748135</pubmed></ref><ref name=Li2005><pubmed>15790971</pubmed></ref><ref name=Liu2001><pubmed>11124114</pubmed></ref><ref name=Garda2001><pubmed>11231064</pubmed></ref><ref name=Hidalgo-Sanchez2002><pubmed>11803577</pubmed></ref><ref name=Sunmonu2011><pubmed>21266408</pubmed></ref>。近年、ヒト[[ES細胞]]から誘導された前方後脳細胞では''[[SOX1]]''が高発現して''GBX2''を活性化すること、''SOX1''の発現は''OTX2''により抑制されることが観察されており、こうした機構も 中脳後脳境界の維持と後脳前方の発生に寄与すると考えられている<ref name=Liu2020><pubmed>32905879</pubmed></ref>。 | : ''Gbx2''遺伝子破壊(KO)マウス胚では、峡部、小脳、そして r1-3 が欠損する一方で、中脳は尾側に拡大していた<ref name=Wassarman1997><pubmed>9247335</pubmed></ref>。この実験は、峡部発生、そして結果的には小脳と中脳の発生において''Gbx2''が不可欠であることを初めて示したものである。一方、''Otx2''を後脳前方に異所的に発現させた[[ノックイン]]マウスでは、新たに生じた''Otx2''の発現後端に従って中脳後脳境界遺伝子の発現領域も後方へシフトしていた<ref name=Broccoli1999><pubmed>10490025</pubmed></ref>。これに対し、''Gbx2''を中脳後方に異所的に発現させたノックインマウスでは、''Gbx2''の発現前端とともに中脳後脳境界遺伝子の発現について前方へのシフトが見られた<ref name=Millet1999><pubmed>10490024</pubmed></ref>。以上より、原腸形成時における''Otx2''と''Gbx2''の発現境界が中脳後脳境界の位置を決定すると考えられる<ref name=Simeone2000><pubmed>10827447</pubmed></ref><ref name=Joyner2000><pubmed>11063941</pubmed></ref>。また、中脳-r1 領域に''Gbx2''を異所的に発現させると、中脳、小脳が欠損することから<ref name=Sunmonu2009><pubmed>19603509</pubmed></ref>、''Gbx2''は前方脳の形成には抑制的であると考えられる。中脳後脳境界遺伝子(''Fgf8'',''Wnt1'',''Pax2'',''En'')の発現開始は''Otx2''及び''Gbx2''とは独立して起きるが、その後の発現制御には''Otx2-Gbx2''相互作用が必要である<ref name=Li2001><pubmed>11748135</pubmed></ref><ref name=Li2005><pubmed>15790971</pubmed></ref><ref name=Liu2001><pubmed>11124114</pubmed></ref><ref name=Garda2001><pubmed>11231064</pubmed></ref><ref name=Hidalgo-Sanchez2002><pubmed>11803577</pubmed></ref><ref name=Sunmonu2011><pubmed>21266408</pubmed></ref>。近年、ヒト[[ES細胞]]から誘導された前方後脳細胞では''[[SOX1]]''が高発現して''GBX2''を活性化すること、''SOX1''の発現は''OTX2''により抑制されることが観察されており、こうした機構も 中脳後脳境界の維持と後脳前方の発生に寄与すると考えられている<ref name=Liu2020><pubmed>32905879</pubmed></ref>。 | ||
: ニワトリ胚の場合も、''in ovo''electroporation による異所的発現により<ref name=Katahira2000><pubmed>10704829</pubmed></ref>、''Gbx2''が神経板において、中脳後脳境界を前方へシフトさせること、''Otx2''と''Gbx2''が相互抑制関係にあること、さらに''Fgf8''の発現が''Otx2-Gbx2''境界で誘導されることが示された。アフリカツメガエルでも、mRNA 注入による''gbx2''の過剰発現実験や[[アニマルキャップ]]を用いた''in vitro''系の実験により同様の結果が報告された<ref name=King1998><pubmed>9707329</pubmed></ref><ref name=Tour2001><pubmed>11684099</pubmed></ref><ref name=Glavic2002><pubmed> 11923198 </pubmed></ref><ref name=Tour2002a><pubmed>11850185</pubmed></ref><ref name=Tour2002b><pubmed>11744364</pubmed></ref>。さらに、これらの動物でも原腸形成期の後方神経板では''Gbx2''が広く発現することから、四足類では共通して、原腸形成期に後方神経板で発現する''Gbx2''と前方神経板で発現する''Otx2''の抑制的相互作用が中脳後脳境界の位置決定と確立に関与すると考えられる。 | : ニワトリ胚の場合も、''in ovo'' electroporation による異所的発現により<ref name=Katahira2000><pubmed>10704829</pubmed></ref>、''Gbx2''が神経板において、中脳後脳境界を前方へシフトさせること、''Otx2''と''Gbx2''が相互抑制関係にあること、さらに''Fgf8''の発現が''Otx2-Gbx2''境界で誘導されることが示された。アフリカツメガエルでも、mRNA 注入による''gbx2''の過剰発現実験や[[アニマルキャップ]]を用いた''in vitro''系の実験により同様の結果が報告された<ref name=King1998><pubmed>9707329</pubmed></ref><ref name=Tour2001><pubmed>11684099</pubmed></ref><ref name=Glavic2002><pubmed> 11923198 </pubmed></ref><ref name=Tour2002a><pubmed>11850185</pubmed></ref><ref name=Tour2002b><pubmed>11744364</pubmed></ref>。さらに、これらの動物でも原腸形成期の後方神経板では''Gbx2''が広く発現することから、四足類では共通して、原腸形成期に後方神経板で発現する''Gbx2''と前方神経板で発現する''Otx2''の抑制的相互作用が中脳後脳境界の位置決定と確立に関与すると考えられる。 | ||
: 一方、''Gbx1''は、少なくともマウス胚では中脳後脳境界領域の決定時期には中脳後脳境界より後方で発現することから、峡部形成には関与しないと考えられる。 | : 一方、''Gbx1''は、少なくともマウス胚では中脳後脳境界領域の決定時期には中脳後脳境界より後方で発現することから、峡部形成には関与しないと考えられる。 | ||
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: なお、''gbx1''と''gbx2''の二重変異胚では峡部形成の異常が明瞭に観察された。単独変異での異常は軽微とされたが、原腸形成終了前後では後脳前端において''gbx1''と''gbx2''の発現が重複しており、このことが原因と考えられる。 | : なお、''gbx1''と''gbx2''の二重変異胚では峡部形成の異常が明瞭に観察された。単独変異での異常は軽微とされたが、原腸形成終了前後では後脳前端において''gbx1''と''gbx2''の発現が重複しており、このことが原因と考えられる。 | ||
: mRNA 注入による[[過剰発現]]実験<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref>の結果、''gbx1''、''gbx2''のいずれにも、マウスなどの[[羊膜類]]や[[両生類]]の''Gbx2''と同様に、前・中脳形成を抑制する活性が見られた。ただし、低レベルでの強制発現では異常が峡部に限定されており、中脳後脳境界/峡部が''gbx''に対して高い感受性を有すると考えられる<ref name=Nakayama2013><pubmed>23933069</pubmed></ref>。熱ショック誘導性''gbx2'' | : mRNA 注入による[[過剰発現]]実験<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref>の結果、''gbx1''、''gbx2''のいずれにも、マウスなどの[[羊膜類]]や[[両生類]]の''Gbx2''と同様に、前・中脳形成を抑制する活性が見られた。ただし、低レベルでの強制発現では異常が峡部に限定されており、中脳後脳境界/峡部が''gbx''に対して高い感受性を有すると考えられる<ref name=Nakayama2013><pubmed>23933069</pubmed></ref>。熱ショック誘導性''gbx2''遺伝子(''hsp-gbx2'')を用いた時期特異的な強制発現実験により、中脳後脳境界/峡部の形成において''otx2-gbx''の抑制的相互作用が決定的になるのは原腸形成の終了前後であるとされた。 | ||
: なお、ゼブラフィッシュの場合、中脳後脳境界領域において神経分化が抑制されており、この未分化状態がシグナルセンターとしての機能に重要と考えられている。この神経分化抑制に関わる主要遺伝子として[[basic-helix-loop-helix]] ([[bHLH]])遺伝子の''[[her5]]''が知られており<ref name=Geling2003><pubmed>12620984</pubmed></ref>、同様の峡部オーガナイザーの維持機能はマウス''[[Hes1]]/[[Hes3]]''でも報告されている<ref name=Hirata2001><pubmed>11500373</pubmed></ref>。上記の''hsp-gbx2''の誘導実験により、''gbx2''は''her5''の発現領域を限定することでシグナルセンターの維持に寄与するとされる<ref name=Nakayama2017><pubmed>28756106</pubmed></ref>。 | : なお、ゼブラフィッシュの場合、中脳後脳境界領域において神経分化が抑制されており、この未分化状態がシグナルセンターとしての機能に重要と考えられている。この神経分化抑制に関わる主要遺伝子として[[basic-helix-loop-helix]] ([[bHLH]])遺伝子の''[[her5]]''が知られており<ref name=Geling2003><pubmed>12620984</pubmed></ref>、同様の峡部オーガナイザーの維持機能はマウス''[[Hes1]]/[[Hes3]]''でも報告されている<ref name=Hirata2001><pubmed>11500373</pubmed></ref>。上記の''hsp-gbx2''の誘導実験により、''gbx2''は''her5''の発現領域を限定することでシグナルセンターの維持に寄与するとされる<ref name=Nakayama2017><pubmed>28756106</pubmed></ref>。 | ||
====小脳・後脳前方領域==== | ====小脳・後脳前方領域==== | ||
''Gbx2'' | ''Gbx2''ノックアウトマウスでは、峡部に由来する[[峡部核]]、小脳、[[青斑核]]、[[三叉神経運動核]]([[第V運動神経]])が欠損しており、この遺伝子が小脳と後脳前方領域の発生に不可欠であることが示されていた<ref name=Wassarman1997><pubmed>9247335</pubmed></ref>。その後、''Gbx2''[[ハイポモルフ変異]]マウスを用いて行われた研究では、後脳前方の異なる領域ごとに必要な''Gbx2''の発現レベルが違うこと、r1 の前方と r2 の発生がもっとも高い''Gbx2''の発現を必要とすることが示されている<ref name=Waters2006><pubmed>16651541</pubmed></ref>。また、[[コンディショナルノックアウト法]]により E9 以降に後脳 r1 で''Gbx2''を欠損させたマウス胚の解析からは、この時期における''Gbx2''の機能が''Otx2''の発現抑制ではなく、峡部オーガナイザー遺伝子の発現維持であること、''Otx2''の抑制は''Fgf8''によって担われており、''Gbx2''のはたらきは''Fgf8''の発現領域の決定であることが示唆された<ref name=Li2002><pubmed>12367504</pubmed></ref>。同様のコンディショナルノックアウト法により、''Gbx2''は後脳自体の分化にも不可欠とされた<ref name=Sunmonu2011><pubmed>21266408</pubmed></ref>。一方、[[誘導性遺伝学的発生運命追跡法]]([[inducible genetic fate mapping]], [[IGFM]])により、マウス胚[[小脳原基]]の''Gbx2''発現細胞は、E7.5 から E11.5 までの異なる時期に、[[プルキンエ細胞]]、[[顆粒細胞]]、そして深部[[小脳核]]ニューロンへの分化運命の選択を行うことが明らかにされている<ref name=Hagan2017><pubmed>28785208</pubmed></ref>。 | ||
一方、ゼブラフィッシュ体節形成期胚において、後脳前端の''gbx2''発現細胞を追跡した実験では、''gbx2''細胞は後方に移動し、[[網様体]]脊髄ニューロンなどに分化するとされた<ref name=Tsuda2019><pubmed>30222999</pubmed></ref>。また、''gbx2''のノックダウン実験では、r2、r3、r5 における[[細胞死]]の増加、後脳前方の短縮、r2 および r3 における[[第V脳神経]][[細胞体]]の異常なクラスター形成が認められており、[[真骨魚類]]の''gbx2''も[[哺乳類]]と同様に後脳前方領域のパターン形成に関わると考えられる<ref name=Burroughs-Garcia2011><pubmed>21360792</pubmed></ref>。さらに、ゼブラフィッシュの''gbx1''と''gbx2''はそれぞれ後脳内の[[運動ニューロン]]と[[グリシン]]作動性ニューロンの分化を制御すること、[[Retinoblastoma 1]] タンパク質([[Rb1]])が''Gbx/gbx''の発現を抑制することで後脳形成に関与することが示された<ref name=Zhao2024><pubmed>38570112</pubmed></ref>。 | 一方、ゼブラフィッシュ体節形成期胚において、後脳前端の''gbx2''発現細胞を追跡した実験では、''gbx2''細胞は後方に移動し、[[網様体]]脊髄ニューロンなどに分化するとされた<ref name=Tsuda2019><pubmed>30222999</pubmed></ref>。また、''gbx2''のノックダウン実験では、r2、r3、r5 における[[細胞死]]の増加、後脳前方の短縮、r2 および r3 における[[第V脳神経]][[細胞体]]の異常なクラスター形成が認められており、[[真骨魚類]]の''gbx2''も[[哺乳類]]と同様に後脳前方領域のパターン形成に関わると考えられる<ref name=Burroughs-Garcia2011><pubmed>21360792</pubmed></ref>。さらに、ゼブラフィッシュの''gbx1''と''gbx2''はそれぞれ後脳内の[[運動ニューロン]]と[[グリシン]]作動性ニューロンの分化を制御すること、[[Retinoblastoma 1]] タンパク質([[Rb1]])が''Gbx/gbx''の発現を抑制することで後脳形成に関与することが示された<ref name=Zhao2024><pubmed>38570112</pubmed></ref>。 | ||
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マウス''Gbx2''は、E12.5 の時期に[[大脳基底核]]、特に内側基底核原基で発現する<ref name=Bulfone1993><pubmed>7687285</pubmed></ref><ref name=Rhinn2004><pubmed>14745958</pubmed></ref>。誘導性遺伝学的発生運命追跡法により、内側基底核原基で生じて接線方向に移動する''Gbx2''発現細胞からは[[線条体]]の[[コリン]]作動性[[介在ニューロン]]が生じるのに対し、放射状移動をする''Gbx2''発現細胞は主に前脳基底部において [[GABA]]作動性ニューロンや他の非コリン作動性ニューロンに分化するとされた。変異マウス解析では、''Gbx2''が、線条体のコリン作動性ニューロンの移動に必要であること、内側基底核原基でのコリン作動性ニューロンの分化において''[[Lhx8]]''の下流で機能することも確認された<ref name=Chen2010><pubmed>21048141</pubmed></ref><ref name=Zhao2003><pubmed>12855770</pubmed></ref>。 | マウス''Gbx2''は、E12.5 の時期に[[大脳基底核]]、特に内側基底核原基で発現する<ref name=Bulfone1993><pubmed>7687285</pubmed></ref><ref name=Rhinn2004><pubmed>14745958</pubmed></ref>。誘導性遺伝学的発生運命追跡法により、内側基底核原基で生じて接線方向に移動する''Gbx2''発現細胞からは[[線条体]]の[[コリン]]作動性[[介在ニューロン]]が生じるのに対し、放射状移動をする''Gbx2''発現細胞は主に前脳基底部において [[GABA]]作動性ニューロンや他の非コリン作動性ニューロンに分化するとされた。変異マウス解析では、''Gbx2''が、線条体のコリン作動性ニューロンの移動に必要であること、内側基底核原基でのコリン作動性ニューロンの分化において''[[Lhx8]]''の下流で機能することも確認された<ref name=Chen2010><pubmed>21048141</pubmed></ref><ref name=Zhao2003><pubmed>12855770</pubmed></ref>。 | ||
ゼブラフィッシュでは、''gbx1''は咽頭胚期に内側基底核原基領域で発現し<ref name=Rhinn2003><pubmed>12963112</pubmed></ref><ref name=Wang2018><pubmed>29289755</pubmed></ref>、''gbx2''は体節形成後期に終脳両側部の脳室帯で発現する<ref name=Wang2018><pubmed>29289755</pubmed></ref>。実際、体節形成後期でのヒートショック誘導性''gbx2''の一過的発現では、前脳領域での脳形成遺伝子の発現が[[外套]]下部で低下し、逆に''gbx2''の変異体の胚では前脳形成遺伝子の発現が背側終脳(外套)で増強する。したがって、''gbx2''は外套下部の形成に対して抑制的にはたらくことで大脳基底核の形成に関与すると推定される。なお、終脳において、''gbx2''の発現はWntシグナルと[[レチノイン酸]]で抑制される一方、FGFシグナルを必要としており、これらのシグナルは''gbx2''を介して終脳のパターン形成に寄与すると考えられる<ref name=Wang2018><pubmed>29289755</pubmed></ref>。 | |||
====視床==== | ====視床==== | ||
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誘導性遺伝学的発生運命追跡法による''Gbx2''発現細胞の追跡では、異なる視床核群の神経前駆細胞ごとに''Gbx2''発現の時期が異なるとされた<ref name=Chen2009><pubmed>19279136</pubmed></ref>。コンディショナルノックアウト実験でも、各視床核群は異なる時期に''Gbx2''を必要とすること、視床核群ごとに''Gbx2''への依存度が著しく異なること、などが示されている<ref name=Li2012><pubmed>23056596</pubmed></ref>。''Gbx2''変異体では、視床から大脳皮質へ投射する[[軸索]]数の減少と伸長異常が見られており<ref name=Hevner2002><pubmed>11967891</pubmed></ref>、''Gbx2''は[[視床皮質投射]]の発達に必須といえる。実際、異なる胚発生段階で''Gbx2''を欠損させた実験で、''Gbx2''が視床皮質投射の経路選択と標的決定で継続的に必要とされた。さらに、''Gbx2''が誘導シグナルに対する視床皮質投射の応答性を制御すること、''Gbx2''が[[LIMドメイン因子]]との相互作用を通して''[[Robo]]''の転写を制御することで[[軸索伸長]]に関与することも判明している<ref name=Chatterjee2012><pubmed>23136391</pubmed></ref>。 | 誘導性遺伝学的発生運命追跡法による''Gbx2''発現細胞の追跡では、異なる視床核群の神経前駆細胞ごとに''Gbx2''発現の時期が異なるとされた<ref name=Chen2009><pubmed>19279136</pubmed></ref>。コンディショナルノックアウト実験でも、各視床核群は異なる時期に''Gbx2''を必要とすること、視床核群ごとに''Gbx2''への依存度が著しく異なること、などが示されている<ref name=Li2012><pubmed>23056596</pubmed></ref>。''Gbx2''変異体では、視床から大脳皮質へ投射する[[軸索]]数の減少と伸長異常が見られており<ref name=Hevner2002><pubmed>11967891</pubmed></ref>、''Gbx2''は[[視床皮質投射]]の発達に必須といえる。実際、異なる胚発生段階で''Gbx2''を欠損させた実験で、''Gbx2''が視床皮質投射の経路選択と標的決定で継続的に必要とされた。さらに、''Gbx2''が誘導シグナルに対する視床皮質投射の応答性を制御すること、''Gbx2''が[[LIMドメイン因子]]との相互作用を通して''[[Robo]]''の転写を制御することで[[軸索伸長]]に関与することも判明している<ref name=Chatterjee2012><pubmed>23136391</pubmed></ref>。 | ||
先に述べたように、ゼブラフィッシュでも原腸形成以降、''gbx2''は視床で発現が観察される<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref>。ヒートショック誘導性''gbx2''を用い、視床での''gbx2''の発現開始に先だって''gbx2''の過剰発現を行ったところ、視床形成への関与が予想される遺伝子(''[[irx1b]]'',''[[dbx1a]]'',''[[olig2]]'')の発現が抑制されており、''gbx2''は視床の形成において抑制的に作用すると考えられる<ref name=Wang2018><pubmed>29289755</pubmed></ref>。 | 先に述べたように、ゼブラフィッシュでも原腸形成以降、''gbx2''は視床で発現が観察される<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref>。ヒートショック誘導性''gbx2''を用い、視床での''gbx2''の発現開始に先だって''gbx2''の過剰発現を行ったところ、視床形成への関与が予想される遺伝子(''[[irx1b]]'', ''[[dbx1a]]'', ''[[olig2]]'')の発現が抑制されており、''gbx2''は視床の形成において抑制的に作用すると考えられる<ref name=Wang2018><pubmed>29289755</pubmed></ref>。 | ||
==== 脊髄==== | ==== 脊髄==== | ||
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===神経堤細胞とそれに由来する器官=== | ===神経堤細胞とそれに由来する器官=== | ||
''Gbx2'' | ''Gbx2''は、アフリカツメガエルやゼブラフィッシュ胚では移動中の神経堤細胞<ref name=Kikuta2003><pubmed>14579382</pubmed></ref><ref name=von_Bubnoff1996><pubmed>8652408</pubmed></ref>、マウスやニワトリの場合は神経堤細胞の移動先の1つである[[咽頭弓]]で発現する<ref name=Bouillet1995><pubmed>8601031</pubmed></ref><ref name=Shamim1998><pubmed>9767156</pubmed></ref>。マウス胚では特に咽頭弓表層外胚葉で の発現が報告されている<ref name=Byrd2005><pubmed>15996652</pubmed></ref>。実際、''Gbx2''欠損マウス胚では神経堤細胞の減少(E10.5)、咽頭弓への移動ルートの異常(E10.5)、そして咽頭弓由来構造(頭蓋顔面骨格など)の異常が観察された<ref name=Byrd2005><pubmed>15996652</pubmed></ref>。 | ||
神経堤細胞は[[心臓]]原基にも移動して心臓形成に寄与するが(心臓神経堤細胞)、''Gbx2''欠損マウス胚において、[[第4咽頭弓動脈]]([[pharyngeal arch arteries]], PAA)の異常発達に伴う心血管奇形、[[騎乗大動脈]]や[[心室中隔欠損]]が見られる。関連して、発生中の咽頭弓領域において''Fgf8''と''Gbx2''が共発現し、咽頭弓および心血管発生過程で両者が遺伝的に相互作用することが明らかになった<ref name=Byrd2005><pubmed>15996652</pubmed></ref>。 | 神経堤細胞は[[心臓]]原基にも移動して心臓形成に寄与するが(心臓神経堤細胞)、''Gbx2''欠損マウス胚において、[[第4咽頭弓動脈]]([[pharyngeal arch arteries]], PAA)の異常発達に伴う心血管奇形、[[騎乗大動脈]]や[[心室中隔欠損]]が見られる。関連して、発生中の咽頭弓領域において''Fgf8''と''Gbx2''が共発現し、咽頭弓および心血管発生過程で両者が遺伝的に相互作用することが明らかになった<ref name=Byrd2005><pubmed>15996652</pubmed></ref>。 | ||
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===内耳原基=== | ===内耳原基=== | ||
マウスでは、E9.5までに[[内耳プラコード]]で''Gbx2''mRNA が発現する。これより形成される[[耳胞]]では背内側領域全体に発現し、E10.5になるとこの発現は耳胞の赤道域まで拡大するとともに、内部に生じる[[内リンパ管]]でも発現が見られる<ref name=Wright2003><pubmed>12810586</pubmed></ref><ref name=Lin2005><pubmed>15829521</pubmed></ref>。''Gbx2''変異体胚では内リンパ管の欠損と[[膜迷路]]の腫脹、さらに、[[半規管]]、[[球形嚢]]および[[蝸牛管]]の異常が見られる<ref name=Wassarman1997><pubmed>9247335</pubmed></ref><ref name=Lin2005><pubmed>15829521</pubmed></ref><ref name=Miyazaki2006><pubmed>16961590</pubmed></ref>。内耳の発生は後脳からのシグナルに依存するが、この際、内耳原基における''Gbx2''発現の活性化が重要であり、''Gbx2''は''[[Wnt2b]]''や''[[Dlx5]]''などを正に調節することで内リンパ管や半規管などの背側構造を発生させる一方、''[[Otx2]]''発現を制限することで球形嚢や蝸牛管などの腹側構造の発生を促進すると考えられている<ref name=Lin2005><pubmed>15829521</pubmed></ref>。 | マウスでは、E9.5までに[[内耳プラコード]]で''Gbx2'' mRNA が発現する。これより形成される[[耳胞]]では背内側領域全体に発現し、E10.5になるとこの発現は耳胞の赤道域まで拡大するとともに、内部に生じる[[内リンパ管]]でも発現が見られる<ref name=Wright2003><pubmed>12810586</pubmed></ref><ref name=Lin2005><pubmed>15829521</pubmed></ref>。''Gbx2''変異体胚では内リンパ管の欠損と[[膜迷路]]の腫脹、さらに、[[半規管]]、[[球形嚢]]および[[蝸牛管]]の異常が見られる<ref name=Wassarman1997><pubmed>9247335</pubmed></ref><ref name=Lin2005><pubmed>15829521</pubmed></ref><ref name=Miyazaki2006><pubmed>16961590</pubmed></ref>。内耳の発生は後脳からのシグナルに依存するが、この際、内耳原基における''Gbx2''発現の活性化が重要であり、''Gbx2''は''[[Wnt2b]]''や''[[Dlx5]]''などを正に調節することで内リンパ管や半規管などの背側構造を発生させる一方、''[[Otx2]]''発現を制限することで球形嚢や蝸牛管などの腹側構造の発生を促進すると考えられている<ref name=Lin2005><pubmed>15829521</pubmed></ref>。 | ||
アフリカツメガエルやニワトリの胚では、[[感覚性プラコード領域]]の前方領域と後方領域はそれぞれ''Otx2''と''Gbx2''に依存し、後方領域から耳胞領域が生じる<ref name=Steventon2012><pubmed>22564795</pubmed></ref>。ニワトリ胚の場合、初期(HH10)では予定耳胞全域で''Gbx2''が発現するが、HH14になると、耳胞の側方領域(予定前庭領域)では''Otx2''、内側領域(予定蝸牛領域)では''Gbx2''が発現する。これら2領域に夾まれた境界領域では''Pax2''とともに''Fgf8''と''[[Fgf10]]''が発現し、この領域近傍で[[聴覚前庭神経節]]が出現する<ref name=Hidalgo-Sanchez2000><pubmed>10906468</pubmed></ref><ref name=Miyazaki2006><pubmed>16961590</pubmed></ref><ref name=Sanchez-Calderon2002><pubmed>11922981</pubmed></ref>。この状況は中脳後脳境界での遺伝子相互作用を思わせるが、実際、異所性''Gbx2''発現は''Otx2''発現を抑制し、その逆も同様であった。これらの結果は、内耳発生が、''Gbx2''と''Otx2''の相互作用とこの下流での''Fgf''の発現により制御されていることを示唆する<ref name=Miyazaki2006><pubmed>16961590</pubmed></ref>。 | アフリカツメガエルやニワトリの胚では、[[感覚性プラコード領域]]の前方領域と後方領域はそれぞれ''Otx2''と''Gbx2''に依存し、後方領域から耳胞領域が生じる<ref name=Steventon2012><pubmed>22564795</pubmed></ref>。ニワトリ胚の場合、初期(HH10)では予定耳胞全域で''Gbx2''が発現するが、HH14になると、耳胞の側方領域(予定前庭領域)では''Otx2''、内側領域(予定蝸牛領域)では''Gbx2''が発現する。これら2領域に夾まれた境界領域では''Pax2''とともに''Fgf8''と''[[Fgf10]]''が発現し、この領域近傍で[[聴覚前庭神経節]]が出現する<ref name=Hidalgo-Sanchez2000><pubmed>10906468</pubmed></ref><ref name=Miyazaki2006><pubmed>16961590</pubmed></ref><ref name=Sanchez-Calderon2002><pubmed>11922981</pubmed></ref>。この状況は中脳後脳境界での遺伝子相互作用を思わせるが、実際、異所性''Gbx2''発現は''Otx2''発現を抑制し、その逆も同様であった。これらの結果は、内耳発生が、''Gbx2''と''Otx2''の相互作用とこの下流での''Fgf''の発現により制御されていることを示唆する<ref name=Miyazaki2006><pubmed>16961590</pubmed></ref>。 | ||
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===細胞の多能性との係わり=== | ===細胞の多能性との係わり=== | ||
''Gbx2''に関する初期の研究では、マウス[[ES細胞]]において発現が見られること、この発現が分化誘導に伴って消失すること、[[着床]]前の胚において[[内部細胞塊]]で発現していることが示され、[[多能性遺伝子]]の可能性が示唆されていたが<ref name=Chapman1997><pubmed>9417909</pubmed></ref><ref name=Palmqvist2005><pubmed>15849174</pubmed></ref>、近年これを支持する結果が報告されている。''Gbx2''はマウスES細胞を維持する [[LIF]]/[[Stat3]] シグナルの下流で''[[Klf4]]''を制御し、多能性幹細胞の誘導と維持に作用する<ref name=Tai2013><pubmed>23345404</pubmed></ref><ref name=Wang2017><pubmed>28848051</pubmed></ref>。また、ヒト[[iPS細胞]] | ''Gbx2''に関する初期の研究では、マウス[[ES細胞]]において発現が見られること、この発現が分化誘導に伴って消失すること、[[着床]]前の胚において[[内部細胞塊]]で発現していることが示され、[[多能性遺伝子]]の可能性が示唆されていたが<ref name=Chapman1997><pubmed>9417909</pubmed></ref><ref name=Palmqvist2005><pubmed>15849174</pubmed></ref>、近年これを支持する結果が報告されている。''Gbx2''はマウスES細胞を維持する [[LIF]]/[[Stat3]] シグナルの下流で''[[Klf4]]''を制御し、多能性幹細胞の誘導と維持に作用する<ref name=Tai2013><pubmed>23345404</pubmed></ref><ref name=Wang2017><pubmed>28848051</pubmed></ref>。また、ヒト[[iPS細胞]]の作製効率向上に''GBX2''が寄与すること、''[[OCT4]]''、''[[SOX2]]''、''[[NANOG]]''、''[[KLF4]]''を含む[[多能性因子]]との間で相互作用を行うことが示された。このように、''GBX2''は細胞の多能性維持や多能性細胞の自己新生に寄与すると考えられる<ref name=Swaidan2020><pubmed>33319795</pubmed></ref>。 | ||
=== 無脊椎動物(ショウジョウバエ) === | === 無脊椎動物(ショウジョウバエ) === | ||