「錐体細胞」の版間の差分

編集の要約なし
編集の要約なし
編集の要約なし
16行目: 16行目:




典型的な錐体細胞では、尖端樹状突起(apical dendrite)と呼ばれる一本の樹状突起が錐体形をした細胞体の頂点から生じ、斜め方向に分枝(oblique branch)を出しながら、数百μmに渡って一方向に直線的に伸びる (図1)。多くの場合、oblique branchはあまり分岐を繰り返さない。尖端樹状突起の末端は、房状分枝(tuft)を形成して終わることが多い。また、数本の基底樹状突起(basal dendrite)が、細胞体の底辺部から伸び、細胞体周辺の比較的限局した領域で分枝を出し、全体として半球ないし球状(半径およそ300μm)に広がる。樹状突起は棘突起を豊富に持ち(錐体細胞1個当たりの棘突起数は海馬CA1で約30000個、大脳皮質視覚野で約15000個と推定されている[1])、興奮性シナプスの多くは棘突起上に形成される。棘突起の形状や大きさ、安定性は学習の影響を受けることが知られている[2]。他方、抑制性入力は細胞体や樹状突起の幹に入力する割合が高い。以下、脳内の各部位における錐体細胞について述べる。
典型的な錐体細胞では、尖端樹状突起(apical dendrite)と呼ばれる一本の樹状突起が錐体形をした細胞体の頂点から生じ、斜め方向に分枝(oblique branch)を出しながら、数百μmに渡って一方向に直線的に伸びる (図1)。多くの場合、oblique branchはあまり分岐を繰り返さない。尖端樹状突起の末端は、房状分枝(tuft)を形成して終わることが多い。また、数本の基底樹状突起(basal dendrite)が、細胞体の底辺部から伸び、細胞体周辺の比較的限局した領域で分枝を出し、全体として半球ないし球状(半径およそ300μm)に広がる。樹状突起は棘突起を豊富に持ち(錐体細胞1個当たりの棘突起数は海馬CA1で約30000個、大脳皮質視覚野で約15000個と推定されている<ref name=ref1><pubmed></pubmed></ref>)、興奮性シナプスの多くは棘突起上に形成される。棘突起の形状や大きさ、安定性は学習の影響を受けることが知られている<ref name=ref2><pubmed></pubmed></ref>。他方、抑制性入力は細胞体や樹状突起の幹に入力する割合が高い。以下、脳内の各部位における錐体細胞について述べる。


===扁桃体===
===扁桃体===


 扁桃体基底外側核群のおよそ90%が錐体細胞であり、大脳皮質や線条体などへ投射する。後述する大脳皮質の錐体細胞と似た形態であるが、尖端樹状突起と基底樹状突起の区別のはっきりしない有棘星状細胞(spiny stellate cell)様のものもある。尖端樹状突起の方向性は厳密ではないが、吻側方向へ向かう傾向がある[3]
 扁桃体基底外側核群のおよそ90%が錐体細胞であり、大脳皮質や線条体などへ投射する。後述する大脳皮質の錐体細胞と似た形態であるが、尖端樹状突起と基底樹状突起の区別のはっきりしない有棘星状細胞(spiny stellate cell)様のものもある。尖端樹状突起の方向性は厳密ではないが、吻側方向へ向かう傾向がある<ref name=ref3><pubmed></pubmed></ref>


===海馬===
===海馬===


 海馬[4]の錐体細胞はアンモン角(Cornu Ammonis, CA)の錐体細胞層(厚みは細胞体5個程度)に限局して存在する。アンモン角は錐体細胞の形態からCA1-CA3の小領域に分けられる。CA3からCA1にかけて、細胞体の大きさは小さくなり、尖端樹状突起は細くなる傾向がある。細胞体は基部で幅20-40μm、高さが40-60μmの錐形であり、尖端樹状突起は放線層を経て網状・分子層へと海馬の中心方向に向かって伸びる。CA3錐体細胞には棘状瘤(thorny excrescence)と呼ばれる巨大な棘突起が存在し、苔状繊維(mossy fiber)からの入力を受けている。CA3錐体細胞は、反回側枝(recurrent collateral)により互いに神経結合しており、CA2,CA1領域へはSchaffer側枝と呼ばれる軸索を伸ばす。一方、CA1錐体細胞は海馬台(subiculum)や嗅内野(entorhinal cortex)へ投射している。
 海馬<ref name=ref4><pubmed></pubmed></ref>の錐体細胞はアンモン角(Cornu Ammonis, CA)の錐体細胞層(厚みは細胞体5個程度)に限局して存在する。アンモン角は錐体細胞の形態からCA1-CA3の小領域に分けられる。CA3からCA1にかけて、細胞体の大きさは小さくなり、尖端樹状突起は細くなる傾向がある。細胞体は基部で幅20-40μm、高さが40-60μmの錐形であり、尖端樹状突起は放線層を経て網状・分子層へと海馬の中心方向に向かって伸びる。CA3錐体細胞には棘状瘤(thorny excrescence)と呼ばれる巨大な棘突起が存在し、苔状繊維(mossy fiber)からの入力を受けている。CA3錐体細胞は、反回側枝(recurrent collateral)により互いに神経結合しており、CA2,CA1領域へはSchaffer側枝と呼ばれる軸索を伸ばす。一方、CA1錐体細胞は海馬台(subiculum)や嗅内野(entorhinal cortex)へ投射している。


===大脳新皮質===
===大脳新皮質===


 6層構造の新皮質では、1層を除いて、各層ごとに特徴的な形態を持つ錐体細胞が存在する[5]。軸索はミエリン化しており、白質方向へ延びていきながら局所的な分枝を伸ばし、これにより近隣の細胞群と局所回路を形成する。白質へ入った主軸索の投射先は、その細胞体のある層によって異なる。1層は非錐体細胞で占められている。2層の錐体細胞は比較的小さく、尖端樹状突起は細胞体の近くで分岐しtuftを形成する。その軸索は主として皮質内結合や半球間結合に関わることが知られている。3層は中型の錐体細胞を含み、皮質間・半球間投射に主に関与する。感覚野の4層には、有棘星状細胞や尖端樹状突起の発達の乏しい細胞(star pyramidal cellとも呼ばれる)が多く存在し、主として皮質内投射に寄与する。5層の錐体細胞は、大きな細胞体と太い尖端樹状突起を持ち、様々な皮質内・皮質下領域へ投射している。一次運動野5層には、特に巨大なBetz細胞(細胞体直径が100μmにも達する)が存在し、その軸策は錐体路(皮質脊髄投射)を形成する[6]。6層の錐体細胞は、比較的小さな細胞体と細い尖端樹状突起を持ち、主として視床へ投射する。また、5層深部と6層にはmodified pyramidal cellと呼ばれる非典型的な形態の錐体細胞が比較的多く観察され、その尖端樹状突起が伸びる方向は細胞によって様々である。しかし、棘突起の存在や興奮性のシナプス結合など、多くの特徴を錐体細胞と共有している[7]
 6層構造の新皮質では、1層を除いて、各層ごとに特徴的な形態を持つ錐体細胞が存在する<ref name=ref5><pubmed></pubmed></ref>。軸索はミエリン化しており、白質方向へ延びていきながら局所的な分枝を伸ばし、これにより近隣の細胞群と局所回路を形成する。白質へ入った主軸索の投射先は、その細胞体のある層によって異なる。1層は非錐体細胞で占められている。2層の錐体細胞は比較的小さく、尖端樹状突起は細胞体の近くで分岐しtuftを形成する。その軸索は主として皮質内結合や半球間結合に関わることが知られている。3層は中型の錐体細胞を含み、皮質間・半球間投射に主に関与する。感覚野の4層には、有棘星状細胞や尖端樹状突起の発達の乏しい細胞(star pyramidal cellとも呼ばれる)が多く存在し、主として皮質内投射に寄与する。5層の錐体細胞は、大きな細胞体と太い尖端樹状突起を持ち、様々な皮質内・皮質下領域へ投射している。一次運動野5層には、特に巨大なBetz細胞(細胞体直径が100μmにも達する)が存在し、その軸策は錐体路(皮質脊髄投射)を形成する<ref name=ref6><pubmed></pubmed></ref>。6層の錐体細胞は、比較的小さな細胞体と細い尖端樹状突起を持ち、主として視床へ投射する。また、5層深部と6層にはmodified pyramidal cellと呼ばれる非典型的な形態の錐体細胞が比較的多く観察され、その尖端樹状突起が伸びる方向は細胞によって様々である。しかし、棘突起の存在や興奮性のシナプス結合など、多くの特徴を錐体細胞と共有している<ref name=ref7><pubmed></pubmed></ref>


== 電気生理的特性 (大脳皮質錐体細胞について) ==
== 電気生理的特性 (大脳皮質錐体細胞について) ==
34行目: 34行目:
[[image:錐体細胞_図2.jpg|thumb|300px|'''図2. in vivo条件で記録したregular-spiking (RS), fast-rhythmic bursting(FRB), intrinsically bursting (IB)細胞の通電(0.8nA, 0.2s)に対する応答'''<br>(Steriade et al., 2004[27]より許可を得て転載)]]
[[image:錐体細胞_図2.jpg|thumb|300px|'''図2. in vivo条件で記録したregular-spiking (RS), fast-rhythmic bursting(FRB), intrinsically bursting (IB)細胞の通電(0.8nA, 0.2s)に対する応答'''<br>(Steriade et al., 2004[27]より許可を得て転載)]]


 大脳皮質の錐体細胞は、脳スライス標本(in vitro)やin vivo条件の電気生理記録から得られた発火パターンから、いくつかのサブタイプに分けられてきた[8][9][10] (図2)。
 大脳皮質の錐体細胞は、脳スライス標本(in vitro)やin vivo条件の電気生理記録から得られた発火パターンから、いくつかのサブタイプに分けられてきた<ref name=ref8><pubmed></pubmed></ref> <ref name=ref9><pubmed></pubmed></ref> <ref name=ref10><pubmed></pubmed></ref> (図2)。


 最も多く見られるのは、脱分極パルスに対して等間隔で規則的に発火するregular spiking(RS) 細胞であり、Mountcastleによって名づけられた[11]。RS細胞は、閾値以上の電流注入に対して持続的な反復発火で応答し、その注入電流と発火頻度は線形に相関していることから[12][13] 、細胞への入力の時間情報などを運ぶのに適すると考えられる。持続通電中に発火頻度が徐々に落ちる適応(accommodation)の程度によってさらにサブグループに分けられることもある[10] [14] [15]。intrinsically Bursting(IB)細胞は、脱分極パルスに対して高頻度で連続発火し[8]、特に閾値より少し上の電流注入に対しては顕著な脱分極に乗った3-5発のバースト発火(約200Hz)を示すのが特徴である。 fast rhythmic bursting (FRB) 細胞は、通電に対して短いinter-burst intervalで2-5発(200-600Hz)のスパイクから為るバーストを発射しchattering neuronとも呼ばれる[16]。持続的な脱分極状態の時は、20-80Hzの律動的なバーストとなる[16] [17] 。個々のスパイクは小さな後過分極(afterhyperpolarization, AHP)とそれに続く後脱分極(afterdepolarization, ADP)の要素を含む。このような発火パターンは、細胞膜上のNa, K, Ca等のイオンチャネルの発現を反映している。IB細胞やFRB細胞においては、注入電流と発火頻度の関係は非線形な相関であり入力-出力の関係はRS細胞とは異なる。
 最も多く見られるのは、脱分極パルスに対して等間隔で規則的に発火するregular spiking(RS) 細胞であり、Mountcastleによって名づけられた[11]。RS細胞は、閾値以上の電流注入に対して持続的な反復発火で応答し、その注入電流と発火頻度は線形に相関していることから[12][13] 、細胞への入力の時間情報などを運ぶのに適すると考えられる。持続通電中に発火頻度が徐々に落ちる適応(accommodation)の程度によってさらにサブグループに分けられることもある[10] <ref name=ref14><pubmed></pubmed></ref> <ref name=ref15><pubmed></pubmed></ref>。intrinsically Bursting(IB)細胞は、脱分極パルスに対して高頻度で連続発火し[8]、特に閾値より少し上の電流注入に対しては顕著な脱分極に乗った3-5発のバースト発火(約200Hz)を示すのが特徴である。 fast rhythmic bursting (FRB) 細胞は、通電に対して短いinter-burst intervalで2-5発(200-600Hz)のスパイクから為るバーストを発射しchattering neuronとも呼ばれる<ref name=ref16><pubmed></pubmed></ref>。持続的な脱分極状態の時は、20-80Hzの律動的なバーストとなる[16] <ref name=ref17><pubmed></pubmed></ref>。個々のスパイクは小さな後過分極(afterhyperpolarization, AHP)とそれに続く後脱分極(afterdepolarization, ADP)の要素を含む。このような発火パターンは、細胞膜上のNa, K, Ca等のイオンチャネルの発現を反映している。IB細胞やFRB細胞においては、注入電流と発火頻度の関係は非線形な相関であり入力-出力の関係はRS細胞とは異なる。


 電気生理的特性は、他の特徴とも関係していることが知られている。上述の三種の錐体細胞は大脳皮質2-6層に存在するが、IB細胞は5層に多く[18] [19]、FRB細胞は2-4層に多い。5層のIB細胞は同層のRS細胞と比べて細胞体が大きく、樹状突起を広く伸ばしており、軸策は5-6層で分枝する。これに対して、RS細胞は細胞体や樹状突起の分枝範囲が小さく、軸策は1-4層で分枝する[20]。皮質内・皮質下から皮質へ層特異的な入力があることから、各サブタイプの錐体細胞は異なる入力を受ける可能性がある。また、RS細胞とIB細胞は皮質内で構成する神経回路や投射先が異なる[21] [22] [23]。錐体細胞の投射先や形態、発火様式などの特徴はそれぞれに相関しており、各サブタイプの入出力特性の違いや結合特異性の差異から、これらのサブタイプは機能的に異なる役割を果たすと考えられている。
 電気生理的特性は、他の特徴とも関係していることが知られている。上述の三種の錐体細胞は大脳皮質2-6層に存在するが、IB細胞は5層に多く<ref name=ref18><pubmed></pubmed></ref> <ref name=ref19><pubmed></pubmed></ref>、FRB細胞は2-4層に多い。5層のIB細胞は同層のRS細胞と比べて細胞体が大きく、樹状突起を広く伸ばしており、軸策は5-6層で分枝する。これに対して、RS細胞は細胞体や樹状突起の分枝範囲が小さく、軸策は1-4層で分枝する<ref name=ref20><pubmed></pubmed></ref>。皮質内・皮質下から皮質へ層特異的な入力があることから、各サブタイプの錐体細胞は異なる入力を受ける可能性がある。また、RS細胞とIB細胞は皮質内で構成する神経回路や投射先が異なる<ref name=ref21><pubmed></pubmed></ref> <ref name=ref22><pubmed></pubmed></ref> <ref name=ref23><pubmed></pubmed></ref>。錐体細胞の投射先や形態、発火様式などの特徴はそれぞれに相関しており、各サブタイプの入出力特性の違いや結合特異性の差異から、これらのサブタイプは機能的に異なる役割を果たすと考えられている。


== 発生・分化 ==
== 発生・分化 ==


 大脳皮質のGABA作動性の非錐体細胞が、主に大脳基底核原基に起源をもつのに対し、錐体細胞は脳室帯由来である。脳室帯で分裂・分化した神経芽細胞は放射状移動により、軟膜方向へ移動し、神経細胞へ分化する。この過程で、発生時期の早い細胞ほど脳の深い側に分布する(inside-out) [24]。また、扁桃体の基底外側核群の錐体細胞は、腹側外套の脳室帯由来と考えられる[25]。近年、大脳皮質の錐体細胞の投射先などの性質が、転写因子や細胞外シグナル分子などの空間・時間的な発現によって制御されていることが報告されており、錐体細胞のサブタイプの分化に関する研究が進んでいる[26]
 大脳皮質のGABA作動性の非錐体細胞が、主に大脳基底核原基に起源をもつのに対し、錐体細胞は脳室帯由来である。脳室帯で分裂・分化した神経芽細胞は放射状移動により、軟膜方向へ移動し、神経細胞へ分化する。この過程で、発生時期の早い細胞ほど脳の深い側に分布する(inside-out) <ref name=ref24><pubmed></pubmed></ref>。また、扁桃体の基底外側核群の錐体細胞は、腹側外套の脳室帯由来と考えられる<ref name=ref25><pubmed></pubmed></ref>。近年、大脳皮質の錐体細胞の投射先などの性質が、転写因子や細胞外シグナル分子などの空間・時間的な発現によって制御されていることが報告されており、錐体細胞のサブタイプの分化に関する研究が進んでいる<ref name=ref26><pubmed></pubmed></ref>


== 関連項目 ==
== 関連項目 ==
65行目: 65行目:


<references />
<references />
1. Fiala JC, Harris KM. (2007) Dendrite structure. In: Dendrites (Stuart G, Sprutson N, Hausser M eds), pp1-34. Oxford University press.
2. Matsuzaki M, Honkura N, Ellis-Davies GC, Kasai H (2004) Structural basis of long-term potentiation in single dendritic spines. Nature 429:761-766. PMID: 15190253.
3. Washburn MS, Moises HC (1992) Electrophysiological and morphological properties of rat basolateral amygdaloid neurons in vitro. J Neurosci 12:4066-4079. PMID: 1403101.
4. Johnston D, Amaral DG. (2004) Hippocampus. In: Synaptic organization of the brain 5th edition (Shepherd GM eds). Oxford University Press.
5. Jones EG (1984) Laminar distribution of output cells. In: Cerebral cortex,
Vol 1, Cellular components of the cerebral cortex (Peters A, Jones EG, eds), pp 521–553. New York: Plenum.
6. Meyer G (1987) Forms and spatial arrangement of neurons in the primary motor cortex of man. J Comp Neurol 262:402-428. PMID: 3655019.
7. Andjelic S, Gallopin T, Cauli B, Hill EL, Roux L, Badr S, Hu E, Tamas G, Lambolez B (2009) Glutamatergic nonpyramidal neurons from neocortical layer VI and their comparison with pyramidal and spiny stellate neurons. J Neurophysiol 101:641-654. PMID: 19052106.
8. Connors BW, Gutnick MJ, Prince DA (1982) Electrophysiological properties of neocortical neurons in vitro. J Neurophysiol 48:1302-1320.  PMID: 6296328.
9. McCormick DA, Connors BW, Lighthall JW, Prince DA (1985) Comparative electrophysiology of pyramidal and sparsely spiny stellate neurons of the neocortex. J Neurophysiol 54:782-806. PMID: 2999347.
10. Agmon A, Connors BW (1992) Correlation between intrinsic firing patterns and thalamocortical synaptic responses of neurons in mouse barrel cortex. J Neurosci 12:319-329. PMID: 1729440.
11. Mountcastle VB, Talbot WH, Sakata H, Hyvarinen J (1969) Cortical neuronal mechanisms in flutter-vibration studied in unanesthetized monkeys. Neuronal periodicity and frequency discrimination. J Neurophysiol 32:452-484. PMID:4977839.
12. Crill WE, Schwindt P (1984) Ionic mechanisms underlying excitation-to-frequency transduction: studies by voltage clamp methods. Arch Ital Biol 122:31-41. PMID: 6087761.
13. Stafstrom CE, Schwindt PC, Crill WE (1984) Repetitive firing in layer V neurons from cat neocortex in vitro. J Neurophysiol 52:264-277. PMID: 6481432.
14. Nowak LG, Azouz R, Sanchez-Vives MV, Gray CM, McCormick DA (2003) Electrophysiological classes of cat primary visual cortical neurons in vivo as revealed by quantitative analyses. J Neurophysiol 89:1541-1566. PMID: 12626627.
15. Nuñez A, Amzica F, Steriade M (1993) Electrophysiology of cat association cortical cells in vivo: intrinsic properties and synaptic responses. J Neurophysiol 70:418-430. PMID:8395586.
16. Gray CM, McCormick DA (1996) Chattering cells: superficial pyramidal neurons contributing to the generation of synchronous oscillations in the visual cortex. Science 274:109-113. PMID: 8810245.
17. Brumberg JC, Nowak LG, McCormick DA (2000) Ionic mechanisms underlying repetitive high-frequency burst firing in supragranular cortical neurons. J Neurosci 20:4829-4843. PMID: 10864940.
18. Connors BW, Gutnick MJ (1990) Intrinsic firing patterns of diverse neocortical neurons. Trends Neurosci 13:99-104. PMID:1691879.
19. Higley MJ, Contreras D (2003) Nonlinear integration of sensory responses in the rat barrel cortex: an intracellular study in vivo. J Neurosci 23:10190-10200. PMID: 14614077.
20. Chagnac-Amitai Y, Connors BW (1989) Synchronized excitation and inhibition driven by intrinsically bursting neurons in neocortex. J Neurophysiol 62:1149-1162.  PMID: 2585046.
21. Schubert D, Staiger JF, Cho N, Kotter R, Zilles K, Luhmann HJ (2001) Layer-specific intracolumnar and transcolumnar functional connectivity of layer V pyramidal cells in rat barrel cortex. J Neurosci 21:3580-3592. PMID:11331387.
22. Gao WJ, Zheng ZH (2004) Target-specific differences in somatodendritic morphology of layer V pyramidal neurons in rat motor cortex. J Comp Neurol 476:174-185.  PMID:15248197.
23.  Le Bé JV, Silberberg G, Wang Y, Markram H (2007) Morphological, electrophysiological, and synaptic properties of corticocallosal pyramidal cells in the neonatal rat neocortex. Cereb Cortex 17:2204-2213. PMID: 17124287.
24.  Rakic P (1974) Neurons in rhesus monkey visual cortex: systematic relation between time of origin and eventual disposition. Science 183:425-427. PMID: 4203022.
25. Soma M, Aizawa H, Ito Y, Maekawa M, Osumi N, Nakahira E, Okamoto H, Tanaka K, Yuasa S (2009) Development of the mouse amygdala as revealed by enhanced green fluorescent protein gene transfer by means of in utero electroporation. J Comp Neurol 513:113-128. PMID: 19107806.
26.  McKenna WL, Betancourt J, Larkin KA, Abrams B, Guo C, Rubenstein JL, Chen B (2011) Tbr1 and Fezf2 regulate alternate corticofugal neuronal identities during neocortical development. J Neurosci 31:549-564. PMID: 21228164.
27. Steriade, M. (2004). Neocortical cell classes are flexible entities. Nature Reviews. Neuroscience, 5, 121–134. PMID: 14735115.


(執筆者:牛丸弥香、苅部冬紀、川口泰雄 担当編集委員:河西春郎)
(執筆者:牛丸弥香、苅部冬紀、川口泰雄 担当編集委員:河西春郎)
図1
大脳皮質5層の錐体細胞(ラット)。5層に錐体の細胞体があり、1層に向けて尖端樹状突起を伸ばしている。尖端樹状突起の末端は房状突起となって終わる。細胞体の基部からは細い軸索と複数の基底樹状突起が伸びている。
図2
in vivo条件で記録したregular-spiking (RS), fast-rhythmic bursting(FRB), intrinsically bursting (IB)細胞の通電(0.8nA, 0.2s)に対する応答。(Steriade et al., 2004[27]より許可を得て転載)