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プルキンエ細胞は、小脳皮質における唯一の出力神経細胞であり、小脳核または前庭核の神経細胞にＧＡＢＡを伝達物質 とする抑制性のシナプスを形成している。プルキンエ細胞特異的に発現するタンパク質のノックアウトマウス及び、プルキンエ細胞特異的なプロモーターを用い た遺伝子改変マウスを用いた実験等により、プルキンエ細胞へのシナプス入力とその調節が運動制御及び運動学習に重要な寄与をしていることが明らかになって いる。  
プルキンエ細胞は、小脳皮質における唯一の出力神経細胞であり、小脳核または前庭核の神経細胞にＧＡＢＡを伝達物質 とする抑制性のシナプスを形成している。プルキンエ細胞特異的に発現するタンパク質のノックアウトマウス及び、プルキンエ細胞特異的なプロモーターを用い た遺伝子改変マウスを用いた実験等により、プルキンエ細胞へのシナプス入力とその調節が運動制御及び運動学習に重要な寄与をしていることが明らかになって いる。  
==形態と入出力==
==形態と入出力==
プルキンエ細胞の細胞体は、小脳皮質内の分子層と顆粒細胞層の間に一層に並び、プルキンエ細胞層を形成してい る（図１，２）。プルキンエ細胞の樹状突起はプルキンエ細胞層より脳表側の分子層へ伸び、矢状面上で数回枝分かれし扇状の形態となっている。この樹状突起 の遠位には顆粒細胞由来の平行線維から、近位には下オリーブ核由来の登上線維からグルタミン酸作動性の興奮性シナプスが形成される。1つのプルキンエ細胞 に対して、約200,000本の平行線維がシナプスを形成するが<ref>Gordon M. Shephred<br>The synaptic organization of the brain fifth edition<br>医学書院（東京）:2004</ref>、 1本の平行線維が1つのプルキンエ細胞に作るシナプスは1から2個と推定されており、その伝達効率も低い。一方、１つのプルキンエ細胞にシナプス形成をす る登上線維は1本に限られる。登上線維は１つのプルキンエ細胞上に数百個のシナプスを形成し、個々のシナプスでの伝達効率は高い。また、プルキンエ細胞は 分子層にある2種類のＧＡＢＡ作動性の介在神経細胞（星状細胞及び籠状細胞）から抑制性の入力も受けている。星状細胞はプルキンエ細胞の樹状突起にシナプ スを作り、一方、籠状細胞はプルキンエ細胞体を囲むようにシナプスを形成する。プルキンエ細胞の軸索は顆粒細胞層を縦断し、小脳核または前庭神経核に投射 して、抑制性の出力をする。　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　  
プルキンエ細胞の細胞体は、小脳皮質内の分子層と顆粒細胞層の間に一層に並び、プルキンエ細胞層を形成してい る（図１，２）[[Image:Image0005.tif (RGB).jpg|thumb|right|250px|図１:マウス小脳矢状断面の免疫染色図。マゼンダ：プルキンエ細胞マーカーであるcalbindin、緑：顆粒細胞マーカーであるneuNに対する抗体を用いて染色。]]。プルキンエ細胞の樹状突起はプルキンエ細胞層より脳表側の分子層へ伸び、矢状面上で数回枝分かれし扇状の形態となっている。この樹状突起 の遠位には顆粒細胞由来の平行線維から、近位には下オリーブ核由来の登上線維からグルタミン酸作動性の興奮性シナプスが形成される。1つのプルキンエ細胞 に対して、約200,000本の平行線維がシナプスを形成するが<ref>Gordon M. Shephred<br>The synaptic organization of the brain fifth edition<br>医学書院（東京）:2004</ref>、 1本の平行線維が1つのプルキンエ細胞に作るシナプスは1から2個と推定されており、その伝達効率も低い。一方、１つのプルキンエ細胞にシナプス形成をす る登上線維は1本に限られる。登上線維は１つのプルキンエ細胞上に数百個のシナプスを形成し、個々のシナプスでの伝達効率は高い。また、プルキンエ細胞は 分子層にある2種類のＧＡＢＡ作動性の介在神経細胞（星状細胞及び籠状細胞）から抑制性の入力も受けている。星状細胞はプルキンエ細胞の樹状突起にシナプ スを作り、一方、籠状細胞はプルキンエ細胞体を囲むようにシナプスを形成する。プルキンエ細胞の軸索は顆粒細胞層を縦断し、小脳核または前庭神経核に投射 して、抑制性の出力をする。　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　  
==発生==
==発生==
プルキンエ細胞は小脳皮質内で最も早く分化する神経細胞である。ここでは、マウスにおける発生過程を説明する（図 ３）。胎生10日目から、プルキンエ細胞の前駆細胞は菱脳唇近傍の脳室帯で最終分裂し、胎生13日目に表層に向けて移動を開始する。胎生後期には、すべて のプルキンエ細胞が異動を完了し、生後数日間で1層に整列してプルキンエ細胞層を完成する。プルキンエ細胞は、生後5～7日目に樹状突起を伸張し、平行線 維とのシナプスを形成し始め、生後20日でほぼ生体と同様のシナプス構築となる。
プルキンエ細胞は小脳皮質内で最も早く分化する神経細胞である。ここでは、マウスにおける発生過程を説明する（図 ３）。胎生10日目から、プルキンエ細胞の前駆細胞は菱脳唇近傍の脳室帯で最終分裂し、胎生13日目に表層に向けて移動を開始する。胎生後期には、すべて のプルキンエ細胞が異動を完了し、生後数日間で1層に整列してプルキンエ細胞層を完成する。プルキンエ細胞は、生後5～7日目に樹状突起を伸張し、平行線 維とのシナプスを形成し始め、生後20日でほぼ生体と同様のシナプス構築となる。

2012年3月23日 (金) 11:51時点における版

プルキンエ細胞

プルキンエ細胞は、小脳皮質における唯一の出力神経細胞であり、小脳核または前庭核の神経細胞にＧＡＢＡを伝達物質 とする抑制性のシナプスを形成している。プルキンエ細胞特異的に発現するタンパク質のノックアウトマウス及び、プルキンエ細胞特異的なプロモーターを用い た遺伝子改変マウスを用いた実験等により、プルキンエ細胞へのシナプス入力とその調節が運動制御及び運動学習に重要な寄与をしていることが明らかになって いる。

形態と入出力

プルキンエ細胞の細胞体は、小脳皮質内の分子層と顆粒細胞層の間に一層に並び、プルキンエ細胞層を形成してい る（図１，２）

図１:マウス小脳矢状断面の免疫染色図。マゼンダ：プルキンエ細胞マーカーであるcalbindin、緑：顆粒細胞マーカーであるneuNに対する抗体を用いて染色。

。プルキンエ細胞の樹状突起はプルキンエ細胞層より脳表側の分子層へ伸び、矢状面上で数回枝分かれし扇状の形態となっている。この樹状突起 の遠位には顆粒細胞由来の平行線維から、近位には下オリーブ核由来の登上線維からグルタミン酸作動性の興奮性シナプスが形成される。1つのプルキンエ細胞 に対して、約200,000本の平行線維がシナプスを形成するが[1]、 1本の平行線維が1つのプルキンエ細胞に作るシナプスは1から2個と推定されており、その伝達効率も低い。一方、１つのプルキンエ細胞にシナプス形成をす る登上線維は1本に限られる。登上線維は１つのプルキンエ細胞上に数百個のシナプスを形成し、個々のシナプスでの伝達効率は高い。また、プルキンエ細胞は 分子層にある2種類のＧＡＢＡ作動性の介在神経細胞（星状細胞及び籠状細胞）から抑制性の入力も受けている。星状細胞はプルキンエ細胞の樹状突起にシナプ スを作り、一方、籠状細胞はプルキンエ細胞体を囲むようにシナプスを形成する。プルキンエ細胞の軸索は顆粒細胞層を縦断し、小脳核または前庭神経核に投射 して、抑制性の出力をする。　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　

発生

プルキンエ細胞は小脳皮質内で最も早く分化する神経細胞である。ここでは、マウスにおける発生過程を説明する（図 ３）。胎生10日目から、プルキンエ細胞の前駆細胞は菱脳唇近傍の脳室帯で最終分裂し、胎生13日目に表層に向けて移動を開始する。胎生後期には、すべて のプルキンエ細胞が異動を完了し、生後数日間で1層に整列してプルキンエ細胞層を完成する。プルキンエ細胞は、生後5～7日目に樹状突起を伸張し、平行線 維とのシナプスを形成し始め、生後20日でほぼ生体と同様のシナプス構築となる。 登上線維末端は誕生直前にプルキンエ細胞に到達する。生後5～7 日目では、それぞれの登上線維の先端は個々のプルキンエ細胞の細胞体を網状を囲むようになる。この時期は、１つのプルキンエ細胞に対して約5本の登上線維 末端がシナプスを形成している。しかし、14日までに、1本の登上線維のみがプルキンエ細胞に多数のシナプス形成をした状態となり、他の登上線維のシナプ ス数は減少する。20日後までには、登上線維とプルキンエ細胞間で1対1の投射パターンが完成す る[2]。

神経活動

プルキンエ細胞はシナプス入力がない状態でも、自発的に活動電位を連続発火する。プルキンエ細胞では電位依存性ナ トリウムチャネルNav1.6が発現しているが、Nav1.6は比較的深い膜電位で活性化し、不活性化状態からの回復が早い。このことがプルキンエ細胞の 連続発火に寄与していると考えられている[3]。生体内における活動電位の発火頻度は50～100 Hzである。登上線維からのシナプス入力は、樹状突起でのP型電位依存性カルシウムチャネルを介したカルシウムイオン流入を引き起こし、複数のピークを持 つ特徴的な複雑スパイクを引き起こす。複雑スパイクは、単純スパイクと呼ばれる通常の活動電位と波形により区別される（図４）。生体での複雑スパイクの発 火頻度は約１ Hzと低い。なお、複雑スパイク後数十ミリ秒間は、単純スパイクの発火が抑えられ る。[4]

シナプス可塑性と運動学習

プルキンエ細胞への平行線維と登上線維の入力の同期が繰り返し起こると、平行線維によるシナプス応答が持 続して減弱する長期抑圧と呼ばれるシナプス可塑性が起こる[5]。長期抑圧は、登上線維入力を誤差情報とする教師あり学習の基盤機構と考えられ、小脳にお ける運動学習に寄与すると考えられてきた。長期抑圧の阻害、及び促進された遺伝子改変動物を用いた実験で運動学習の障害及び亢進が認められてい る[6][7]。一方 で、長期抑圧が阻害された遺伝子改変マウスで、運動学習の異常が認められなかった例も報告され た[8]。プルキンエ細胞上のシ ナプスでは、他の可塑性が起こることも知られており、それらも学習に寄与している可能性があ る[9]。平行線維シナプスでの 長期増強、抑制性シナプスでの長期増強等が報告されてい る[10]。さらに、神経活動に依 存して膜電位依存性チャネルが変化し、活動電位発火の起こりやすさが持続的に変わる現象も知られてい る[11]。

プルキンエ細胞の欠失と疾患

Lurcher, PSD等プルキンエ細胞が欠失するマウス系統が知られている。そして、これらのマウスは明らかの運動失調を示す。ヒトでは、脊髄小脳失調症６型でプルキン エ細胞の脱落が起こり、運動失調が認められ る[12]。この原因遺伝子として P型カルシウムチャネルが同定されている。

参考文献

  1. ↑ Gordon M. Shephred
    The synaptic organization of the brain fifth edition
    医学書院（東京）:2004
  2. ↑ Hatten, M.E., & Heintz, N. (1995).
    Mechanisms of neural patterning and specification in the developing cerebellum. Annual review of neuroscience, 18, 385-408. [PubMed:7605067] [WorldCat] [DOI]
  3. ↑ Schaller, K.L., & Caldwell, J.H. (2003).
    Expression and distribution of voltage-gated sodium channels in the cerebellum. Cerebellum (London, England), 2(1), 2-9. [PubMed:12882229] [WorldCat] [DOI]
  4. ↑ D'Angelo, E., Mazzarello, P., Prestori, F., Mapelli, J., Solinas, S., Lombardo, P., ..., & Congi, L. (2011).
    The cerebellar network: from structure to function and dynamics. Brain research reviews, 66(1-2), 5-15. [PubMed:20950649] [WorldCat] [DOI]
  5. ↑ Ito, M. (2001).
    Cerebellar long-term depression: characterization, signal transduction, and functional roles. Physiological reviews, 81(3), 1143-95. [PubMed:11427694] [WorldCat] [DOI]
  6. ↑ Ito, M. (2001).
    Cerebellar long-term depression: characterization, signal transduction, and functional roles. Physiological reviews, 81(3), 1143-95. [PubMed:11427694] [WorldCat] [DOI]
  7. ↑ Takeuchi, T., Ohtsuki, G., Yoshida, T., Fukaya, M., Wainai, T., Yamashita, M., ..., & Mishina, M. (2008).
    Enhancement of both long-term depression induction and optokinetic response adaptation in mice lacking delphilin. PloS one, 3(5), e2297. [PubMed:18509461] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  8. ↑ Schonewille, M., Gao, Z., Boele, H.J., Veloz, M.F., Amerika, W.E., Simek, A.A., ..., & De Zeeuw, C.I. (2011).
    Reevaluating the role of LTD in cerebellar motor learning. Neuron, 70(1), 43-50. [PubMed:21482355] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  9. ↑ Hansel, C., Linden, D.J., & D'Angelo, E. (2001).
    Beyond parallel fiber LTD: the diversity of synaptic and non-synaptic plasticity in the cerebellum. Nature neuroscience, 4(5), 467-75. [PubMed:11319554] [WorldCat] [DOI]
  10. ↑ Hirano, T., & Kawaguchi, S.Y. (2012).
    Regulation of inhibitory synaptic plasticity in a Purkinje neuron. Cerebellum (London, England), 11(2), 453-4. [PubMed:22090365] [WorldCat] [DOI]
  11. ↑ Schreurs, B.G., Gusev, P.A., Tomsic, D., Alkon, D.L., & Shi, T. (1998).
    Intracellular correlates of acquisition and long-term memory of classical conditioning in Purkinje cell dendrites in slices of rabbit cerebellar lobule HVI. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience, 18(14), 5498-507. [PubMed:9651230] [PMC] [WorldCat]
  12. ↑ Watase, K., Ishikawa, K., & Mizusawa, H. (2010).
    [SCA6: From gene identification to recent progress on pathogenesis]. Rinsho shinkeigaku = Clinical neurology, 50(11), 858-60. [PubMed:21921472] [WorldCat] [DOI]

（執筆者：田中進介、平野丈夫　担当編集委員：渡辺大）

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