ディファレンシャルディスプレイ

岸本 泰司、中矢 正、桐野 豊
徳島文理大学
DOI：10.14931/bsd.193　原稿受付日：2011年12月23日　原稿完成日：2012年1月23日
担当編集委員：林 康紀（独立行政法人理化学研究所　脳科学総合研究センター）

英：differential display　英略語：DDRT-PCR, DD-PCR　仏：l'affichage différentiel

　ディファレンシャルディスプレイ（別名、"ディファレンシャルディスプレイRT-PCR (DDRT-PCR, DD-PCR)"）とは、遺伝子発現の量の差異をPCR法により解析する方法の一種である。ここで、ディスプレイ(display)とは、目的遺伝子をゲル上で視覚的に表示するとの意であり、多数のRNAにおいて、様々な発現パターンを示すmRNAを包括的に同定しその発現量を比較できることから、ゲノム科学における遺伝子発現解析 に有力な手法である。

原理と適用例

図1 Differential Displayの結果例。 条件付けを行ったナメクジ個体(P, Paired)及び対照群の個体(U, Unpaired)、各群2サンプルから調整したtotal RNAを用いてDDを行った。 用いたOligodTMN primer (N = C)及びArbitrary primerは上部に示す。群間で差があり、且つ2サンプルで再現性のあるバンドを探索した。多くのバンドが再現性良く現れており、群間で差は認められない。*で示すバンドは同一群内で異なる結果を示していることから、本実験では再現性が無い、と判断された。矢印で示す1及び2がPaired群で増加、3及び4が減少しているバンドを示す。右パネルはDNAマーカーを示す。

　遺伝子から転写されたmRNAの量は、遺伝子機能の量的な面を反映していると考えられるため、遺伝子の発現量から機能を推測しようというのが、この遺伝子発現解析の基本的な概念である。本技法は、1992年にLiangとPardeeにより、mRNAレベルで真核細胞の試料間で、遺伝子発現の同定比較を行うことできる技術として発表された。形態的、遺伝学的、または実験的処置等に異なる試料間で、どの遺伝子発現に変化・差異があるかを見出すことができる。

　例えば、ある物質の添加によりある遺伝子の発現の増加/減少が見出された場合、この遺伝子の発現がその物質により誘導/抑制されていると考えられる。防御蛋白質や阻害作用の解析などに多くの適用が考えられる。脳神経科学領域では、ある学習課題が成立した動物個体としていない動物個体の細胞間で、発現に差のある遺伝子を同定することで、その学習に関与する遺伝子群が同定された適応例がある(図1)。比較的感度が良く、実験操作も簡便に行うことができ、また必要に応じて、3試料以上の間での比較に拡張することも可能である。

　原法では、検出方法として放射性同位元素（radioisotope, RI）を用いていた(RI-DD法)が、その後、蛍光標識されたプライマーを用いて検出する「蛍光ディファレンシャルディスプレイ (FDD) 法」が開発され、検出感度、操作性や再現性が高められた。

利点と不利点

　本法は、単一ゲル上で多数の試料のバンド分布を同時に比較できることから効率良く遺伝子発現量の差が検出できるため、組織や細胞が発現する遺伝子とその発現量の解析、つまりtranscription imageの研究分野に急速に普及した。ただし、任意プライマーを用いてPCR反応を行うことから再現性が高いとは言えず、また、高感度であるが故にPCRの条件設定を厳密に行わないと擬陽性のバンドも出やすい。そのため、2000年代半ばには、高速かつ高感度で大量解析可能なDNAアレイ（DNAチップ）、RNA-seq、定量的リアルタイムPCR（RT-PCR）などの技術の登場によってその相対的重要性は低下している。しかしながら、DNAアレイに比較して、ディファレンシャルディスプレイ法はコスト面、所要時間で未だ有利であり、出発材料が少量でも解析を行えるという利点も有する。また通常のDNAアレイと異なり、ディファレンシャルディスプレイ法では新規遺伝子の検出が可能であることなどの利点もあることから、今後も特定の分野で有効な解析法となり得る。 　

　なお、蛋白質レベルにおける発現量を比較する「蛋白質ディファレンシャルディスプレイ法」という手法もある。これは、複数種の特定の細胞試料間で蛋白質の発現パターンの違いを分析する方法であり、一般的には二次元ゲル電気泳動で各細胞の蛋白質を分離し、そのパターンの差を比較する方法である。

方法と手順

　以下、通常のmRNA試料を対象としたディファレンシャルディスプレイ法について説明する (図2)。

図2 ディファレンシャルディスプレイ法の手順

　細胞中で発現したmRNAすべてを逆転写しcDNAを得た後、これを鋳型にして複数の混合プライマーを用いたPCRを行う。ここで、特異性を持たせずできるだけ多くの種類のcDNA断片を増幅するよう設定した複数のプライマーを用いることにより、非常に多数のバンドが得られる。１つの細胞で発現し得る約15,000種類の遺伝子すべての発現を網羅して探索するために、3種類のアンカープライマーと20種類の混成プライマー(10 mer)を用いてPCRを行う。得られたバンドの強弱を遺伝子発現の強度の指標とし、特定の物質添加の有無などさまざまな操作・環境の違いによりその細胞のどの遺伝子が変化しているかを見出す。

1. アンカープライマーによるmRNAの選択的逆転写（第1鎖合成）

   比較したい２種類（またはそれ以上）の細胞からそれぞれ抽出したmRNAを、ポリ(A)鎖と結合するアンカープライマーと逆転写酵素を用いた逆転写反応によってcDNAに変換する。アンカープライマーとしはT（チミジン）12個からなるオリゴヌクレオチドの3’端に、A,G,Cのうちの1種のヌクレオチド1個を付加したものを用いる（T₁₂N、但し、N=A, G, or C）。時にT₁₂MN（但し、M=A, G, Cの混合、N=A, G, CまたはT）を用いることもある。

2. 任意プライマーによるcDNAの選択的第2鎖合成とPCRによる増幅

   次に、合成されたcDNAを鋳型に、アンカープライマーと任意の混成塩基配列を持つ（通常10merの）オリゴヌクレオチド群をプライマーとしてPCRを行う。これによって任意の共通塩基配列をもつ複数のcDNA断片を、同時にPCR増幅する。この結果、両端をアンカープライマーと任意プライマーの配列で置換された分子が生じる。

3. 電気泳動（もしくは蛍光イメージアナライザー等）による発現の分類

   反応生成物をポリアクリルアミド電気泳動で展開すると、複数のcDNA断片からなるフィンガープリントが得られる。この中から、強度に変化のある、または特異的な泳動パターンを示すバンドの切り出しを行う。

4. バンドの再増幅およびクローン化

   ゲルからサンプルを回収し、それを鋳型としてPCRを繰り返し行い増幅し、cDNAクローンを回収する。