チャネル病

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中條 浩一久保 義弘
自然科学研究機構 生理学研究所
DOI:10.14931/bsd.5492 原稿受付日:2014年12月16日 原稿完成日:2014年12月19日
担当編集委員:林 康紀(独立行政法人理化学研究所 脳科学総合研究センター)

英:channelopathy 独: Kanalopathie 仏: canalopathie

同義語:チャネロパチー

 チャネル病は、イオンチャネルあるいはその関連タンパク質が原因で起こる疾患の総称である。チャネル遺伝子の変異による先天性のものと、薬剤や自己免疫疾患等で起こる後天性のものが存在する。特に電位依存性のイオンチャネルに関しては、神経細胞や筋細胞などの興奮性を制御する役割を担っているため、これらのイオンチャネルの異常は、てんかんや不整脈などの興奮性異常が生じる疾患につながる。チャネル病が起こる原因を理解するためには、原因である遺伝子とその変異を同定することはもちろん不可欠であるが、発現系によりそれら変異体の電気生理学的性質の変化を調べることで、チャネル病特有の原因、たとえば開閉の電位依存性の変化や、不活性化の異常など、より深いレベルで原因を解明することも可能である。近年では患者から作成したiPS細胞を心筋細胞などに分化させることで、遺伝子異常が活動電位等の電気的性質にどのような影響を与えるかということまで解析が可能になりつつある。またゲノムワイド関連解析等により、次々と新しいチャネル病に関わる遺伝子および変異が同定されつつある。

チャネル病とは

 チャネル病はイオンチャネルあるいはその関連タンパク質が原因で起こる疾患の総称である。イオンチャネルとは膜タンパク質の一種であり、特定の種類のイオンを通すことで細胞の電気的活動を担っている[1]。そのため、興奮性細胞によって構成される脳神経系、心臓骨格筋等におけるチャネル病の例が多数報告されている。あるいは腎臓などでイオンの輸送が阻害されることによって起こるチャネル病なども知られている。イオンチャネルは身体のさまざまな部位で重要な役割を果たしており、したがってチャネル病もさまざまな臓器において起こりうる。

 チャネル病には先天的な原因によって起こるものと、免疫疾患や薬剤誘発性等、後天的な原因によるものとに大別される。先天的とはすなわち遺伝子変異によるものであり、主に点突然変異によるアミノ酸置換やフレームシフトによるトランケーション、CAGリピートの増加などによって起こる。それらの結果として、単にイオンチャネルとしての機能が欠損するもの、すなわちイオン電流がなくなる、あるいは電流量が減少してしまうこともあれば、イオンチャネルの生物物理学的な性質が変わってしまっている場合もある。前者としては、イオンを通すイオン選択性フィルターの性質が変わることでイオンが通りにくくなってしまったり、あるいは細胞膜への輸送(トラフィッキング)への影響で、細胞膜上で機能しているイオンチャネルの量(発現量)が減ってしまったりするケースが考えられる。後者としては、例えば電位依存性のイオンチャネルの場合、その活性化の電位依存性が変化すること、あるいは不活性化するイオンチャネルにおいて不活性化の性質が変化することなどが考えられる。

 疾患の原因である変異が同定できれば、哺乳類培養細胞等の発現系に変異を導入したイオンチャネルを発現させ、電気生理学的手法もしくは細胞生物学的手法により機能解析をすることで、変異によって生じたイオンチャネル機能もしくは発現量の変化と、それによる疾患の発生メカニズムを明らかにすることができる。疾患の治療につなげるためには、このようなイオンチャネル特有の機能解析に基づいた原因の理解が不可欠である。それにより、例えばチャネル活性を制御するような薬(アゴニスト、アンタゴニスト)を使用する、といった方針が立つことになる。近年はチャネル病の患者から作成されたiPS細胞を用いた機能解析も始まっており、この流れは今後ますます加速していくと思われる[2][3]

 以下、興奮性細胞である神経系、心筋、骨格筋のチャネル病を中心に代表的なチャネル病の例を挙げる。しかしながら、イオンチャネルの遺伝子数と発現部位の多様性を考えれば、下記の例以外にも多くのチャネル病が存在すると考えられ、ゲノムワイド関連解析などにより今後も続々と発見・同定されていくのではないかと思われる。最近の総説として、神経系のチャネル病については2010年6月1日号にJournal of Physiologyが、チャネル病全般については2010年7月号にPflügers Archivがそれぞれ特集号を出版しているので、そちらも参照されたい[4][5]

脳・神経系のチャネル病

 脳・神経系では、神経細胞がネットワークを張り巡らせ、その電気的活動を担っている。神経細胞の電気的活動は、電位依存性ナトリウムチャネル(NaV)、電位依存性カリウムチャネル(KV)、電位依存性カルシウムチャネル(CaV)などによって担われている。したがって、これらのイオンチャネルに異常が生じると、てんかんに代表される脳神経系のチャネル病につながる。また最近のゲノムワイド関連解析により、自閉症に関連する遺伝子として電位依存性ナトリウムチャネル電位依存性カリウムチャネルがあげられており、精神疾患との関わりも注目されている[6]

電位依存性ナトリウムチャネルの異常

 電位依存性ナトリウムチャネルが原因となる中枢神経系の異常としては、熱性けいれんプラス (GEFS+; generalized epilepsy with febrile seizures plus)とよばれる家族性のてんかんが知られているが、これは電位依存性ナトリウムチャネル遺伝子のうちのNaV1.1 (SCN1A),NaV1.2 (SCN2A)、あるいはその修飾サブユニットであるNaβ1 (SCN1B)に異常が生じることで引き起こされる[7][8]。電位依存性ナトリウムチャネルにおいては、その不活性化と呼ばれる性質が神経細胞の興奮性の制御に重要である。この疾患においては、アミノ酸変異によって不活性化の性質が不完全になっており、ナトリウムチャネルが開きやすい状態にあることが神経細胞の過興奮につながり、てんかん発作を引き起こすと考えられる。またより重度な乳児重症ミオクロニーてんかんにおいても、NaV1.1がその原因遺伝子であることが判明している[9]。この疾患においては、てんかんに加えて自閉症に似た症状や精神発達障害、運動失調なども伴う。さらに最近のゲノムワイド関連解析により、Nav1.2が自閉症に関連する遺伝子として同定されている[6]

電位依存性カリウムチャネルの異常

 電位依存性カリウムチャネルは神経細胞の電気的活動を鎮める方向に働くので、これらのチャネルの電流が減ると、やはり過興奮となり、てんかんなどの疾患の原因となる。軸索起始部 (axon initial segment)に存在するKCNQ2KCNQ3は、ヘテロ四量体としてMチャネルと呼ばれるイオンチャネルを構成する。比較的活性化の閾値が低く、静止膜電位近くで開くことで神経細胞の膜興奮性を制御していると考えられるが、どちらも良性家族性新生児痙攣と呼ばれる疾患の原因遺伝子である[10][11][12]

Gタンパク質結合型内向き整流性カリウムチャネルの異常

 Weaverマウスと呼ばれるマウスは小脳形成に異常があり、重篤な小脳失調症状を示す。このマウスではGタンパク質結合型内向き整流性カリウムチャネルGIRK2のポア領域の点変異によることがあきらかとなっている。これは発生過程での静止膜電位の異常が神経の形態形成不全を引き起こした結果であるが、これもカリウムチャネルのチャネル病の一種である。

電位依存性カルシウムチャネルの異常

 電位依存性カルシウムチャネルは、それぞれのサブタイプが、細胞体神経終末樹状突起などに局在して機能を果たしている。この中で、P/Q型カルシウムチャネルとしても知られるCaV2.1(CACNA1A)は、シナプス前終末での神経伝達物質放出に関わるイオンチャネルであるが、家族性片頭痛反復発作性失調症2型 (EA2)、脊髄小脳失調症6型 (SCA6)といった、小脳に異常を呈するさまざまな神経疾患に関わっていることも知られている。たとえば脊髄小脳失調症6型においては、P/Q型カルシウムチャネルの3'末端でCAGの3塩基が繰り返し配列を取って異常に長くなる、いわゆるCAGリピート病であることが知られている。さらに最近のゲノムワイド関連解析により、Cav1.3(CACNA1D)とそのサブユニットであるα2δ-3(CACNA2D3)が自閉症に関連する遺伝子として新たに同定されている[6]

心臓のチャネル病

 
図1. QT延長症候群の発生機序
例えばカリウム電流が減少すると、脱分極後の再分極が遅れるために心室筋活動電位の延長(赤線)が起きる。
 
図2. KCNQ1サブユニット上のLQT1またはJLNを起こすアミノ酸(マゼンタ)とSQT2を起こすアミノ酸(黄色)
ここでは1分子のみを表示している。構造はKCNQ1の開状態モデルを使用[13]

 心臓の収縮と弛緩は心筋細胞の活動電位によって制御されている。そしてその活動電位はやはり、各種のイオンチャネルによって制御されている。たとえば心室筋細胞の活動電位は電位依存性ナトリウムチャネル、電位依存性カルシウムチャネルおよび数種類のカリウムチャネルによって形成されている。ナトリウムチャネルあるいはカルシウムチャネルの機能亢進、あるいはカリウムチャネルの機能抑制が起こると、活動電位の延長が起こり、心電図のQT時間が延長するQT延長症候群となる(図1)。これは不整脈の一種であり、心室細動を誘発するなど、最悪突然死につながる可能性もある。QT延長症候群と比べると頻度は低いが、カリウムチャネルの機能亢進によって活動電位が短縮し、心電図のQT時間が短縮するQT短縮症候群も心臓のチャネル病として知られている。

電位依存性ナトリウムチャネルの異常

 QT延長症候群には原因遺伝子の違いにより、これまで13種類の亜型(LQT1~LQT13)が報告されている(表1)。そのうちナトリウムチャネルが原因のQT延長症候群は3型 (LQT3)であり、NaV1.5 (SCN5A)がその原因遺伝子である。LQT3ではナトリウム電流の不活性化が不完全になり、持続性の電流が多くなることで脱分極の状態を長くする。一方、同じNaV1.5が原因であるブルガダ症候群では、逆にNaV1.5の機能が低下する変異が原因である。活動電位が短縮し、心内膜から心外膜にわたって再分極の状態がばらつくことで、心室細動を起こしやすい状態になっていると考えられる。

 その他ナトリウムチャネル関連タンパク質として、ナトリウムチャネルを細胞膜の特定の場所にアンカーするアンキリンB (LQT4)、ナトリウムチャネルのβサブユニット SCN4B (LQT10)がQT延長症候群の原因遺伝子として同定されている。

電位依存性カルシウムチャネルの異常

 カルシウムチャネルが原因のQT延長症候群はL型カルシウムチャネルの一種であるCaV1.2 (CACNA1C)の機能亢進が原因であり、亜型としては8型 (LQT8)に相当する。CaV1.2のG406R変異は電位依存性不活性化を著しく弱くし、そのためカルシウム電流が亢進する。この場合、QT延長のみならず合指等の形成不全、免疫不全自閉症などさまざまな症状を呈し、Timothy症候群と名付けられている[2][14]。このことは、CaV1.2カルシウムチャネルが、心臓のみならず、体中のさまざまな部位、そして発生過程も含めたさまざまなステージで重要な働きを担っていることを示している。

電位依存性カリウムチャネルの異常

 前述のとおり、心臓では複数種類のカリウムチャネルが心臓の興奮性制御に寄与しており、QT延長症候群にも複数種類のカリウムチャネルが原因遺伝子として報告されている。先天性QT延長症候群の中でもっとも高い頻度で報告されている亜型は、KCNQ1チャネルが原因のLQT1と、KCNH2 (hERG)チャネルが原因のLQT2である[15][16][17][18][19]。どちらも電位依存性カリウムチャネルαサブユニットをコードしており、両者でLQTとして遺伝子診断される患者全体の80%程度を占めている。それぞれのイオンチャネルからはこれまでに数十を超える変異部位が見つかっており、ほとんどどの部位に問題が生じても、疾患を生じうることがわかる(図2)。

 これらカリウムチャネルのβサブユニットであるKCNE1 (LQT5)、KCNE2 (LQT6)、KCNQ1結合タンパク質であるAKAP-9 (LQT11)もQT延長症候群原因遺伝子である。これらLQTは常染色体優性遺伝であり、Romano-Ward症候群とも分類される。

 一方先天性の難聴を伴う常染色体劣性遺伝のものはJervell and Lange-Nielsen症候群 (JLN)と呼ばれて区別される。JLN1としてKCNQ1、JLN2としてKCNE1が知られている。

 内向き整流性カリウムチャネルKir2.1 (KCNJ2)もQT延長症候群の原因遺伝子(LQT7)であるが、さらに周期性四肢麻痺、形態異常などを併発し、Andersen症候群と呼ばれる。Timothy症候群と同様、Kir2.1チャネルが、できあがった機能に必要なだけではなく、発生過程・形態形成においても重要な役割を果たしていることを示している。

 QT短縮症候群は、上述の通り活動電位が短縮し、心電図のQT時間が短縮する不整脈の一種である。QT短縮症候群にも原因遺伝子の違いにより、いくつか亜型(SQT1~SQT3)があることが知られている(表2)。それぞれ変異による機能亢進によってQT短縮症候群を起こすことが知られている。

表1. QT延長症候群(LQT)の原因遺伝子
原因遺伝子 コードするタンパク質
LQT1 KCNQ1 電位依存性カリウムチャネル
LQT2 KCNH2 電位依存性カリウムチャネル
LQT3 SCN5A 電位依存性ナトリウムチャネル
LQT4 ANK2 アンキリンB
LQT5 KCNE1 カリウムチャネル修飾サブユニット(βサブユニット)
LQT6 KCNE2 カリウムチャネル修飾サブユニット
LQT7 KCNJ2 内向き整流性カリウムチャネル
LQT8 CACNA1C 電位依存性カルシウムチャネル
LQT9 CAV3 カベオリン
LQT10 SCN4B ナトリウムチャネル修飾サブユニット(βサブユニット)
LQT11 AKAP9 Aキナーゼアンカータンパク質
LQT12 SNTA1 シントロフィン
LQT13 GIRK4 Gタンパク質活性化カリウムチャネル
表2. QT短縮症候群(SQT)の原因遺伝子
原因遺伝子 コードするタンパク質
SQT1 KCNH2 電位依存性カリウムチャネル
SQT2 KCNQ1 電位依存性カリウムチャネル
SQT3 KCNJ2 内向き整流性カリウムチャネル

骨格筋のチャネル病

 周期性四肢麻痺は、定期的に全身の筋力が失われる疾患で、多くの場合は遺伝性疾患である。血漿のカリウムイオン濃度の低下によって誘発される低カリウム性周期性四肢麻痺については、骨格筋のL型電位依存性カルシウムチャネル CaV1.1 (CACNA1S)、電位依存性ナトリウムチャネルNaV1.4 (SCN4A)が原因遺伝子として同定されている。CaV1.1については、細胞膜電位を感じる電位センサー中の正電荷を持つアミノ酸が変異することで脱分極に反応しにくいカルシウムチャネルとなり、結果として筋肉がうまく収縮することができなくなり麻痺となる。

 一方まれではあるが、血漿の高カリウムイオン濃度で誘発される高カリウム性周期性四肢麻痺も存在し、こちらはNaV1.4 (SCN4A)が原因遺伝子であると考えられている[20]。こちらはナトリウムチャネルの不活性化が不完全であるためにナトリウム電流が流れ続け、脱分極状態が続いてしまう。これによりナトリウムチャネルが不活性化状態から抜けられなくなってしまい、筋細胞の興奮性が低下してしまうことで麻痺がおこると考えられている。

 ミオトニアは寒冷時に誘発される手足のこわばりを示す先天性の病気である。この場合も同様にNaV1.4 (SCN4A)が原因遺伝子であり、高カリウム性周期性四肢麻痺と同様に不活性化が不完全であるが、この場合は細胞の脱分極状態が続くことで筋肉の収縮が続いている状態になっていると考えられる。同じ不活性化の異常でも、その程度の差により、麻痺になる場合とミオトニアになる場合に分かれると考えられる。

その他のチャネル病

 嚢胞性線維症は、欧米白人に高頻度で見られる遺伝性疾患で、塩素イオンチャネルの一種であるCFTRの異常によるものである。塩素イオンの輸送の異常に伴って水分の輸送にも以上をきたし、外分泌腺粘液の粘度が高くなることで各器官の管に詰まりを起こし、呼吸困難や消化機能の低下を引き起こす。

 バーター症候群は腎臓でのNa+とCl-の再吸収障害により生じる疾患であり、弱い内向き整流性カリウムチャネルであるKir1.1 (ROMK1)、塩素イオンチャネルであるCLC-K2がその原因遺伝子として同定されている。塩素イオンチャネルはその他にCLC-K1腎性尿崩症CLC-5デント病と呼ばれる疾患の原因遺伝子であることが知られている。

 膵β細胞におけるインスリン分泌は、KATPチャネルや電位依存性カルシウムチャネルなどによって制御されている。インスリン分泌の異常あるいはインスリン感受性の低下は糖尿病を引き起こす。最近のゲノムワイド関連解析により、QT延長症候群の原因遺伝子でもある電位依存性カリウムチャネルのKCNQ1が、日本人に多くみられる2型糖尿病の関連遺伝子として同定された[21][22]。興味深いことに2型糖尿病と相関の強いSNPはイントロン領域15に存在しており、アミノ酸の変異などを伴うものではない。しかしながらインスリン分泌が低下する傾向があることから、これも広義のチャネル病と考えることができる。KCNQ1による2型糖尿病発症のメカニズムについては現在のところ不明であり、今後の解明が待たれる。

関連項目

参考文献

  1. 久保義弘、岡村康司
    標準生理学 第8版 第4章 膜興奮性とイオンチャネル
    医学書院(東京):2014
  2. 2.0 2.1 Yazawa, M., Hsueh, B., Jia, X., Pasca, A.M., Bernstein, J.A., Hallmayer, J., & Dolmetsch, R.E. (2011).
    Using induced pluripotent stem cells to investigate cardiac phenotypes in Timothy syndrome. Nature, 471(7337), 230-4. [PubMed:21307850] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  3. Terrenoire, C., Wang, K., Tung, K.W., Chung, W.K., Pass, R.H., Lu, J.T., ..., & Kass, R.S. (2013).
    Induced pluripotent stem cells used to reveal drug actions in a long QT syndrome family with complex genetics. The Journal of general physiology, 141(1), 61-72. [PubMed:23277474] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  4. Robertson, B. (2010).
    Introduction to the Journal of Physiology's special issue on neurological channelopathies. The Journal of physiology, 588(Pt 11), 1821-2. [PubMed:20516349] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  5. Nilius, B. (2010).
    A Special Issue on channelopathies. Pflugers Archiv : European journal of physiology, 460(2), 221-2. [PubMed:20238123] [WorldCat] [DOI]
  6. 6.0 6.1 6.2 De Rubeis, S., He, X., Goldberg, A.P., Poultney, C.S., Samocha, K., Cicek, A.E., ..., & Buxbaum, J.D. (2014).
    Synaptic, transcriptional and chromatin genes disrupted in autism. Nature, 515(7526), 209-15. [PubMed:25363760] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  7. Wallace, R.H., Wang, D.W., Singh, R., Scheffer, I.E., George, A.L., Phillips, H.A., ..., & Mulley, J.C. (1998).
    Febrile seizures and generalized epilepsy associated with a mutation in the Na+-channel beta1 subunit gene SCN1B. Nature genetics, 19(4), 366-70. [PubMed:9697698] [WorldCat] [DOI]
  8. Escayg, A., MacDonald, B.T., Meisler, M.H., Baulac, S., Huberfeld, G., An-Gourfinkel, I., ..., & Malafosse, A. (2000).
    Mutations of SCN1A, encoding a neuronal sodium channel, in two families with GEFS+2. Nature genetics, 24(4), 343-5. [PubMed:10742094] [WorldCat] [DOI]
  9. Claes, L., Del-Favero, J., Ceulemans, B., Lagae, L., Van Broeckhoven, C., & De Jonghe, P. (2001).
    De novo mutations in the sodium-channel gene SCN1A cause severe myoclonic epilepsy of infancy. American journal of human genetics, 68(6), 1327-32. [PubMed:11359211] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  10. Biervert, C., Schroeder, B.C., Kubisch, C., Berkovic, S.F., Propping, P., Jentsch, T.J., & Steinlein, O.K. (1998).
    A potassium channel mutation in neonatal human epilepsy. Science (New York, N.Y.), 279(5349), 403-6. [PubMed:9430594] [WorldCat] [DOI]
  11. Schroeder, B.C., Kubisch, C., Stein, V., & Jentsch, T.J. (1998).
    Moderate loss of function of cyclic-AMP-modulated KCNQ2/KCNQ3 K+ channels causes epilepsy. Nature, 396(6712), 687-90. [PubMed:9872318] [WorldCat] [DOI]
  12. Wang, H.S., Pan, Z., Shi, W., Brown, B.S., Wymore, R.S., Cohen, I.S., ..., & McKinnon, D. (1998).
    KCNQ2 and KCNQ3 potassium channel subunits: molecular correlates of the M-channel. Science (New York, N.Y.), 282(5395), 1890-3. [PubMed:9836639] [WorldCat] [DOI]
  13. Smith, J.A., Vanoye, C.G., George, A.L., Meiler, J., & Sanders, C.R. (2007).
    Structural models for the KCNQ1 voltage-gated potassium channel. Biochemistry, 46(49), 14141-52. [PubMed:17999538] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  14. Splawski, I., Timothy, K.W., Sharpe, L.M., Decher, N., Kumar, P., Bloise, R., ..., & Keating, M.T. (2004).
    Ca(V)1.2 calcium channel dysfunction causes a multisystem disorder including arrhythmia and autism. Cell, 119(1), 19-31. [PubMed:15454078] [WorldCat] [DOI]
  15. Sanguinetti, M.C., Jiang, C., Curran, M.E., & Keating, M.T. (1995).
    A mechanistic link between an inherited and an acquired cardiac arrhythmia: HERG encodes the IKr potassium channel. Cell, 81(2), 299-307. [PubMed:7736582] [WorldCat] [DOI]
  16. Curran, M.E., Splawski, I., Timothy, K.W., Vincent, G.M., Green, E.D., & Keating, M.T. (1995).
    A molecular basis for cardiac arrhythmia: HERG mutations cause long QT syndrome. Cell, 80(5), 795-803. [PubMed:7889573] [WorldCat] [DOI]
  17. Wang, Q., Curran, M.E., Splawski, I., Burn, T.C., Millholland, J.M., VanRaay, T.J., ..., & Keating, M.T. (1996).
    Positional cloning of a novel potassium channel gene: KVLQT1 mutations cause cardiac arrhythmias. Nature genetics, 12(1), 17-23. [PubMed:8528244] [WorldCat] [DOI]
  18. Barhanin, J., Lesage, F., Guillemare, E., Fink, M., Lazdunski, M., & Romey, G. (1996).
    K(V)LQT1 and lsK (minK) proteins associate to form the I(Ks) cardiac potassium current. Nature, 384(6604), 78-80. [PubMed:8900282] [WorldCat] [DOI]
  19. Sanguinetti, M.C., Curran, M.E., Zou, A., Shen, J., Spector, P.S., Atkinson, D.L., & Keating, M.T. (1996).
    Coassembly of K(V)LQT1 and minK (IsK) proteins to form cardiac I(Ks) potassium channel. Nature, 384(6604), 80-3. [PubMed:8900283] [WorldCat] [DOI]
  20. Catterall, W.A. (2010).
    Ion channel voltage sensors: structure, function, and pathophysiology. Neuron, 67(6), 915-28. [PubMed:20869590] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  21. Yasuda, K., Miyake, K., Horikawa, Y., Hara, K., Osawa, H., Furuta, H., ..., & Kasuga, M. (2008).
    Variants in KCNQ1 are associated with susceptibility to type 2 diabetes mellitus. Nature genetics, 40(9), 1092-7. [PubMed:18711367] [WorldCat] [DOI]
  22. Unoki, H., Takahashi, A., Kawaguchi, T., Hara, K., Horikoshi, M., Andersen, G., ..., & Maeda, S. (2008).
    SNPs in KCNQ1 are associated with susceptibility to type 2 diabetes in East Asian and European populations. Nature genetics, 40(9), 1098-102. [PubMed:18711366] [WorldCat] [DOI]