「ゴルジ染色」の版間の差分

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[[ゴルジ]]染⾊は、イタリアのノーベル⽣理学医学賞受賞者のカミッロ・ゴルジ（Camillo Golgi: 1843-1926 図１）によって考案された鍍銀法の⼀種で、神経細胞の形態や樹状突起スパイン（樹状突起に⾒られる棘突起構造）などの微細構造を可視化するために⽤いられる染⾊法である。本法による染⾊像は他の化学染⾊や[[免疫]]染⾊と⽐べて⾼いコントラストを有するが、それはごくわずかの神経細胞がランダムに染⾊され、染まった細胞は⿊く、そのほかの細胞は無⾊であるため、鍍銀された神経細胞が明瞭に浮かび上がることによる（図２）。ゴルジ染⾊は、発⾒から約150 年になろうとする現在でも神経科学研究の第⼀線で利⽤される古典的な組織学的⼿法である。

ゴルジ染⾊では、クロム酸や塩化第⼆⽔銀などが⽤いられるが、これらの化合物は歴史的に、[[アルコール]]やホルマリンと同様に組織固定液として利⽤されてきた(1)。他の病理学者と同様に、ゴルジ⾃⾝も様々な固定液を⽤いて病理標本の観察を⾏っていた。ゴルジはクロム酸とオスミウム酸で固定した脳サンプルを、当時、⽤いられ始めていた硝酸銀に沈めて切⽚を作成することを試みた。作成した切⽚を顕微鏡のステージにのせ、レンズを覗き込んだ彼の眼には⿊々と染まった神経細胞が映しだされ、彼はこの⽅法を「⿊い反応」と名付け、すぐさま学術誌に公表した（2）。この「⿊い反応」が発⾒されたのは、1873 年ゴルジがちょうど30 歳の時であった。本法は、のちに彼の名前をつけて「ゴルジ染⾊」と呼ばれるようになり、現在に⾄っている。1873 年の「⿊い反応」の発表以降、多くの医師がゴルジの⽅法を⽤いて神経細胞の染⾊を試み、その恩恵を受けたことは想像に難くない。1888 年にはイタリアの医師カハール（ゴルジと共に1906 年に神経系の構造に関する研究としてノーベル⽣理学医学賞を受賞）がゴルジの原法を改良し[[反応時間]]を短縮させた急速ゴルジ法（ラピッドゴルジ法）を編み出している（3）。さらに1891 年には、オランダの医師コックスがゴルジ染⾊を改変したゴルジ・コックス染⾊法を発表した（4）。ゴルジ・コックス染⾊は、発表当時、ゴルジ染⾊よりも安定した結果が得られると評判になった。⽇本においては、神経解剖学者の萬年甫（１９２３−２０１１）がゴルジ・コックス染⾊法を⽤いて様々な[[動物]]の脳の神経構造を明らかにしてきた（5）。とくに、１９８８年に出版された「猫脳ゴルジ染⾊図譜」は萬年甫が約30 年の歳⽉をかけて作成した脳地図で、本書はもはや神経解剖学の領域を超えて芸術の域に達している（図３）（6）。このような歴史のある染⾊法は、現在でも改良が加えられながら時折その⽅法が学術誌に紹介されている。

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ゴルジ染⾊法の原理 ==

ゴルジ染⾊とゴルジ・コックス染⾊は⽤いる化合物が異なっており、ゴルジ染⾊ではシンプルにオスミウム酸と⼆クロム酸カリウムで固定した脳を硝酸銀⽔溶液に漬けるのみであるが、ゴルジ・コックス染⾊では、⼆クロム酸に加えてクロム酸カリウムと塩化⽔銀で固定した脳をアンモニア⽔で発⾊（⿊化）させている（7, 8）。すなわちゴルジ染⾊ではクロム酸銀の沈着を、またゴルジ・コックス染⾊では、⽔銀とアンモニア⽔による反応で⾦属⽔銀の沈着を観察することとなる（9）。これらの⽅法はともに、ごくわずかの神経細胞をランダムに染⾊し、染⾊された神経は⿊く強調され、そのほかの細胞は全く染⾊されないという⾮常に⾼いシグナル/ノイズ⽐をもたらすが、この成因については未だ明らかにされていない(10）。コックスが論⽂の中で述べたゴルジ染⾊の特⾊を、萬年甫は⾃らの書籍の中で次のように紹介している。「化合物の化学的あるいは物理的組成が、おそらく細胞の⽣理的状態の違い、あるいは細胞の死と関連してこのような差異を⽣ずるに違いない」と(4, 11)。

1. 2.3% (w/w) ⼆クロム酸カリウムならびに0.19% (w/w)四酸化オスミウムを含んだ固定液を作成し、約4-5 mm ⾓の脳標品を20 mL の固定液に浸漬する。室温で７⽇間保存する。

2. その後、脳標品を0.75%硝酸銀⽔溶液ですすぎ、あらたに硝酸銀⽔溶液を注ぎ⼊れ室温で⼀晩保存する。

3. リンスをせずに脳標品を1 の溶液に戻し６⽇間再固定する。

4. 新しい硝酸銀⽔溶液を⽤いて２の操作を繰り返し２晩保存する。

5. 新しい1 の固定液再び沈め３⽇間保存する。

6. 100%エタノールで脱⽔し、ソフトパラフィン（⽩⾊ワ[[セリン]]）内に包埋をする。

7. 100%エタノールで湿らせながらスライド式ミクロトームで100-300 μm 程度に薄切する。薄切した切⽚は100%エタノールの⼊った容器に15 分間沈め、その後、クローブ油かテレピン油の⼊った容器に移して15 分間沈める。

1. 5％⼆クロム酸カリウム⽔溶液（たとえば100 ml 蒸留⽔に5 グラム）と5％塩化⽔銀⽔溶液（100 ml 蒸留⽔に5 グラム）、ならびに5％クロム酸カリウム⽔溶液（80 ml 蒸留⽔に４グラム）を作成する。

2. 作成した5％⼆クロム酸カリウム⽔溶液と5％塩化⽔銀⽔溶液を混合し（合計200 ml）、ガラス棒を⽤いて撹拌する。3. 2 で混合した溶液と5％クロム酸カリウム⽔溶液を混合し、さらに蒸留⽔を200 ml を加える。溶液の⼊ったボトルは遮光し２⽇から１週間程度暗所室温で保存してから使⽤する。

4. 還流することなく⽣理⾷塩⽔ですすいだ脳標本（[[マウス]]脳程度の⼤きさにトリミングした標本）をバイアルビンなどに⼊れて、3 のゴルジ液を注ぐ。標本を暗所（室温）に静置し、２⽇後にゴルジ液を廃棄。新たなゴルジ液を注ぎ、さらに1-2 週間寝かす。

5. この間にクリオプロテクタント液を作成する。

6. 1-2 週間ゴルジ液に保存したサンプルを新たなバイアルビンに移し、クリオプロテクタント液を注ぐ。冷暗所（４℃）に保存する。翌⽇、液を交換し数⽇冷暗所に保存する。

7. プロテクタント液を張ったビブラトームを⽤いて、100 μm 程度の切⽚を作成する。切⽚は即座にスライドガラスに伸ばし、プロテクタント液を数滴たらす。プロテクタント液で湿らせたペーパータオルで切⽚の上から指で押し圧をかけてスライドに密着させる。その後スライドを暗所で乾燥させる。

8. 切⽚の張り付いたスライドを蒸留⽔で軽く、３倍希釈したアンモニア⽔に５から１０分程度浸し、アルコール系列で脱⽔後、中性封⼊剤で封⼊する。

ゴルジ染⾊は、我々が⽇常⾏なっている化学染⾊や免疫染⾊と⽐べて、煩雑でかつ成功までには少々の技術を要するため、そう簡易な染⾊⽅法ではない。ゴルジ染液に浸して作成した切⽚は乾燥に弱く、少しでも乾くとクラック（ひび割れ）が⼊って標本として利⽤できなくなるため、スライドガラスへの貼り付けは⾵乾ではなく、物理的に⼒を加えて圧着し、湿箱内で静置して標本とスライドガラスを接着させるなどの⼯夫が必要となる。また、ゴルジ染⾊は、たやすく神経細胞のみを選択的に染⾊すると思われがちであるが、浸漬時間や温度などの条件によって、神経細胞に加えて[[グリア細胞]]や⾎管内⽪が染⾊されることもある（7,8）。ゴルジ・コックス染⾊液では、⼆クロム酸カリウムだけでなく、クロム酸カリウムを加えているが、⼆クロム酸カリウム溶液（5% ⽔溶液でpH 8.5 からpH9.5 を⽰す）によって酸性に傾いた⽔素[[イオン]]濃度を中性に戻す働きがある（4,8, 11）。このことから、反応温度や時間にくわえて溶液のpH も染⾊結果に影響をもたらすと理解できる。