シグナル伝達兼転写活性化因子3

提供：脳科学辞典
2012年11月27日 (火) 22:50時点におけるWikiSysop (トーク | 投稿記録)による版

ナビゲーションに移動 検索に移動
Signal transducer and activator of transcription 3 (acute-phase response factor)
PDB rendering based on 1bg1.
Identifiers
Symbols STAT3; APRF; HIES
External IDs OMIM: 102582 MGI: 103038 HomoloGene: 7960 GeneCards: STAT3 Gene
RNA expression pattern
PBB GE STAT3 208991 at tn.png
PBB GE STAT3 208992 s at tn.png
PBB GE STAT3 gnf1h01250 at tn.png
More reference expression data
Orthologs
Species Human Mouse
Entrez 6774 20848
Ensembl ENSG00000168610 ENSMUSG00000004040
UniProt P40763 P42227
RefSeq (mRNA) NM_003150.3 NM_011486.4
RefSeq (protein) NP_003141.2 NP_035616.1
Location (UCSC) Chr 17:
40.47 – 40.54 Mb		 Chr 11:
100.89 – 100.94 Mb
PubMed search [1] [2]

英：Signal Transducers and Activator of Transcription 3、英略語：STAT3

　[シグナル伝達]]と転写活性化を行うことで、分化や生存、増殖などを調節するタンパク質の一群、Signal Transducers and Activator of Transcription (STAT) ファミリー分子の一つ。STAT3は非活性化状態時では細胞質に局在するが、活性化したJanus kinase（JAK）によってチロシンリン酸化を受け、核内移行し標的遺伝子を活性化する転写因子として働く。この活性化経路はJAK/STAT経路と呼ばれている[1]。

ファミリー

　これまでSTATファミリー分子としては、STAT1、STAT2、STAT3、STAT4、STAT5A、STAT5B、STAT6の7種類が報告されている[2][3]。

構造

図2．STAT3の構造
SH2ドメインは信号伝達鎖内のリン酸化チロシン残基を認識、結合する機能を持つ。コイルド-コイルドメインは４つのα-ヘリックスから成り、STAT3がSH2ドメインを介して信号伝達鎖と結合し、活性化されるために必須な領域として知られる。核局在化シグナル(NLS)は細胞質内で二量体化したSTAT3が核内に輸送されるために必要な配列である。DNA結合ドメインは活性化STAT3が標的DNA配列に結合する役割を有する。

　STAT3はマウスでは770アミノ酸残基から構成される。SH2ドメインは信号伝達鎖内のリン酸化チロシン残基を認識、結合する機能を持つ。コイルド-コイルドメインは４つのα-ヘリックスから成り、STAT3がSH2ドメインを介して信号伝達鎖と結合し、活性化されるために必須な領域として知られる。核局在化シグナル(NLS)は細胞質内で二量体化したSTAT3が核内に輸送されるために必要な配列である。DNA結合ドメインは活性化STAT3が標的DNA配列に結合する役割を有する。またリン酸化を受けることでSTAT3の活性に関わる705番目のチロシン残基と727番目のセリン残基を有する。 チロシンリン酸化されたSTAT3分子はホモ二量体あるいは異なるSTATファミリー分子間でヘテロ二量体を形成する。図2には例として、マウスSTAT3の構造を示した。

発現

　（編集コメント：組織発現、細胞内発現について御記述いただければ幸いです。）

　STAT3は

図1．IL-6ファミリーサイトカイン群と受容体
IL-6ファミリーサイトカインはそれぞれに特異的な受容体に結合し、共通信号伝達鎖gp130を含んだ受容体複合体を形成する。IL-6受容体(IL-6R)、IL-11R、CNTFRは可溶性の形態(sIL-6R、sIL-11R、sCNTFR)でも受容体複合体形成を可能とする。IL-6、IL-11はgp130同士のホモ二量体、LIF、CNTF、CT-1はgp130/LIFRとのヘテロ二量体形成を誘導する。CT-1受容体(CT-1R)はCT-1の結合によりgp130/LIFRとのヘテロ二量体を形成する。OSMはOSMRまたはLIFRとgp130とのヘテロ二量体化を誘導する。
図3．IL-6ファミリーサイトカインシグナルによるGFAP遺伝子の発現
IL-6ファミリーのシグナルによりSTAT3がリン酸化を受け、活性化される。活性化されたSTAT3はSTAT3同士でホモ二量体または他のSTATとヘテロ二量体を形成し、核内に移行後、GFAPプロモーター中のSTAT3認識配列に結合し、転写を誘導する。IL-6ファミリーに属する全てのサイトカインはSTAT3を活性化し、GFAPの転写を誘導することが明らかになっている。ここではLIFによるものを示した。

活性化機構

　免疫系に作用するサイトカインとして同定されたインターロイキン-6 (interleukin-6, IL-6) は、信号伝達に必須な受容体コンポーネントとして膜タンパク質glycoprotein 130 (gp130) を共通に利用するIL-6ファミリーサイトカインの一つである。IL-6ファミリーサイトカインには他にも、インターロイキン-11IL-11、オンコスタチンM (oncostatin M, OSM)、白血病抑制因子 (Leukemia Inhibitory Factor, LIF)、カルジオトロピン-1 (cardiotrophin-1, CT-1)、毛様体由来神経栄養因子 (Ciliary Neurotrophic Factor, CNTF) などが含まれる[4]。IL-6ファミリーサイトカインは、細胞膜上のサイトカイン特異的受容体と結合することで、IL-6ファミリーサイトカインに共通かつ必須の信号伝達因子であるgp130を含む信号伝達鎖の二量体化を引き起こす（図1）。

　その後、信号伝達鎖の細胞内領域に会合するJAKチロシンキナーゼが活性化され、信号伝達鎖の細胞内領域中のチロシン残基をリン酸化する。リン酸化されたチロシン残基に、転写因子STAT3が自身のSrc homology 2 (SH2) ドメインを介して会合、近接したJAKにより705番目のチロシン残基がリン酸化を受けることで活性化する[5]。

　チロシンリン酸化されたSTAT3分子はホモ二量体あるいは異なるSTATファミリー分子間でヘテロ二量体を形成し核へ移行した後、標的遺伝子の転写を誘導する。JAK/STAT3経路はIL-6ファミリーやinsulin-like growth factor-1 (IGF-1) など複数のサイトカインや増殖因子の刺激により活性化することが知られている[6][7][8]。

神経系での機能

アストロサイト分化誘導

　IL-6ファミリーサイトカインの刺激により活性化したSTAT3は、転写活性化因子としてグリア線維性酸性タンパク質glial fibrillary acidic protein (GFAP)のプロモーターに結合し、転写を促進する。GFAPはアストロサイトで特異的に発現するタンパク質であり、これまで神経幹細胞Neural stem cell (NSC) の培養系にIL-6ファミリーサイトカインを添加すると、JAK/STAT3経路を活性化することでアストロサイトへの分化が促進されることが明らかとなっている(図3)[4][6]。また、STAT3をシグナル経路下流の転写因子とするIL-6ファミリーサイトカインとSmadをシグナル経路下流の転写因子とする骨形成因子bone morphogenetic protein (BMP)群（TGF-βスーパーファミリーに属する）の両者は別々の受容体システムを介し、相乗的にアストロサイトの分化を誘導することが明らかにされている[9]。そのメカニズムとして、転写活性化の補助的役割を果たす核内転写共役因子p300が、サイトカイン刺激に応答して活性化されたSTAT3のN末端と、Smad1のC末端に結合し、STAT3/p300/smad1複合体を形成することで、標的遺伝子GFAPの効率的な発現を誘導することが明らかにされている。

神経幹細胞増殖制御

　通常のSTAT3遺伝子欠損（ノックアウト、KO）マウスは発生の比較的初期に死に至るので、マウス脳内におけるSTAT3 KOの影響を解析することは困難である[10]。そこで、神経系細胞特異的にSTAT3遺伝子を欠損（コンディショナルノックアウト、cKO）させるトランスジェニックマウスを用いて解析した結果、STAT3 cKOマウスの海馬歯状回において、NSCの数が、野生型マウスに比べ減少していることが明らかになった[11]。またニューロンに対して栄養因子として作用するCNTFは、gp130を介したシグナル伝達によりNSCの自己増殖を制御するという報告もなされている[12][13][14]。さらに、CNTF KOマウスの歯状回で、NSCの数が野生型マウスと比較して減少しているというSTAT3 cKOマウスと類似の結果が得られたことから、CNTFは受容体と結合し、下流のJAK/STAT3経路を活性化することで、NSCの自己増殖を制御すると考えられている[11]。

てんかん発作誘導性神経細胞死における神経保護作用

　成体マウスにおいて興奮性アミノ酸の一種、カイニン酸kainic acid (KA) 投与によるてんかん誘導に際し、抗てんかん薬として知られるcarbamazepine (CBZ)を投与すると、海馬のCA3領域において、ニューロン死の割合がKA投与のみの個体に比べ低いことが分かった。また、KA+CBZ投与マウスのCA3ニューロンにおいて、STAT3の発現レベルがmRNA、タンパク質においても上昇しており、活性化を表すチロシンリン酸化STAT3の増加も見られている。加えて、ニューロン保護タンパク質として知られているB-cell lymphoma-extra large (Bcl-xl) もまた、KA+CBZ投与マウスのCA3ニューロン内で発現レベルが高まっている上、CT-1の刺激によってSTAT3とSTAT1のヘテロ二量体がBcl-xl遺伝子に直接結合し、発現制御を行うという報告[15]から、CBZのシグナルを受けてJAK/STAT3経路が活性化し、Bcl-xlなどの抗アポトーシス分子の発現を誘導することで、てんかんによるニューロン死への保護効果が上昇することが示唆されている[7]。しかし、CBZシグナルがどのようなメカニズムでJAK/STAT3経路が活性化しているかはいまだ明らかになっていない。炎症性サイトカインである腫瘍壊死因子tumor necrosis factor-α (TNF-α)は神経疾患、または炎症反応中の脳で神経細胞毒性を持ち[16]、高濃度添加によりニューロン死が観察される。一方、インスリン様成長因子insulin-like growth factor-1 (IGF-1)は頭部外傷など、脳内の炎症反応により多量に発現し、神経保護作用を発揮する[17][18]。加えて、TNF-αのみを添加したニューロン群より、IGF-1とTNF-αを添加したニューロン群においてニューロン死の割合が低かったことから、IGF-1はTNF-αにより誘導されるニューロン死の抑制という作用を有することが明らかになった。このニューロン保護効果には、何らかのメカニズムでJAK/STAT3経路がIGF-1により活性化され、活性化されたSTAT3がサイトカインシグナル抑制因子suppressors of cytokine signaling 3 (SOCS-3)の転写を誘導し、誘導されたSOCS3がIL-6ファミリーサイトカイン受容体複合体の信号伝達鎖のリン酸化チロシン残基とJAKに結合し、JAKの機能を阻害することで、JAK/STAT3経路を抑制することが重要であると報告されている[19]。しかしSOCS3がJAK/STAT3経路を負に制御することにより、TNF-αシグナルをどのように抑制するのか、その詳細なメカニズムは明らかになっていない[8][20]。

脊髄損傷時の反応性アストロサイト分化誘導

　脊髄に損傷が起こると炎症反応が発生し、損傷部周辺の細胞で炎症性サイトカインの発現が亢進する。これらの刺激により損傷部周辺ではGFAP強陽性となる反応性アストロサイトの出現が観察される[21]。反応性アストロサイトは集合しグリア瘢痕を形成する[22]。グリア瘢痕は損傷部の物理的な防壁となり、損傷部を外部環境刺激から守ることで中枢神経系を再統合する役割を持つ[23]。しかし、グリア瘢痕は、chondroitin sulfate proteoglycans (CSPGs) などの軸索伸長阻害因子を分泌し、損傷部周辺ニューロンの軸索再伸長を阻害するため、これにより神経軸索再生が抑制される[24]。関連して、脊髄損傷を起こしたマウスへIL-6受容体の機能阻害抗体 (MR16-1) を投与すると、損傷部の反応性アストロサイトの数が減少し、神経機能の回復が観察されるという報告がなされている。ところで、アストロサイト特異的にSTAT3遺伝子を欠損させたマウスの脊髄を損傷させても、反応性アストロサイトが出現せず、グリア瘢痕は形成されない。しかし、先に述べたようにグリア瘢痕は損傷部を外部環境刺激から守る役割を持つので、アストロサイト特異的STAT3遺伝子欠損マウスは脊髄損傷が起きた後、傷口と炎症部が広がっていき、部分的に運動機能がさらに低下する[25]。これらのことから、IL-6ファミリーサイトカイン刺激によるJAK/STAT3経路の活性化によって誘導される反応性アストロサイトには、良い作用と悪い作用が存在し、そのバランスを制御することが病態改善には重要であると考えられる[26]。

まとめ

　ここに紹介したもの以外にも、STAT3の神経系における働きは多岐にわたり、それらを総合すると、JAK/STAT3経路は神経系の発達、形成に重要な役割を担う情報伝達経路と言える。また、単純に神経発達や形成に重要な因子となるタンパク質の発現を誘導するのみならず、その過度な活性化による障害を防ぐために自らのシグナル経路を抑制するタンパク質発現を誘導する負のフィードバックメカニズムも備えられており[27]、正しい生体機能が発揮されるために、JAK/STAT3経路は精妙に制御されている。

参考文献

  1. ↑ Ivashkiv, L.B., & Hu, X. (2004).
    Signaling by STATs. Arthritis research & therapy, 6(4), 159-68. [PubMed:15225360] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  2. ↑ Ihle, J.N. (1996).
    STATs: signal transducers and activators of transcription. Cell, 84(3), 331-4. [PubMed:8608586] [WorldCat] [DOI]
  3. ↑ O'Shea, J.J., Notarangelo, L.D., Johnston, J.A., & Candotti, F. (1997).
    Advances in the understanding of cytokine signal transduction: the role of Jaks and STATs in immunoregulation and the pathogenesis of immunodeficiency. Journal of clinical immunology, 17(6), 431-47. [PubMed:9418183] [WorldCat] [DOI]
  4. ↑ 4.0 4.1 Gyotoku, E., Morita, E., Kameyoshi, Y., Hiragun, T., Yamamoto, S., & Hide, M. (2001).
    The IL-6 family cytokines, interleukin-6, interleukin-11, oncostatin M, and leukemia inhibitory factor, enhance mast cell growth through fibroblast-dependent pathway in mice. Archives of dermatological research, 293(10), 508-14. [PubMed:11820727] [WorldCat] [DOI]
  5. ↑ Nakashima, K., & Taga, T. (1998).
    gp130 and the IL-6 family of cytokines: signaling mechanisms and thrombopoietic activities. Seminars in hematology, 35(3), 210-21. [PubMed:9685167] [WorldCat]
  6. ↑ 6.0 6.1 Nakashima, K., Yanagisawa, M., Arakawa, H., & Taga, T. (1999).
    Astrocyte differentiation mediated by LIF in cooperation with BMP2. FEBS letters, 457(1), 43-6. [PubMed:10486560] [WorldCat] [DOI]
  7. ↑ 7.0 7.1 Park, H.J., Kim, S.K., Chung, J.H., & Kim, J.W. (2013).
    Protective effect of carbamazepine on kainic acid-induced neuronal cell death through activation of signal transducer and activator of transcription-3. Journal of molecular neuroscience : MN, 49(1), 172-81. [PubMed:22772901] [WorldCat] [DOI]
  8. ↑ 8.0 8.1 Yadav, A., Kalita, A., Dhillon, S., & Banerjee, K. (2005).
    JAK/STAT3 pathway is involved in survival of neurons in response to insulin-like growth factor and negatively regulated by suppressor of cytokine signaling-3. The Journal of biological chemistry, 280(36), 31830-40. [PubMed:15998644] [WorldCat] [DOI]
  9. ↑ Nakashima, K., Yanagisawa, M., Arakawa, H., Kimura, N., Hisatsune, T., Kawabata, M., ..., & Taga, T. (1999).
    Synergistic signaling in fetal brain by STAT3-Smad1 complex bridged by p300. Science (New York, N.Y.), 284(5413), 479-82. [PubMed:10205054] [WorldCat] [DOI]
  10. ↑ Takeda, K., Noguchi, K., Shi, W., Tanaka, T., Matsumoto, M., Yoshida, N., ..., & Akira, S. (1997).
    Targeted disruption of the mouse Stat3 gene leads to early embryonic lethality. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 94(8), 3801-4. [PubMed:9108058] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  11. ↑ 11.0 11.1 Müller, S., Chakrapani, B.P., Schwegler, H., Hofmann, H.D., & Kirsch, M. (2009).
    Neurogenesis in the dentate gyrus depends on ciliary neurotrophic factor and signal transducer and activator of transcription 3 signaling. Stem cells (Dayton, Ohio), 27(2), 431-41. [PubMed:19023034] [WorldCat] [DOI]
  12. ↑ Bauer, S., Kerr, B.J., & Patterson, P.H. (2007).
    The neuropoietic cytokine family in development, plasticity, disease and injury. Nature reviews. Neuroscience, 8(3), 221-32. [PubMed:17311007] [WorldCat] [DOI]
  13. ↑ Gearing, D.P., Comeau, M.R., Friend, D.J., Gimpel, S.D., Thut, C.J., McGourty, J., ..., & Mosley, B. (1992).
    The IL-6 signal transducer, gp130: an oncostatin M receptor and affinity converter for the LIF receptor. Science (New York, N.Y.), 255(5050), 1434-7. [PubMed:1542794] [WorldCat] [DOI]
  14. ↑ Davis, S., Aldrich, T.H., Stahl, N., Pan, L., Taga, T., Kishimoto, T., ..., & Yancopoulos, G.D. (1993).
    LIFR beta and gp130 as heterodimerizing signal transducers of the tripartite CNTF receptor. Science (New York, N.Y.), 260(5115), 1805-8. [PubMed:8390097] [WorldCat] [DOI]
  15. ↑ Stephanou, A., Brar, B.K., Knight, R.A., & Latchman, D.S. (2000).
    Opposing actions of STAT-1 and STAT-3 on the Bcl-2 and Bcl-x promoters. Cell death and differentiation, 7(3), 329-30. [PubMed:10866494] [WorldCat] [DOI]
  16. ↑ Cheng, B., Christakos, S., & Mattson, M.P. (1994).
    Tumor necrosis factors protect neurons against metabolic-excitotoxic insults and promote maintenance of calcium homeostasis. Neuron, 12(1), 139-53. [PubMed:7507336] [WorldCat] [DOI]
  17. ↑ Doré, S., Kar, S., & Quirion, R. (1997).
    Rediscovering an old friend, IGF-I: potential use in the treatment of neurodegenerative diseases. Trends in neurosciences, 20(8), 326-31. [PubMed:9246719] [WorldCat] [DOI]
  18. ↑ Guan, J., Bennet, L., Gluckman, P.D., & Gunn, A.J. (2003).
    Insulin-like growth factor-1 and post-ischemic brain injury. Progress in neurobiology, 70(6), 443-62. [PubMed:14568359] [WorldCat]
  19. ↑ Nicholson, S.E., De Souza, D., Fabri, L.J., Corbin, J., Willson, T.A., Zhang, J.G., ..., & Baca, M. (2000).
    Suppressor of cytokine signaling-3 preferentially binds to the SHP-2-binding site on the shared cytokine receptor subunit gp130. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 97(12), 6493-8. [PubMed:10829066] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  20. ↑ Starr, R., & Hilton, D.J. (1999).
    Negative regulation of the JAK/STAT pathway. BioEssays : news and reviews in molecular, cellular and developmental biology, 21(1), 47-52. [PubMed:10070253] [WorldCat] [DOI]
  21. ↑ Johansson, C.B., Momma, S., Clarke, D.L., Risling, M., Lendahl, U., & Frisén, J. (1999).
    Identification of a neural stem cell in the adult mammalian central nervous system. Cell, 96(1), 25-34. [PubMed:9989494] [WorldCat] [DOI]
  22. ↑ Takahashi, M., Arai, Y., Kurosawa, H., Sueyoshi, N., & Shirai, S. (2003).
    Ependymal cell reactions in spinal cord segments after compression injury in adult rat. Journal of neuropathology and experimental neurology, 62(2), 185-94. [PubMed:12578228] [WorldCat] [DOI]
  23. ↑ Stichel, C.C., & Müller, H.W. (1998).
    The CNS lesion scar: new vistas on an old regeneration barrier. Cell and tissue research, 294(1), 1-9. [PubMed:9724451] [WorldCat] [DOI]
  24. ↑ David, S., & Lacroix, S. (2003).
    Molecular approaches to spinal cord repair. Annual review of neuroscience, 26, 411-40. [PubMed:12626698] [WorldCat] [DOI]
  25. ↑ Herrmann, J.E., Imura, T., Song, B., Qi, J., Ao, Y., Nguyen, T.K., ..., & Sofroniew, M.V. (2008).
    STAT3 is a critical regulator of astrogliosis and scar formation after spinal cord injury. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience, 28(28), 7231-43. [PubMed:18614693] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  26. ↑ Okada, S., Nakamura, M., Mikami, Y., Shimazaki, T., Mihara, M., Ohsugi, Y., ..., & Okano, H. (2004).
    Blockade of interleukin-6 receptor suppresses reactive astrogliosis and ameliorates functional recovery in experimental spinal cord injury. Journal of neuroscience research, 76(2), 265-76. [PubMed:15048924] [WorldCat] [DOI]
  27. ↑ Yasukawa, H., Ohishi, M., Mori, H., Murakami, M., Chinen, T., Aki, D., ..., & Yoshimura, A. (2003).
    IL-6 induces an anti-inflammatory response in the absence of SOCS3 in macrophages. Nature immunology, 4(6), 551-6. [PubMed:12754507] [WorldCat] [DOI]


（執筆者：赤土正一、中島欽一　担当編集委員：大隅典子）

「https://bsd.neuroinf.jp/w/index.php?title=シグナル伝達兼転写活性化因子3&oldid=15679」から取得