膜容量測定法

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高橋 倫子、河西 春郎
東京大学 大学院医学系研究科
DOI：10.14931/bsd.2521　原稿受付日：2013年1月18日　原稿完成日：2013年4月26日
担当編集委員：柚崎 通介（慶應義塾大学 医学部生理学）

図1．細胞膜の等価回路
Gm：膜コンダクタンス、Cm：膜容量、Gs：アクセスコンダクタンス

英：membrane capacitance measurement　独：Membran Kapazitätsmessung　仏：mesure de la capacité membranaire

　細胞を膜電位固定した時得られる膜電流には細胞膜を通過するイオンによる抵抗成分と細胞膜の容量に起因する膜容量成分がある。単位膜面積当たりの膜容量は一定(約1 μF/cm2)と考えられるので、膜容量から膜面積を推定することができる。NeherとMartyはパッチクランプ法と正弦波の膜電位コマンドを用いて、膜容量成分の微細な変化を記録する手法を1982年に確立した[1]。開口放出やエンドサイトーシスは膜面積の変化を伴うので、膜容量測定からこれらの現象を電気的に推定することができる。

膜容量測定法の原理

　全細胞記録(whole-cell clamp recording)の電気的等価回路モデルには、アクセスコンダクタンス(Gs)、膜コンダクタンス(Gm)、膜容量(Cm)の3つの定数がある。これらの定数は、正弦波状の膜電位固定を行った時、電流記録の、振幅、位相、保持電流の3つの定数から推定することができる。市販されているパッチクランプ増幅器の ”sine+DC” 法を用いると、この測定は正確かつ自動的に行われる[2]。一方、オンセル記録(cell-attached patch recording)では、パッチ膜にで起きた開口放出の小胞膜容量(Cm)と融合細孔のコンダクタンス(g)の2つのパラメータを、正弦波膜電流の大きさと位相の2つから求めることができる[3]。パッチ膜以外の細胞膜のインピーダンスはパッチ膜に比して低すぎるので無視されると考えられ、パッチ膜のインピーダンス変化だけが捉えられる。この場合、単一小胞に由来する小さな膜容量変化を捉えるためには高周波（10-50kHz）で膜電位固定をするのが有利なのでADコンバータによるサンプリングでは間に合わず、ロックインアンプでアナログ信号処理を行うことが行われる。このオンセルパッチは分泌細胞だけでなくシナプス終末に応用することができる[4]。

膜容量測定法の長所と短所

　この測定は、電気的であるために、ミリ秒近くの速さや0.02 fF (直径50nmの小胞) の微小な変化も測定可能である。実際、オンセル記録では単一小胞の開口放出やエンドサイトーシスがステップ状に計測することができ、その大きさが分泌小胞やエンドサイトーシスに関わる小胞の電子顕微鏡的な大きさと一致する。その場合、膜融合や分裂の際に形成される安定な中間段階と考えられている融合細孔の性質を調べることができる。また、シナプスのミリ秒の開口放出の定量化も可能である。膜容量測定の原理からすると理想的な空間的膜電位固定（space clamp）がかかっている必要があるが、記録する終末に軸索がついているような標本にも応用が試みられている[5]。この場合、高周波正弦波が軸索に沿って著しく減衰するので、記録している単一終末の開口放出やエンドサイトーシスを選択的に記録できると考えられている。

　一方、測定は開口放出による膜面積の増大とエンドサイトーシスによる膜面積の減少の和を見ており、これらを分離することは原理的に不可能である。また、単一小胞のステップが見えない場合には、小胞の種類を特定することができない[6]。膜面積当たりの膜容量一定の仮定がどれだけ厳密に成り立っているのか検証する方法がない。軸索がついている標本の場合には空間固定が理想的にはなされ得ないことを考慮する必要がある。そして、画像による開口放出の検出と異なり、開口放出の最終段階のみ、及びエンドサイトーシスの初期段階のみが測定可能である。この様な短所はあるものの、電気生理学固有のシグナル／ノイズ比の良さや時間分解の高さがあり、開口放出やエンドサイトーシスの研究の一手法として今後も用いられていくであろう。

関連項目

参考文献

  1. ↑ Neher, E., & Marty, A. (1982).
    Discrete changes of cell membrane capacitance observed under conditions of enhanced secretion in bovine adrenal chromaffin cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 79(21), 6712-6. [PubMed:6959149] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  2. ↑ Gillis, K.D. (2000).
    Admittance-based measurement of membrane capacitance using the EPC-9 patch-clamp amplifier. Pflugers Archiv : European journal of physiology, 439(5), 655-64. [PubMed:10764227] [WorldCat] [DOI]
  3. ↑ Breckenridge, L.J., & Almers, W. (1987).
    Currents through the fusion pore that forms during exocytosis of a secretory vesicle. Nature, 328(6133), 814-7. [PubMed:2442614] [WorldCat] [DOI]
  4. ↑ He, L., Xue, L., Xu, J., McNeil, B.D., Bai, L., Melicoff, E., ..., & Wu, L.G. (2009).
    Compound vesicle fusion increases quantal size and potentiates synaptic transmission. Nature, 459(7243), 93-7. [PubMed:19279571] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  5. ↑ He, L., Xue, L., Xu, J., McNeil, B.D., Bai, L., Melicoff, E., ..., & Wu, L.G. (2009).
    Compound vesicle fusion increases quantal size and potentiates synaptic transmission. Nature, 459(7243), 93-7. [PubMed:19279571] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  6. ↑ Liu, T.T., Kishimoto, T., Hatakeyama, H., Nemoto, T., Takahashi, N., & Kasai, H. (2005).
    Exocytosis and endocytosis of small vesicles in PC12 cells studied with TEPIQ (two-photon extracellular polar-tracer imaging-based quantification) analysis. The Journal of physiology, 568(Pt 3), 917-29. [PubMed:16150796] [PMC] [WorldCat] [DOI]
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