シナプシン

山肩葉子
生理学研究所生体情報研究系神経シグナル研究部門
DOI：10.14931/bsd.5428　原稿受付日：2014年10月4日　原稿完成日：201x年x月x日
担当編集委員：林　康紀（独立行政法人理化学研究所）

Synapsin I
Structure of the C domain of synapsin IA. PDB rendering based on 1auv.
Available structures PDB 1auv​, 1aux​, 1pk8​, 1px2​
Identifiers
Symbols	SYN1; SYN1a; SYN1b; SYNI
External IDs	OMIM: 313440 MGI: 98460 HomoloGene: 48483 GeneCards: SYN1 Gene
Gene Ontology Molecular function • actin binding • catalytic activity • transporter activity • protein binding • ATP binding • protein kinase binding • calcium-dependent protein binding Cellular component • Golgi apparatus • cytosol • synaptic vesicle • cell junction • dendrite Biological process • synaptic transmission • neurotransmitter secretion • metabolic process Sources: Amigo / QuickGO
RNA expression pattern
More reference expression data
Orthologs
Species	Human	Mouse
Entrez	6853	20964
Ensembl	ENSG00000008056	ENSMUSG00000037217
UniProt	P17600	O88935
RefSeq (mRNA)	NM_006950	NM_001110780
RefSeq (protein)	NP_008881	NP_001104250
Location (UCSC)	Chr X: 47.43 – 47.48 Mb	Chr X: 20.86 – 20.92 Mb
PubMed search	[1]	[2]

Synapsin II
Structure of the C domain of synapsin II. PDB rendering based on 1i7l.
Identifiers
Symbols	SYN2; SYNII; SYNIIa; SYNIIb
External IDs	OMIM: 600755 MGI: 103020 HomoloGene: 49348 GeneCards: SYN2 Gene
Gene Ontology Molecular function • catalytic activity • ATP binding Cellular component • synaptic vesicle • cell junction Biological process • synaptic transmission • neurotransmitter secretion Sources: Amigo / QuickGO
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More reference expression data
Orthologs
Species	Human	Mouse
Entrez	6854	20965
Ensembl	ENSG00000157152	ENSMUSG00000009394
UniProt	Q86VA8	Q64332
RefSeq (mRNA)	NM_003178	NM_001111015
RefSeq (protein)	NP_003169	NP_001104485
Location (UCSC)	Chr 3: 12.05 – 12.23 Mb	Chr 6: 115.13 – 115.28 Mb
PubMed search	[3]	[4]

Synapsin III
Structure of synapsin III C domain in complex with AMPPNP. PDB rendering based on 2p0a.
Available structures PDB 2P0A​
Identifiers
Symbol	SYN3
External IDs	OMIM: 602705 MGI: 1351334 HomoloGene: 68320 GeneCards: SYN3 Gene
Gene Ontology Molecular function • catalytic activity • ATP binding Cellular component • synaptic vesicle • cell junction • synaptic vesicle membrane Biological process • neurotransmitter secretion • metabolic process Sources: Amigo / QuickGO
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Orthologs
Species	Human	Mouse
Entrez	8224	27204
Ensembl	ENSG00000185666	ENSMUSG00000059602
UniProt	O14994	Q8JZP2
RefSeq (mRNA)	NM_001135774	NM_001164495
RefSeq (protein)	NP_001129246	NP_001157967
Location (UCSC)	Chr 22: 32.91 – 33.45 Mb	Chr 10: 86.06 – 86.5 Mb
PubMed search	[5]	[6]

英語名：synapsin

同義語：プロテインI 、II、III

　シナプシンは、神経系に広く分布する非膜貫通型のシナプス小胞結合蛋白質で、神経終末に局在している。系統発生学的に１つの共通遺伝子から派生した遺伝子ファミリーを構成し、哺乳類では３つの遺伝子から成るシナプシンI、II、IIIが存在する。中でも、シナプシンIとIIは、複数のプロテインキナーゼ、フォスファターゼによって刺激依存的にリン酸化・脱リン酸化を受け、その結果、シナプス小胞や細胞骨格蛋白質への結合状態が変化することから、リン酸化によってシナプス小胞の局在を制御する蛋白質として、注目を集めてきた。近年、ノックアウトマウスの解析等から、シナプシンI、IIは、シナプス前においてシナプス小胞の予備のプールを維持・安定化するために不可欠の分子であり、連続刺激の際にシナプス小胞を動員し、シナプス抑圧を制限する上で、重要な役割を果たすことがわかってきた。

シナプシンとは

　シナプシンは、１９７０年代にPaul Greengard教授らのグループが、ラット脳のシナプス膜画分でcAMP依存性プロテインキナーゼ（プロテインキナーゼｰA、PKA）によってリン酸化される主要な蛋白質のひとつとして発見した（Gitler, 2009; Cesca, 2010）。これらのリン酸化蛋白質は、プロテインI、プロテインIIと命名され、さらに、プロテインIIIが見いだされた。このうち、プロテインIとIIIは脳に特異的に発現し、シナプス膜画分、特にシナプス小胞画分に多く存在することから、シナプシンI、IIと改名された。一方、プロテインIIは脳以外にも広く分布し、PKAの調節サブユニットであることが判明した。

　生化学的な蛋白精製の結果、シナプシンIは86kDaと80kDaの２つのアイソフォーム（IaとIb）から、シナプシンIIは74kDaと55kDaの２つのアイソフォーム（IIaとIIb）からなることがわかった。また、シナプトソームを用いて、脱分極刺激など細胞内へのCa2+流入を起こすような刺激や、ドパミン、セロトニン、ノルアドレナリンなど細胞内のcAMPを上昇させるような刺激を与えると、シナプシンI、IIのリン酸化が増大することがわかった。これらリン酸化が、シナプシンのシナプス小胞や細胞骨格蛋白質への結合を劇的に低下させることから、「シナプシンとそのリン酸化によるシナプス小胞の局在の調節」というモデルが提唱された（Greengard, 1993; Hilfiker, 1999）。神経終末におけるシナプス小胞は、形質膜から離れたところに存在する予備のプールと、刺激が到達した際に直ちに放出可能な形質膜直下のプールを含むリサイクルプールとに大別され、予備のプールが80-90%と大部分を占める。上述の古典的モデルでは、特に、Ca2+/カルモジュリン依存性プロテインキナーゼII（CaMKII）によるシナプシンIのリン酸化が、予備のプールから放出可能なプールへのシナプス小胞の移行を促進しているのではないか、と提唱された。

　その後、シナプシンI、II、III遺伝子のノックアウトマウスの作製・解析が進み、近年ではシナプシンI、IIが相補的な役割を果たすと理解され、これらが２量体を形成し、２価性にシナプス小胞に結合して架橋することにより、神経終末においてシナプス小胞の予備のプールを維持・安定化する上で必須の分子であること、またその結果、連続刺激の際に放出可能なシナプス小胞を動員し、シナプス抑圧を制限する上で、特に重要な役割を果たすことがわかってきた（Gitler, 2009; Khvotchev, 2009; Cesca, 2010）。

　リン酸化によるシナプシンの蛋白機能の修飾についても、シナプシンIに特異的なカルボキシル末端側のCaMKIIによるリン酸化よりもむしろ、各シナプシンアイソフォームに共通の、アミノ末端側におけるPKAあるいはCa2+/カルモジュリン依存性プロテインキナーゼI（CaMKI）によるリン酸化に注目が集まりつつある。（Khvotchev, 2009）

　一方、シナプシンIIIは、相同性のある遺伝子の検索によって見いだされたアイソフォームであり、シナプシンI、IIとは局在や発現時期が異なることから、異なる機能を果たすものと考えられる。

アイソフォームとドメイン構造

図１：哺乳類のシナプシン各アイソフォーム（Ia, Ib; IIa, IIb; IIIa）のドメイン構造
左側がアミノ末端、右側がカルボキシル末端。

　シナプシンは系統発生学的によく保存された蛋白質ファミリーで、ほとんどの動物に存在する。無脊椎動物ではその遺伝子は１個だが、ほとんどの脊椎動物では３個となり、シナプシンI、II、IIIに対応する。哺乳類ではそれぞれの遺伝子から選択的スプライシングによって複数のアイソフォーム（Ia-b、IIa-b、IIIa-f）が形成され、そのうち主なものは、シナプシンIa、Ib、IIa、IIb、IIIaの５種類である（Gitler, 2009; Khvotchev, 2009; Cesca, 2010）（図１）。

　各アイソフォームはドメイン構造を示し、アミノ末端側には共通のドメインA、B、Cが存在する。このうち、ドメインAとCはよく保存されており、ドメインBは変動が多い。カルボキシル末端側は、アイソフォーム毎に異なるドメインD〜Jの組み合わせとなっており、このうち、ドメインEをカルボキシル末端に持つものは、aアイソフォームと呼ばれる（シナプシンIa、IIa、IIIa）。

　ドメインAは、すべてのシナプシンに共通するよく保存されたアミノ末端の短い領域で、シナプス小胞膜のリン脂質と直接結合する。また、PKAとCaMKIによってリン酸化される部位（site 1；ラットシナプシンIではSer-9）を含む（図２）。このリン酸化部位は、各アイソフォームに共通して存在し、シナプス小胞への結合を可逆的に調節している。

　ドメインBは、比較的小さなアミノ酸が多く、アイソフォーム間で変動があり、ドメインAとCを繋ぐリンカー部分と考えられている。シナプシンIでは、ここにERK-MAPキナーゼ（ERK1/2- MAPK）によってリン酸化される２カ所の部位（site 4，Ser-62；site 5，Ser-67）が存在する（図２）。

　ドメインCは、大変よく保存された長い領域で、アクチン、スペクトリン、チュブリン、ニューロフィラメントといった細胞骨格蛋白質やシナプス小胞のリン脂質と結合する部分、さらに、シナプシン同士がホモ二量体、あるいはヘテロ二量体を形成するための結合領域を含んでいる。このドメインはATPとも結合し、その結晶構造の解析から、ATPを利用する何らかの酵素機能を持つ可能性が推定されているが、精製したシナプシンI、IIは、いずれもATPを分解しない。

　ドメインDは、シナプシンIに特徴的で、CaMKIIによってリン酸化される２カ所の部位（site 2，Ser-566；site 3，Ser-603）を含む（図２）。さらに、ERK1/2- MAPKとサイクリン依存性キナーゼ（cdk1/5）によってリン酸化される部位（site 6；Ser-549）とそれに隣接したcdk1/5によってリン酸化される部位（site7；Ser-551）が存在する。このドメインは、SH3領域を含む蛋白質と結合する領域やCaMKII、rab3と結合する領域も含んでいる。

　ドメインEは、カルボキシル末端に存在し、シナプシンIa、IIa、IIIaに共通かつ、よく保存されており、シナプシンがシナプス前終末にターゲッティングされるための、重要な要素のひとつと考えられている。また、シナプス小胞の動態に影響を及ぼす領域とも考えられている。

　ドメインFとIは、bアイソフォームのカルボキシル末端を占めるが、その機能はよくわかっていない。

リン酸化とその影響

図２：シナプシンIの主なリン酸化部位とそれぞれに対応するプロテインキナーゼ、フォスファターゼ
Site 1はシナプシン各アイソフォームに共通、site 2-7はシナプシンIに特異的。CaMKI，Ca²⁺/カルモジュリン依存性プロテインキナーゼI；CaMKII，Ca²⁺/カルモジュリン依存性プロテインキナーゼII；cdk5，サイクリン依存性キナーゼ5；MAPK，ERK1/2-MAPキナーゼ；PKA，プロテインキナーゼｰA，cAMP依存性プロテインキナーゼ；PrP2A，プロテインフォスファターゼ2A；PrP2B，プロテインフォスファターゼ2B，カルシニューリン。（Yamagata, 2003より許可を得て改変引用）

　各アイソフォームに共通のPKA/CaMKIによるsite 1のリン酸化は、シナプシンのシナプス小胞膜への結合を阻害し、シナプス小胞から離れやすくする（Greengard, 1993; Hilfiker, 1999; Gitler, 2009; Cesca, 2010）。

　シナプシンI に特異的なCaMKIIによるsite 2、3のリン酸化は、その立体構造を大きく変化させ、アクチン並びにシナプス小胞への結合を大きく低下させる。尚、site 3は、CaMKII以外に、p21活性化キナーゼ（PAK）によってもリン酸化される。

　シナプシンIのERK1/2-MAPKによるリン酸化（site 4，5；site 6）とcdk1/5によるリン酸化（site 6，7）は、シナプシンIによるアクチンの重合促進・アクチンフィラメント同士の結合促進といった作用を低下させる。

　さらに、シナプシンIのドメインCには、Srcによってリン酸化される部位があり（Tyr-301、site 8）、このTyrのリン酸化は、セリン・スレオニンキナーゼによるSerのリン酸化とは逆に、アクチンやシナプス小胞への結合や二量体形成能を促進する方向へ働く。

　上述したセリン・スレオニンキナーゼによるリン酸化については、それぞれ部位特異的に脱リン酸化するフォスファターゼがあることがわかっている（Yamagata, 2003; Cesca, 2010）（図２）。すなわち、site 1、2・3は、プロテインフォスファターゼ2Aによって、site 4・5、6は、プロテインフォスファターゼ2B（カルシニューリン）によって、それぞれ脱リン酸化を受ける。

　シナプトソームに脱分極刺激を行うと、site 1、site 2/3のリン酸化が増大するのに対し、site 4/5、6はリン酸化が減少する。前者はPKA/CaMKI、CaMKIIの活性化、後者はカルシニューリンの活性化によると考えられる。また、脱分極刺激により、シナプシンの大部分がシナプス小胞から離れることから、シナプシンのリン酸化・脱リン酸化は、シナプス小胞の動態を制御する重要な因子であると考えられている（Greengard, 1993; Hilfiker, 1999; Cesca, 2010）。

組織・細胞内局在

　シナプシンは、中枢神経系・末梢神経系に広く分布するが、非神経組織にはほとんど発現していない。シナプシンI、IIは、神経終末に局在し、シナプス小胞に結合しているが、形質膜直下のシナプス小胞よりも、むしろ膜から離れたところにある予備のプールのシナプス小胞に局在している。またその一部は、シナプス小胞から遊離した状態でも存在している。さらにシナプス小胞の中では、グルタミン酸、GABA、ドパミン・セロトニン・ノルアドレナリン、アセチルコリンといった古典的な神経伝達物質を含む小さなシナプス小胞（small synaptic vesicle）の細胞質側の表面に付着しているが、神経ペプチドを含む大きな濃い芯のあるシナプス小胞（large dense-core synaptic vesicle）には存在しない。また、シナプシンは、感覚器官のリボンシナプスを除いて、ほとんどのシナプスに存在し、アイソフォーム毎に異なる分布を示す。シナプシンIIは興奮性グルタミン酸作動性シナプスに、シナプシンIは抑制性GABA作動性シナプスに比較的多い（Hilfiker, 1999; Gitler, 2009; Khvotchev, 2009; Cesca, 2010）。

　一方、シナプシンIIIは細胞体に主に発現し、成長円錐にも発現するが、神経終末には局在しない。シナプシンIIIの一部のアイソフォームは非神経組織にも発現している。

　シナプシンI、IIは、生下時には発現が低く、シナプス形成の時期に一致して増大し、その後成体においても発現が持続するが、シナプシンIIIは、神経発生の早い時期に一過性に増大し、その後は低いレベルにとどまる。

機能

図３：神経終末におけるシナプシンの役割
左は野生型（WT）、右はシナプシンI/II/IIIトリプルノックアウトマウス（TKO）のシナプス前終末の模式図。シナプシン（橙色）はシナプス小胞に２価性に結合し、小胞の可動性を制限し安定化することにより、集合体としての予備のプールの形成に必須であると考えられる（左図）。シナプシンI/II/III TKOでは、予備のプールのシナプス小胞の可動性が高まり、集合体としての構造が崩れてしまう（右図）。予備のプールの維持・安定化は、連続刺激の際に放出可能なシナプス小胞を動員するために重要な役割を果たすと考えられる。但し、シナプシン以外にも、シナプス小胞の可動性を制限し、固定化に貢献する分子が存在する可能性がある（青色）。

シナプス小胞の予備のプールの維持・安定化

　シナプシンI、II、IIIの単体、ダブル、トリプルノックアウトマウス（KO、DKO、TKO）が作製されたが、それらの脳の構造や形態には大きな異常が認められないことから、シナプシンは正常な脳の発達には必ずしも必要ではないと考えられる（Gitler, 2009；Khvotchev, 2009）。

　一方、シナプシンI/II のDKO、シナプシンI/II/IIIのTKOでは、海馬興奮性シナプスにおいて、シナプス小胞の総数が大きく減少し、特にTKOでは、形質膜直下から離れたところに存在する予備のプールのシナプス小胞が選択的に減少していた（Hilfiker, 1999; Gitler, 2009; Cesca, 2010）。これは、ヤツメウナギやイカのシナプスへのシナプシン抗体やドメインEペプチドの注入実験の結果とも一致するものであった。従って、シナプシンはシナプス小胞の予備のプールを維持し、安定化させるために必須の分子であると考えられる。さらに、TKOでは予備のプールのシナプス小胞の可動性が増大し、軸索への拡散傾向が見られたことから、シナプシンは、予備のプールのシナプス小胞の可動性を特異的に制限することにより、集合体としての構造を維持していると考えられる（Orenbuch, 2012）（図３）。

連続刺激の際のシナプス抑圧の制限

　シナプシンI/II DKOやシナプシンI/II/III TKOの海馬興奮性シナプスでは、通常のシナプス伝達には異常が認められなかったが、連続刺激を与えた際に観察されるシナプス抑圧が、野生型の場合よりも遙かに速く起こり、かつ増強していた（Hilfiker, 1999; Gitler, 2009; Cesca, 2010）。これは、連続刺激の際に放出可能なシナプス小胞の補充が追いつかず、その数が不足するために起こるものと考えられる。従って、シナプシンは、通常のシナプス伝達には必ずしも必要ではないが、形質膜から離れた予備の小胞プールを維持することにより、連続刺激の際に放出可能なシナプス小胞を動員し、シナプス抑圧を制限する上で、重要な役割を果たすと考えられる。

リン酸化によるシナプス小胞の動態の制御

　従来、脱分極刺激により、シナプシンの大部分がシナプス小胞から離れることが、カエルの神経筋シナプスやラットのシナプトソーム等で観察されていた（Greengard, 1993; Hilfiger, 1999）。さらに、蛍光ラベルしたシナプシンIaを海馬培養神経細胞に発現させた実験系でも、連続刺激によってシナプシンIがシナプス部から拡散するのが観察されている（Chi, 2001）。このシナプシンIの拡散のスピードは、CaMKII（site 2/3）あるいはPKA（site 1）によるリン酸化部位を非リン酸化型に変異させると遅くなり、またこのとき、シナプス小胞の開口放出のスピードも遅くなった。逆に、シナプシンI/II DKOの海馬培養神経細胞では、連続刺激によるシナプス小胞の開口放出が速くなっており、これらに非リン酸化型のシナプシンIaを発現させると、放出のスピードが遅くなった。これらの結果から、シナプシンは連続刺激の際のシナプス小胞の動態を抑制する調節因子として働き、その機能はリン酸化によってさらに調節されているものと考えられる。 　site 1、site 2/3以外にも、ERK1/2-MAPK・カルシニューリンによるsite 4/5、6のリン酸化・脱リン酸化がシナプス小胞の動態を調節するとされるなど、実際の生体内では、複数のプロテインキナーゼ・フォスファターゼが、複雑に絡み合って制御を行っていると考えられる。

アイソフォーム毎の役割の違い

　シナプシンI/II/III TKOの海馬培養神経細胞にシナプシン各アイソフォームを単体で導入したところ、シナプシンIIaのみが、シナプス小胞の予備のプールとシナプス抑圧を一定程度回復させることができた。従って、シナプシンファミリーの中ではシナプシンIIaがその一義的な役割を担うと考えられる（Gitler, 2008; Gitler, 2009）。

　また、同様の導入実験で各アイソフォームのシナプス前終末へのターゲッティング能を調べたところ、シナプシンIa、IIa、IIb、IIIaは、それぞれ単独でシナプス前終末へのターゲッティングが可能であった。一方、シナプシンIbは単独ではシナプス前終末への局在が見られず、他のアイソフォームとヘテロ二量体を作る必要があったことから、他のアイソフォームの機能を阻害する方向に働く可能性がある（Gitler, 2009）。

抑制性シナプスにおける機能

　シナプシンI/II/III TKOの海馬の抑制性シナプスでは、興奮性シナプスとは異なり、通常のシナプス伝達自体が低下していた。一方、連続刺激の際のシナプス抑制には著変がなかった。また、シナプス小胞の総数が減少していたが、興奮性シナプスとは異なり、予備のプールだけでなく、放出可能プールも含めて全体的に減少していた。従って、興奮性シナプスと抑制性シナプスでは、シナプシンが異なる働きをしていると考えられる（Gitler, 2009; Cesca, 2010）。

シナプシン以外の蛋白質によるシナプス小胞プールの制御の可能性

　前述のように、シナプシンは予備のプールの小胞を固定化することにより、シナプス小胞のプール全体の調節に貢献すると考えられるが、シナプシン自身は、予備のプールとリサイクルプールとの分画には直接関わらない、あるいは、予備のプールからリサイクルプールへの移動には、シナプシン以外の蛋白質のリン酸化が関わっているという説もあり、リサイクルプールの大きさを規定するメカニズムは未だ不明である（Gaffield, 2007; Orenbuch, 2012）。 　さらに、海馬興奮性神経終末の電子線トモグラフィーを用いた三次元再構成によると、シナプス小胞同士を繋ぐ短いフィラメントや、シナプス小胞とシナプス前膜を繋ぐ長いフィラメントが観察され、特に前者はその大きさからシナプシンではないかと考えられていたが、野生型のみならず、シナプシンI/II/III TKOでも観察されたことから、シナプシン以外の蛋白分子もこれら構造物を構成している可能性がある（Siksou, 2007）。

表. シナプシン機能のまとめ

シナプス小胞の可動性を制限することにより、集合体としての予備のプールの構造を維持・安定化する。 シナプス小胞の予備のプールを維持することによって、連続刺激の際に放出へと動員できるシナプス小胞の供給を可能とし、シナプス抑圧を限定的なものとする。 これらの機能は、シナプシンファミリー、特に相補的な働きをするIとIIを含めた全体として考えるべきものであろう。 シナプス小胞の固定化・集合化には、おそらく、ドメインCを介するホモ二量体、ヘテロ二量体の形成により、シナプス小胞を２価性に結合し架橋することが役立っている。 シナプシンI/II/III TKOで障害されたシナプシンの機能を単独で代償できるのがシナプシンIIa のみであることから、各アイソフォームの中では、シナプシンIIaが一義的な役割を果たすものと考えられる。 刺激依存的なシナプシンのリン酸化・脱リン酸化は、シナプシンによるシナプス小胞の可動性の制限、集合体としての予備のプールを安定化させる働きを、さらに調節するものと考えられる。すべてのアイソフォームに共通のsite 1のリン酸化に加えて、シナプシンIに特異的なsite 2/3やsite 4/5、site 6などのリン酸化もこれら修飾に様々な関与をしている可能性がある。 シナプス小胞の架橋・固定化には、シナプシンのみならず、それ以外の蛋白質も関与している可能性がある。

関連語

• シナプス小胞
• シナプス前
• 神経終末
• 神経伝達物質放出
• カルモジュリンキナーゼ

参考文献

１．Gitler, D, Augustine, GJ, Synapsins and regulation of the reserve pool, Encyclopedia of Neurosci, 709-717, 2009. ２．Cesca, F, et al, The synapsins: Key actors of synapse function and plasticity, Progress in Neurobiol, 91: 313-348, 2010. ３．Greengard, P, et al, Synaptic vesicle phosphoproteins and regulation of synaptic function, Science, 259: 780-785, 1993. ４．Hilfiker, S, et al, Synapsins as regulators of neurotransmitter release, Phil Trans R Soc Lond B, 354: 269-279, 1999. ５．Khvotchev, MV, Sun, J, Synapsins, Encyclopedia of Neurosci, 705-708, 2009. ６．Yamagata, Y, New aspects of neurotransmitter release and exocytosis: Dynamic and differential regulation of synapsin I phosphorylation by acute neuronal excitation in vivo, J Pharmacol Sci, 93: 22-29, 2003. ７．Orenbuch, A, at al, Synapsin selectively controls the mobility of resting pool vesicles at hippocampal terminals, J Neurosci, 32: 3969-3980, 2012. ８．Chi, P, et al, Synapsin dispersion and reclustering during synaptic activity, Nat Neurosci, 4: 1187-1193, 2001.) ９．Gitler, D, et al, Synapsin IIa controls the reserve pool of gulamatergic synaptic vesicles, J Neurosci, 28: 10835-10843, 2008. １０．Gaffield, MA, Betz, W, Synaptic vesicle mobility in mouse motor nerve terminals with and without synapsin, J Neurosci, 27: 13691-13700, 2007. １１．Siksou, L, et al, Three-dimensional arcitecture of presynaptic terminal cytomatrix, J Neurosci, 27: 6868-6877, 2007.)