「Notch」の版間の差分

提供：脳科学辞典
ナビゲーションに移動 検索に移動
(ページの作成:「==Notchシグナル伝達（概要）== image:Notch_fig1.png|350px|thumb|'''図1．Notchシグナル伝達'''<br>Notchシグナルは隣接細胞間における膜タ...」)
 
細編集の要約なし
 
(2人の利用者による、間の21版が非表示)
1行目: 1行目:
==Notchシグナル伝達（概要）==
<div align="right"> 
[[image:Notch_fig1.png|350px|thumb|'''図1．Notchシグナル伝達'''<br>Notchシグナルは隣接細胞間における膜タンパク質NotchとDeltaによる相互作用によって伝達されるシグナル伝達経路である。隣接細胞（神経発生過程においてはニューロン）が細胞膜上に発現するDeltaが、神経幹細胞の膜上に発現するNotchと相互作用することによってシグナルが伝達される。Deltaにより活性化されたNotchは膜から切り出され、細胞内ドメイン(NICD)が核内へと輸送され、標的遺伝子（ここではHes遺伝子）の発現を誘導する。]]
<font size="+1">[http://researchmap.jp/7000009419 下條 博美]、[http://researchmap.jp/ryoichirokageyama 影山 龍一郎]</font><br>
''京都大学''<br>
DOI：<selfdoi />　原稿受付日：2016年5月6日　原稿完成日：2018年1月10日<br>
担当編集委員：[http://researchmap.jp/fujiomurakami 村上 富士夫]（大阪大学 大学院生命機能研究科）<br>
</div>
{{box|text=　Notchシグナルは、ショウジョウバエから哺乳動物まで広く保存されたシグナル伝達経路の一つであり、発生過程の様々な組織構築過程において細胞の増殖や分化など細胞の運命決定に機能している。また成体においても組織幹細胞の増殖や分化を制御することで組織・器官の恒常性の維持に寄与しており、Notchシグナル伝達経路が障害されると、様々な発生異常や疾患を引き起こすことが報告されている。Notchタンパク質は進化的に保存された幾つかのモチーフを有した一回膜貫通型タンパク質である。Notchシグナル伝達経路では、細胞膜上に発現するNotchタンパク質と隣接細胞の膜上に発現するNotchリガンド（DeltaやJaggedなど）が直接相互作用することによってシグナルが伝達される。シグナルが伝達された細胞においては、Notchタンパク質が段階的にプロセシングを受け膜上で切り出された細胞内ドメインが核内へと運ばれて下流遺伝子の発現を制御する。}}


　Notchシグナルは、[[ショウジョウバエ]]から[[哺乳動物]]にまで広く保存されたシグナル伝達経路の一つである。このシグナル伝達の特徴は、細胞間の物理的な接触を必要とする近距離間でのシグナル伝達経路である。細胞表面上で起こるNotchリガンド(DeltaやJagged)とNotchとの相互作用によって、Notchタンパク質は[[細胞膜]]から切り出され、Notchの細胞内ドメイン(Notch intra-cellular domain; NICD)は、核内へと輸送される。核内へと運ばれたNICDはRBPj/CSLなどの[[DNA]]結合タンパク質と複合体を作り下流の標的遺伝子の発現を誘導する。この一連のシグナル伝達経路を「カノニカル（canonical）」信号伝達と呼ぶ（図1）3,11,13。
==Notchとは==
[[image:Notch_fig1.png|350px|thumb|'''図1．Notchシグナル伝達'''<br>Notchシグナルは隣接細胞間における膜タンパク質NotchとDeltaによる相互作用によって伝達されるシグナル伝達経路である。隣接細胞（神経発生過程においてはニューロン）が細胞膜上に発現するDeltaが、神経幹細胞の膜上に発現するNotchと相互作用することによってシグナルが伝達される。Deltaにより活性化されたNotchは膜から切り出され、細胞内ドメイン（NICD）が核内へと輸送され、標的遺伝子（ここではHes遺伝子）の発現を誘導する。]]
 
　Notchシグナルは、[[ショウジョウバエ]]から[[哺乳動物]]にまで広く保存された[[シグナル伝達]]経路の一つである。このシグナル伝達の特徴は、細胞間の物理的な接触を必要とする近距離間でのシグナル伝達経路である。
 
　細胞表面上で起こる[[Notchリガンド]]（[[Delta]]や[[Jagged]]）とNotchとの相互作用によって、Notchタンパク質が[[細胞膜]]から切り出される。Notchの細胞内ドメイン（Notch intra-cellular domain; NICD）は、核内へと輸送され、RBPj/CSLなどの[[DNA]]結合タンパク質と複合体を作り下流の標的遺伝子の発現を誘導する。この一連のシグナル伝達経路を「カノニカル（canonical）」信号伝達と呼ぶ（図1）<ref name=ref3><pubmed>16921404</pubmed></ref> <ref name=ref11><pubmed>19379690</pubmed></ref> <ref name=ref13><pubmed>16429119</pubmed></ref>。


==構造==
==構造==
[[image:Notch_fig2.png|350px|thumb|'''図2．哺乳動物Notch1タンパク分子の構造'''<br>Notch1は、細胞外領域から順番に、(1)EGFリピート、(2)LNR (Lin12-Notch repeat)、(3) NRR (negative regulatory region)、(4) 膜貫通ドメイン、(5)RAMドメイン、(6)アンキリンリピート、(7)核移行ドメイン、(8)PESTドメインにより構成される大きな分子である。]]
[[image:Notch_fig2.png|350px|thumb|'''図2．哺乳動物Notch1タンパク分子の構造'''<br>Notch1は、細胞外領域から順番に、（1）EGFリピート、（2）LNR （Lin12-Notch repeat）、（3）NRR（negative regulatory region）、（4）膜貫通ドメイン、（5）RAMドメイン、（6）アンキリンリピート、（7）核移行ドメイン、（8）PESTドメインにより構成される大きな分子である。]]
 
　Notchは1回膜貫通型タンパク質である。


　巨大な分子構造を持つNotchタンパク質には生物種間で保存された幾つかのモチーフがある。細胞外領域（N末端側）から列記する（図2）3,13。
　巨大な分子構造を持つNotchタンパク質には生物種間で保存された幾つかのモチーフがある。細胞外領域（N末端側）から列記する（図2）<ref name=ref3 /><ref name=ref13 />。
#'''[[EGF]]リピート : [[epidermal growth factor]] (EGF)-like repeats'''<br>Notchレセプターの細胞外ドメインには、29〜36個のタンデムにつながったEGFリピートがあり、この領域でリガンドと相互作用する。隣接細胞間とのシグナル伝達（trans-interactions）は、11番目と12番目のEGFリピートによってなされる。また、同一細胞内におけるリガンド分子との相互作用（cis-inhibition）においては、24〜29番目のEGFリピートを介して起こる。EGFリピートの多くは[[カルシウムイオン]]と結合することが知られているが、これらの[[カルシウム]][[イオン]]はNotchレセプターの構造やリガンド分子との親和性を制御することによって、シグナル伝達効率を制御していると考えられている5,17。
#'''[[EGF]]リピート ([[epidermal growth factor]] (EGF)-like repeats)'''　Notchレセプターの細胞外ドメインには、29〜36個のタンデムにつながったEGFリピートがあり、この領域でリガンドと相互作用する。隣接細胞間とのシグナル伝達（''trans''-interactions）は、11番目と12番目のEGFリピートによってなされる。また、同一細胞内におけるリガンド分子との相互作用（''cis''-inhibition）においては、24〜29番目のEGFリピートを介して起こる。EGFリピートの多くは[[カルシウムイオン]]と結合することが知られているが、これらのカルシウムイオンはNotchレセプターの構造やリガンド分子との親和性を制御することによって、シグナル伝達効率を制御していると考えられている<ref name=ref5><pubmed>18296446</pubmed></ref><ref name=ref17><pubmed>14712268</pubmed></ref>。
#'''LNR（Lin12-Notch repeat）'''　EGFリピートの後に続くリピート配列。NRRに含まれる。
#'''NRR (negative regulatory region)'''　LNR（Lin12-Notch repeat）およびHDドメイン（heterodimerization domain）より成る。リガンドがない状態でレセプターが活性化するのを抑制している。
#'''膜貫通ドメイン (transmembrane domain; TMD)'''
#'''RAMドメイン (RBPjκ association module domain)'''　核内へ運ばれた後、DNA結合タンパク質であるCSL（CBF1/RBPjκ/Su(H)/Lag-1）に強く結合する領域。
#'''アンキリンリピート (ankyrin repeats, ANK domain)'''　7つのアンキリン配列が連なった領域。CSLと結合しコアクチベーターであるMastermind/Lag-3をリクルートする。
#'''核移行配列 (nuclear localization sequences, NLS）'''
#'''PEST配列 (proline/glutamic acid/serine/threonine-rich motives, PEST)'''　分解促進配列。NICDの安定性を制御する。


#'''LNR (Lin12-Notch repeat)'''<br>EGFリピートの後に続くリピート配列。NRRに含まれる。
==ファミリー==
#'''NRR: negative regulatory region'''<br>LNR (Lin12-Notch repeat)およびHDドメイン(heterodimerization domain)より成る。リガンドがない状態でレセプターが活性化するのを抑制している。
　ショウジョウバエ（Drosophila melanogaster）では1種類のNotchレセプター（Notch）があるのに対し、[[線虫]]（[[Caenorhabditis elegans]]）では2種類のNotchレセプター（[[LIN12]], [[GLP1]]）、[[哺乳類]]では4種類のNotchパラログ（[[Notch1]]-[[Notch4|4]]）が報告されている。
#'''膜貫通ドメイン：transmembrane domain (TMD)'''
#'''RAMドメイン：RBPjκ association module domain'''<br>核内へ運ばれた後、DNA結合タンパク質であるCSL(CBF1/RBPjκ/Su(H)/Lag-1)に強く結合する領域。
#'''アンキリンリピート：ankyrin repeats (ANK domain)'''<br>7つのアンキリン配列が連なった領域。CSLと結合しコアクチベーターであるMastermind/Lag-3をリクルートする。
#'''核移行配列：nuclear localization sequences (NLS)'''
#'''PEST配列：proline/glutamic acid/serine/threonine-rich motifes (PEST)'''<br>分解促進配列。NICDの安定性を制御する。


==Notchレセプターの種類==
== 発現 ==
　Notchレセプターは1回膜貫通型タンパク質である。ショウジョウバエ（Drosophila melanogaster）では1種類のNotchレセプター(Notch)があるのに対し、[[線虫]]（[[Caenorhabditis elegans]]）では2種類のNotchレセプター(LIN12, GLP1)、哺乳[[動物]]では4種類のNotchパラログ(Notch1-4)が報告されている。
　発生期神経組織および成体脳において、[[神経幹細胞]]および[[神経前駆細胞]]に発現が認められる。機能タンパク質は細胞膜上に発現する。


==機能==
==機能==
===Notchレセプターのプロセシング：成熟過程===
[[ファイル:Notch fig3.png|サムネイル|400px|右|'''図３　Notchタンパク質の発現とプロセシング過程'''<br>
　Notchレセプターの活性化にはタンパク質分解過程が連続的に起こることが重要である3,11。
'''（A）'''Notchタンパク質は合成後、ゴルジ体や細胞膜上でさまざまな翻訳後修飾やプロセシングを受け、活性化する。<br>
'''（B）'''Notchタンパク質はプロセシングを受けることで活性化する。(a)ゴルジ体ではFurinによるS1サイトの最初の切断を受ける。(b)細胞膜上において、ADAMタンパク質分解酵素によるS2サイトの切断。(c)続いてγセクレターゼによるS3/S4サイトの切断によりNotch細胞内ドメインは活性化され、核内へと運ばれる。<br>]]
===活性化とプロセシング===
　Notchレセプターの活性化にはタンパク質分解過程が連続的に起こることが重要である<ref name=ref3 /> <ref name=ref11 />。
 
#'''S1 cleavage: Furin cleavage'''　Notchレセプタータンパク質が[[翻訳]]され細胞膜へと輸送される間に、Notchタンパク質は[[ゴルジ装置]]へと運ばれ、[[Furin]]によって最初の切断をうける。この過程によってNotchレセプターはS1（site1）部分で半分に切断される。切り出された二つの領域は、HDドメインにて非共有結合によって結合したヘテロ二量体を形成する。ヘテロ二量体となったNotchレセプターは細胞表面へと輸送され、細胞外ドメインを外に出してリガンド分子との相互作用に備える。
#'''S2 cleavage: [[ADAM]] cleavage'''　Notchレセプターと隣接細胞上のリガンドとの相互作用は、[[ADAM]]（[[a disintegrin and metaloprotease]]）タンパク質分解酵素による切断を誘導する。ADAMタンパク質分解酵素による切断は、S2領域で起こる。この領域はNRRドメインによって普段は奥まった場所に位置しており保護されている。この切断のプロセスはNotchシグナル伝達において重要なステップである。
#'''S3/S4 cleavage: γ-secretase cleavage'''　ADAMタンパク質分解酵素によるNotchレセプターの細胞外領域における切断は、次に[[γセクレターゼ]]による分解を誘導する。これによって生じた膜に繋がれたNotchの細胞内ドメインは、Notch extracellular truncation（NEXT）と呼ばれる。γセクレターゼは膜内タンパク質分解酵素であり<ref name=ref22><pubmed>15326347</pubmed></ref>、NEXTを膜貫通ドメイン（TMD）のS3およびS4の領域で切断する。γセクレターゼの切断が起こらないと、NICDの核内への輸送は起こらない。NICDは核内へと運ばれた後、[[RBPj]]/[[CSL]]と結合し、コアクチベーターと複合体を形成して、[[転写因子]]群の転写を活性化する。


#'''S1 cleavage: Furin cleavage'''<br>Notchレセプタータンパク質が[[翻訳]]され細胞膜へと輸送される間に、Notchタンパク質は[[ゴルジ装置]]へと運ばれ、Furinによって最初の切断をうける。この過程によってNotchレセプターはS1 (site1)部分で半分に切断される。切り出された二つの領域は、HDドメインにて非共有結合によって結合したヘテロ二量体を形成する。ヘテロ二量体となったNotchレセプターは細胞表面へと輸送され、細胞外ドメインを外に出してリガンド分子との相互作用に備える。
===標的遺伝子===
#'''S2 cleavage: [[ADAM]] cleavage'''<br>Notchレセプターと隣接細胞上のリガンドとの相互作用は、ADAM (a disintegrin and metaloprotease) タンパク質分解酵素による切断を誘導する。ADAMタンパク質分解酵素による切断は、S2領域で起こる。この領域はNRRドメインによって普段は奥まった場所に位置しており保護されている。この切断のプロセスはNotchシグナル伝達において重要なステップである。
　哺乳動物の神経系におけるNotchシグナルの標的遺伝子は、[[bHLH]]型[[抑制性]]転写因子をコードする[[HESファミリー|Hesファミリー]]遺伝子（[[Hes1]], [[Hes5]]）<ref name=ref15><pubmed>10205173</pubmed></ref>および[[Hes-related]]遺伝子（[[Hey1]], [[Hey2]]）<ref name=ref19><pubmed>12947105</pubmed></ref>が報告されている。Hesファミリー遺伝子は神経[[分化]]を誘導する[[プロニューラル遺伝子]]（[[Ascl1]]や[[Neurogenin]]）の発現や機能を抑制することによって、幹細胞がニューロンへと分化しないように機能している。また、[[BLBP]]（[[brain lipid-binding protein]]）もNotchシグナルによって直接制御されていることが報告されている<ref name=ref1><pubmed>15879553</pubmed></ref>。
#'''S3/S4 cleavage: γ-secretase cleavage'''<br>ADAMタンパク質分解酵素によるNotchレセプターの細胞外領域における切断（これによって生じた膜に繋がれたNotchの細胞内ドメインは、Notch extracellular truncation (NEXT)と呼ばれる）は、次にγセクレターゼによる分解を誘導する。γセクレターゼは膜内タンパク質分解酵素であり22、NEXTを膜貫通ドメイン(TMD)のS3およびS4の領域で切断する。γセクレターゼの切断が起こらないと、NICDの核内への輸送は起こらない。NICDは核内へと運ばれた後、RBPj/CSLと結合し、コアクチベーターと複合体を形成して、[[転写因子]]群の転写を活性化する。


===Notchシグナルの標的遺伝子===
===神経発生における役割===
　哺乳動物の神経系におけるNotchシグナルの標的遺伝子は、[[bHLH]]型[[抑制性]]転写因子をコードする[[HESファミリー|Hesファミリー]]遺伝子([[Hes1]], [[Hes5]])15および[[Hes]]-related遺伝子(Hey1, Hey2)19が報告されている。[[Hesファミリー]]遺伝子は神経[[分化]]を誘導するプロニューラル遺伝子（Ascl1やNeurogenin）の発現や機能を抑制することによって、幹細胞がニューロンへと分化しないように機能している。また、[[BLBP]]([[brain lipid-binding protein]])もNotchシグナルによって直接制御されていることが報告されている1。
　哺乳動物の神経発生においてNotchシグナルは、[[神経幹細胞]]の維持に重要な機能を果たしている。また発生過程の網膜において[[ミュラーグリア]]への運命決定に寄与するなど、[[グリア細胞]]の運命決定にもNotchが寄与している。


===神経発生におけるNotchシグナル伝達の役割===
　さらに中枢神経系において、[[zona limitans intrathalamica]] ([[Zli]])、峡部 (中脳・菱脳境界背側部のくびれた部位; [[Isthmus]]）、[[底板]]、[[蓋板]]といった領域の境界を形成する構造の形成にも機能していることが報告されている<ref name=ref2><pubmed>16728479</pubmed></ref> <ref name=ref4><pubmed>15068793</pubmed></ref>。
　哺乳動物の神経発生においてNotchシグナルは、[[神経幹細胞]]の維持に重要な機能を果たしている。また発生過程の網膜において[[ミュラーグリア]]への運命決定に寄与するなど、[[グリア細胞]]の運命決定にもNotchが寄与している。さらに中枢神経系において、Zli、Isthmus、Floor plate、[[Roof plate]]といった領域の境界を形成する構造の形成にも機能していることが報告されている2,4。
====神経幹細胞維持====
====神経幹細胞維持のためのNotchシグナル====
　隣接細胞が発現する[[Delta]]によって活性化されたNotchレセプターは、細胞膜上でレセプターのタンパク質が切り出され、細胞内ドメイン（NICD: Notch intracellular domain）が核内へと移行しNotchシグナルが活性化される。NICDの過剰発現により神経幹細胞からのニューロン分化は抑制される。また、Notchシグナルが活性化された細胞においては、bHLH型抑制性転写因子Hes1、Hes5が発現し、これらの因子がプロニューラル遺伝子の発現や機能を抑制することによって、幹細胞の未分化性を維持している<ref name=ref10><pubmed>7909512</pubmed></ref> <ref name=ref16><pubmed>11399758</pubmed></ref> <ref name=ref19 />。
　隣接細胞が発現するDeltaによって活性化されたNotchレセプターは、細胞膜上でレセプターのタンパク質が切り出され、細胞内ドメイン(NICD: Notch intracellular domain)が核内へと移行しNotchシグナルが活性化される。NICDの過剰発現により神経幹細胞からのニューロン分化は抑制される。また、Notchシグナルが活性化された細胞においては、bHLH型抑制性転写因子Hes1、Hes5が発現し、これらの因子がプロニューラル遺伝子の発現や機能を抑制することによって、幹細胞の未分化性を維持している10,16,19。
====グリア細胞分化====
====グリア細胞分化のためのNotchシグナル====
　[[神経幹細胞]]から神経細胞が分化した後、Notchシグナルは[[グリア]]細胞の分化に寄与していることが報告されている。発生過程の[[網膜]]においてHes1の過剰発現によりミュラーグリアの産生が亢進されるのに対して、Hes1の[[ドミナントネガティブ]]による機能阻害によって、産生されるグリアの数が減少する<ref name=ref6><pubmed>10839357</pubmed></ref>。またHes5の過剰発現、欠損による実験においても同様の結果が報告されている<ref name=ref9><pubmed>10821751</pubmed></ref>。
　神経幹細胞から神経細胞が分化した後、Notchシグナルは[[グリア]]細胞の分化に寄与していることが報告されている。発生過程の網膜においてHes1の過剰発現によりミュラーグリアの産生が亢進されるのに対して、Hes1の[[ドミナントネガティブ]]による機能阻害によって、産生されるグリアの数が減少する6。またHes5の過剰発現、欠損による実験においても同様の結果が報告されている9。


==Notchシグナル関連疾患==
==疾患との関連==
　Notchシグナル伝達は発生過程および成体の幹細胞維持において重要な機能を果たしているため、このシグナル伝達における欠陥は様々な疾患を引き起こすことが知られている。
　Notchシグナル伝達は発生過程および成体の幹細胞維持において重要な機能を果たしているため、このシグナル伝達における欠陥は様々な疾患を引き起こすことが知られている。


発生過程における疾患7,8
{| class="wikitable"
*Alagille synorome
|+表. Notchシグナル伝達が関与する疾患
*Tetralogy of Fallot
|-
*Syndactyly
| colspan="2"|'''発生過程における疾患'''<ref name=ref7><pubmed>16025100</pubmed></ref> <ref name=ref8><pubmed>12668592</pubmed></ref>  <ref name=ref27959635 ><pubmed>27959635</pubmed></ref>
*Spondylocostal dysostosis
|-
Familial aortic valve disease
|[[wj:アラジール症候群|アラジール症候群]]||Notch2, Jagged1の機能低下
 
|-
成体における疾患12
|[[wj:合指症|合指症]]||
*CADASIL
|-
*Cerebral autosomal dominant arteriopathy
|[[wj:脊椎肋骨異骨症|脊椎肋骨異骨症]]||Dll3の機能低下
*With subcortical infarcts and leukoencephalopathy
|-
 
|[[wj:大動脈二尖弁|大動脈二尖弁]] (Biscuspid aortic valve)：[[wj:大動脈弁膜症|大動脈弁膜症]]||Notch1の機能欠損、機能低下
癌14,18,20,21
|-
*T cell acute lymphoblastic leukemia
|colspan="2"| '''成体における疾患'''<ref name=ref12><pubmed>16508299</pubmed></ref><ref name=ref27959635 />
*Colon cancer
|-
*Curb tumor angiogenesis
|[[皮質下梗塞および白質脳症を伴う常染色体優性脳動脈症]] ([[Cerebral autosomal dominant arteriopathy with subcortical infarcts and leukoencephalopathy]], [[CADASIL]])||Notch3の機能異常および機能低下、欠損
|-
|[[wj:Hajdu-Cheney症候群|Hajdu-Cheney症候群]]（末節骨の骨吸収、進行性骨粗鬆症、頭蓋骨の変形）||Notch2の機能異常、分解異常
|-
|[[wj:Adams-Oliver症候群|Adams-Oliver症候群]]|||Notch1, RBPj, Dll4の機能欠損、機能低下
|-
|colspan="2"|'''その他'''<ref name=ref14><pubmed>17183313</pubmed></ref> <ref name=ref18><pubmed>17183323</pubmed></ref> <ref name=ref20><pubmed>15959515</pubmed></ref> <ref name=ref21><pubmed>15326347</pubmed></ref>
|-
|[[wj:T細胞急性リンパ芽球性白血病|T細胞急性リンパ芽球性白血病]]||Notch1の活性型変異、機能異常
|-
|[[wj:大腸ガン|大腸ガン]]||
|}


==参考文献==
==参考文献==
<references />
<references />

2018年1月10日 (水) 21:52時点における最新版

下條 博美、影山 龍一郎
京都大学
DOI：10.14931/bsd.7111　原稿受付日：2016年5月6日　原稿完成日：2018年1月10日
担当編集委員：村上 富士夫（大阪大学 大学院生命機能研究科）

　Notchシグナルは、ショウジョウバエから哺乳動物まで広く保存されたシグナル伝達経路の一つであり、発生過程の様々な組織構築過程において細胞の増殖や分化など細胞の運命決定に機能している。また成体においても組織幹細胞の増殖や分化を制御することで組織・器官の恒常性の維持に寄与しており、Notchシグナル伝達経路が障害されると、様々な発生異常や疾患を引き起こすことが報告されている。Notchタンパク質は進化的に保存された幾つかのモチーフを有した一回膜貫通型タンパク質である。Notchシグナル伝達経路では、細胞膜上に発現するNotchタンパク質と隣接細胞の膜上に発現するNotchリガンド（DeltaやJaggedなど）が直接相互作用することによってシグナルが伝達される。シグナルが伝達された細胞においては、Notchタンパク質が段階的にプロセシングを受け膜上で切り出された細胞内ドメインが核内へと運ばれて下流遺伝子の発現を制御する。

Notchとは

図1．Notchシグナル伝達
Notchシグナルは隣接細胞間における膜タンパク質NotchとDeltaによる相互作用によって伝達されるシグナル伝達経路である。隣接細胞（神経発生過程においてはニューロン）が細胞膜上に発現するDeltaが、神経幹細胞の膜上に発現するNotchと相互作用することによってシグナルが伝達される。Deltaにより活性化されたNotchは膜から切り出され、細胞内ドメイン（NICD）が核内へと輸送され、標的遺伝子（ここではHes遺伝子）の発現を誘導する。

　Notchシグナルは、ショウジョウバエから哺乳動物にまで広く保存されたシグナル伝達経路の一つである。このシグナル伝達の特徴は、細胞間の物理的な接触を必要とする近距離間でのシグナル伝達経路である。

　細胞表面上で起こるNotchリガンド（DeltaやJagged）とNotchとの相互作用によって、Notchタンパク質が細胞膜から切り出される。Notchの細胞内ドメイン（Notch intra-cellular domain; NICD）は、核内へと輸送され、RBPj/CSLなどのDNA結合タンパク質と複合体を作り下流の標的遺伝子の発現を誘導する。この一連のシグナル伝達経路を「カノニカル（canonical）」信号伝達と呼ぶ（図1）[1] [2] [3]。

構造

図2．哺乳動物Notch1タンパク分子の構造
Notch1は、細胞外領域から順番に、（1）EGFリピート、（2）LNR （Lin12-Notch repeat）、（3）NRR（negative regulatory region）、（4）膜貫通ドメイン、（5）RAMドメイン、（6）アンキリンリピート、（7）核移行ドメイン、（8）PESTドメインにより構成される大きな分子である。

　Notchは1回膜貫通型タンパク質である。

　巨大な分子構造を持つNotchタンパク質には生物種間で保存された幾つかのモチーフがある。細胞外領域（N末端側）から列記する（図2）[1][3]。

  1. EGFリピート (epidermal growth factor (EGF)-like repeats)　Notchレセプターの細胞外ドメインには、29〜36個のタンデムにつながったEGFリピートがあり、この領域でリガンドと相互作用する。隣接細胞間とのシグナル伝達（trans-interactions）は、11番目と12番目のEGFリピートによってなされる。また、同一細胞内におけるリガンド分子との相互作用（cis-inhibition）においては、24〜29番目のEGFリピートを介して起こる。EGFリピートの多くはカルシウムイオンと結合することが知られているが、これらのカルシウムイオンはNotchレセプターの構造やリガンド分子との親和性を制御することによって、シグナル伝達効率を制御していると考えられている[4][5]。
  2. LNR（Lin12-Notch repeat）　EGFリピートの後に続くリピート配列。NRRに含まれる。
  3. NRR (negative regulatory region)　LNR（Lin12-Notch repeat）およびHDドメイン（heterodimerization domain）より成る。リガンドがない状態でレセプターが活性化するのを抑制している。
  4. 膜貫通ドメイン (transmembrane domain; TMD)
  5. RAMドメイン (RBPjκ association module domain)　核内へ運ばれた後、DNA結合タンパク質であるCSL（CBF1/RBPjκ/Su(H)/Lag-1）に強く結合する領域。
  6. アンキリンリピート (ankyrin repeats, ANK domain)　7つのアンキリン配列が連なった領域。CSLと結合しコアクチベーターであるMastermind/Lag-3をリクルートする。
  7. 核移行配列 (nuclear localization sequences, NLS）
  8. PEST配列 (proline/glutamic acid/serine/threonine-rich motives, PEST)　分解促進配列。NICDの安定性を制御する。

ファミリー

　ショウジョウバエ（Drosophila melanogaster）では1種類のNotchレセプター（Notch）があるのに対し、線虫（Caenorhabditis elegans）では2種類のNotchレセプター（LIN12, GLP1）、哺乳類では4種類のNotchパラログ（Notch1-4）が報告されている。

発現

　発生期神経組織および成体脳において、神経幹細胞および神経前駆細胞に発現が認められる。機能タンパク質は細胞膜上に発現する。

機能

図３　Notchタンパク質の発現とプロセシング過程
（A）Notchタンパク質は合成後、ゴルジ体や細胞膜上でさまざまな翻訳後修飾やプロセシングを受け、活性化する。
（B）Notchタンパク質はプロセシングを受けることで活性化する。(a)ゴルジ体ではFurinによるS1サイトの最初の切断を受ける。(b)細胞膜上において、ADAMタンパク質分解酵素によるS2サイトの切断。(c)続いてγセクレターゼによるS3/S4サイトの切断によりNotch細胞内ドメインは活性化され、核内へと運ばれる。

活性化とプロセシング

　Notchレセプターの活性化にはタンパク質分解過程が連続的に起こることが重要である[1] [2]。

  1. S1 cleavage: Furin cleavage　Notchレセプタータンパク質が翻訳され細胞膜へと輸送される間に、Notchタンパク質はゴルジ装置へと運ばれ、Furinによって最初の切断をうける。この過程によってNotchレセプターはS1（site1）部分で半分に切断される。切り出された二つの領域は、HDドメインにて非共有結合によって結合したヘテロ二量体を形成する。ヘテロ二量体となったNotchレセプターは細胞表面へと輸送され、細胞外ドメインを外に出してリガンド分子との相互作用に備える。
  2. S2 cleavage: ADAM cleavage　Notchレセプターと隣接細胞上のリガンドとの相互作用は、ADAM（a disintegrin and metaloprotease）タンパク質分解酵素による切断を誘導する。ADAMタンパク質分解酵素による切断は、S2領域で起こる。この領域はNRRドメインによって普段は奥まった場所に位置しており保護されている。この切断のプロセスはNotchシグナル伝達において重要なステップである。
  3. S3/S4 cleavage: γ-secretase cleavage　ADAMタンパク質分解酵素によるNotchレセプターの細胞外領域における切断は、次にγセクレターゼによる分解を誘導する。これによって生じた膜に繋がれたNotchの細胞内ドメインは、Notch extracellular truncation（NEXT）と呼ばれる。γセクレターゼは膜内タンパク質分解酵素であり[6]、NEXTを膜貫通ドメイン（TMD）のS3およびS4の領域で切断する。γセクレターゼの切断が起こらないと、NICDの核内への輸送は起こらない。NICDは核内へと運ばれた後、RBPj/CSLと結合し、コアクチベーターと複合体を形成して、転写因子群の転写を活性化する。

標的遺伝子

　哺乳動物の神経系におけるNotchシグナルの標的遺伝子は、bHLH型抑制性転写因子をコードするHesファミリー遺伝子（Hes1, Hes5）[7]およびHes-related遺伝子（Hey1, Hey2）[8]が報告されている。Hesファミリー遺伝子は神経分化を誘導するプロニューラル遺伝子（Ascl1やNeurogenin）の発現や機能を抑制することによって、幹細胞がニューロンへと分化しないように機能している。また、BLBP（brain lipid-binding protein）もNotchシグナルによって直接制御されていることが報告されている[9]。

神経発生における役割

　哺乳動物の神経発生においてNotchシグナルは、神経幹細胞の維持に重要な機能を果たしている。また発生過程の網膜においてミュラーグリアへの運命決定に寄与するなど、グリア細胞の運命決定にもNotchが寄与している。

　さらに中枢神経系において、zona limitans intrathalamica (Zli)、峡部 (中脳・菱脳境界背側部のくびれた部位; Isthmus）、底板、蓋板といった領域の境界を形成する構造の形成にも機能していることが報告されている[10] [11]。

神経幹細胞維持

　隣接細胞が発現するDeltaによって活性化されたNotchレセプターは、細胞膜上でレセプターのタンパク質が切り出され、細胞内ドメイン（NICD: Notch intracellular domain）が核内へと移行しNotchシグナルが活性化される。NICDの過剰発現により神経幹細胞からのニューロン分化は抑制される。また、Notchシグナルが活性化された細胞においては、bHLH型抑制性転写因子Hes1、Hes5が発現し、これらの因子がプロニューラル遺伝子の発現や機能を抑制することによって、幹細胞の未分化性を維持している[12] [13] [8]。

グリア細胞分化

　神経幹細胞から神経細胞が分化した後、Notchシグナルはグリア細胞の分化に寄与していることが報告されている。発生過程の網膜においてHes1の過剰発現によりミュラーグリアの産生が亢進されるのに対して、Hes1のドミナントネガティブによる機能阻害によって、産生されるグリアの数が減少する[14]。またHes5の過剰発現、欠損による実験においても同様の結果が報告されている[15]。

疾患との関連

　Notchシグナル伝達は発生過程および成体の幹細胞維持において重要な機能を果たしているため、このシグナル伝達における欠陥は様々な疾患を引き起こすことが知られている。

表. Notchシグナル伝達が関与する疾患
発生過程における疾患[16] [17] [18]
アラジール症候群 Notch2, Jagged1の機能低下
合指症
脊椎肋骨異骨症 Dll3の機能低下
大動脈二尖弁 (Biscuspid aortic valve)：大動脈弁膜症 Notch1の機能欠損、機能低下
成体における疾患[19][18]
皮質下梗塞および白質脳症を伴う常染色体優性脳動脈症 (Cerebral autosomal dominant arteriopathy with subcortical infarcts and leukoencephalopathy, CADASIL) Notch3の機能異常および機能低下、欠損
Hajdu-Cheney症候群（末節骨の骨吸収、進行性骨粗鬆症、頭蓋骨の変形） Notch2の機能異常、分解異常
Adams-Oliver症候群 Notch1, RBPj, Dll4の機能欠損、機能低下
その他[20] [21] [22] [23]
T細胞急性リンパ芽球性白血病 Notch1の活性型変異、機能異常
大腸ガン

参考文献

  1. ↑ 1.0 1.1 1.2 Bray, S.J. (2006).
    Notch signalling: a simple pathway becomes complex. Nature reviews. Molecular cell biology, 7(9), 678-89. [PubMed:16921404] [WorldCat] [DOI]
  2. ↑ 2.0 2.1 Kopan, R., & Ilagan, M.X. (2009).
    The canonical Notch signaling pathway: unfolding the activation mechanism. Cell, 137(2), 216-33. [PubMed:19379690] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  3. ↑ 3.0 3.1 Louvi, A., & Artavanis-Tsakonas, S. (2006).
    Notch signalling in vertebrate neural development. Nature reviews. Neuroscience, 7(2), 93-102. [PubMed:16429119] [WorldCat] [DOI]
  4. ↑ Cordle, J., Redfieldz, C., Stacey, M., van der Merwe, P.A., Willis, A.C., Champion, B.R., ..., & Handford, P.A. (2008).
    Localization of the delta-like-1-binding site in human Notch-1 and its modulation by calcium affinity. The Journal of biological chemistry, 283(17), 11785-93. [PubMed:18296446] [WorldCat] [DOI]
  5. ↑ Raya, A., Kawakami, Y., Rodríguez-Esteban, C., Ibañes, M., Rasskin-Gutman, D., Rodríguez-León, J., ..., & Izpisúa Belmonte, J.C. (2004).
    Notch activity acts as a sensor for extracellular calcium during vertebrate left-right determination. Nature, 427(6970), 121-8. [PubMed:14712268] [WorldCat] [DOI]
  6. ↑ Wolfe, M.S., & Kopan, R. (2004).
    Intramembrane proteolysis: theme and variations. Science (New York, N.Y.), 305(5687), 1119-23. [PubMed:15326347] [WorldCat] [DOI]
  7. ↑ Ohtsuka, T., Ishibashi, M., Gradwohl, G., Nakanishi, S., Guillemot, F., & Kageyama, R. (1999).
    Hes1 and Hes5 as notch effectors in mammalian neuronal differentiation. The EMBO journal, 18(8), 2196-207. [PubMed:10205173] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  8. ↑ 8.0 8.1 Sakamoto, M., Hirata, H., Ohtsuka, T., Bessho, Y., & Kageyama, R. (2003).
    The basic helix-loop-helix genes Hesr1/Hey1 and Hesr2/Hey2 regulate maintenance of neural precursor cells in the brain. The Journal of biological chemistry, 278(45), 44808-15. [PubMed:12947105] [WorldCat] [DOI]
  9. ↑ Anthony, T.E., Mason, H.A., Gridley, T., Fishell, G., & Heintz, N. (2005).
    Brain lipid-binding protein is a direct target of Notch signaling in radial glial cells. Genes & development, 19(9), 1028-33. [PubMed:15879553] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  10. ↑ Baek, J.H., Hatakeyama, J., Sakamoto, S., Ohtsuka, T., & Kageyama, R. (2006).
    Persistent and high levels of Hes1 expression regulate boundary formation in the developing central nervous system. Development (Cambridge, England), 133(13), 2467-76. [PubMed:16728479] [WorldCat] [DOI]
  11. ↑ Cheng, Y.C., Amoyel, M., Qiu, X., Jiang, Y.J., Xu, Q., & Wilkinson, D.G. (2004).
    Notch activation regulates the segregation and differentiation of rhombomere boundary cells in the zebrafish hindbrain. Developmental cell, 6(4), 539-50. [PubMed:15068793] [WorldCat]
  12. ↑ Ishibashi, M., Moriyoshi, K., Sasai, Y., Shiota, K., Nakanishi, S., & Kageyama, R. (1994).
    Persistent expression of helix-loop-helix factor HES-1 prevents mammalian neural differentiation in the central nervous system. The EMBO journal, 13(8), 1799-805. [PubMed:7909512] [PMC] [WorldCat]
  13. ↑ Ohtsuka, T., Sakamoto, M., Guillemot, F., & Kageyama, R. (2001).
    Roles of the basic helix-loop-helix genes Hes1 and Hes5 in expansion of neural stem cells of the developing brain. The Journal of biological chemistry, 276(32), 30467-74. [PubMed:11399758] [WorldCat] [DOI]
  14. ↑ Furukawa, T., Mukherjee, S., Bao, Z.Z., Morrow, E.M., & Cepko, C.L. (2000).
    rax, Hes1, and notch1 promote the formation of Müller glia by postnatal retinal progenitor cells. Neuron, 26(2), 383-94. [PubMed:10839357] [WorldCat] [DOI]
  15. ↑ Hojo, M., Ohtsuka, T., Hashimoto, N., Gradwohl, G., Guillemot, F., & Kageyama, R. (2000).
    Glial cell fate specification modulated by the bHLH gene Hes5 in mouse retina. Development (Cambridge, England), 127(12), 2515-22. [PubMed:10821751] [WorldCat]
  16. ↑ Garg, V., Muth, A.N., Ransom, J.F., Schluterman, M.K., Barnes, R., King, I.N., ..., & Srivastava, D. (2005).
    Mutations in NOTCH1 cause aortic valve disease. Nature, 437(7056), 270-4. [PubMed:16025100] [WorldCat] [DOI]
  17. ↑ Gridley, T. (2003).
    Notch signaling and inherited disease syndromes. Human molecular genetics, 12 Spec No 1, R9-13. [PubMed:12668592] [WorldCat] [DOI]
  18. ↑ 18.0 18.1 Aster, J.C., Pear, W.S., & Blacklow, S.C. (2017).
    The Varied Roles of Notch in Cancer. Annual review of pathology, 12, 245-275. [PubMed:27959635] [PMC] [WorldCat] [DOI]
  19. ↑ Louvi, A., Arboleda-Velasquez, J.F., & Artavanis-Tsakonas, S. (2006).
    CADASIL: a critical look at a Notch disease. Developmental neuroscience, 28(1-2), 5-12. [PubMed:16508299] [WorldCat] [DOI]
  20. ↑ Noguera-Troise, I., Daly, C., Papadopoulos, N.J., Coetzee, S., Boland, P., Gale, N.W., ..., & Thurston, G. (2006).
    Blockade of Dll4 inhibits tumour growth by promoting non-productive angiogenesis. Nature, 444(7122), 1032-7. [PubMed:17183313] [WorldCat] [DOI]
  21. ↑ Ridgway, J., Zhang, G., Wu, Y., Stawicki, S., Liang, W.C., Chanthery, Y., ..., & Yan, M. (2006).
    Inhibition of Dll4 signalling inhibits tumour growth by deregulating angiogenesis. Nature, 444(7122), 1083-7. [PubMed:17183323] [WorldCat] [DOI]
  22. ↑ van Es, J.H., van Gijn, M.E., Riccio, O., van den Born, M., Vooijs, M., Begthel, H., ..., & Clevers, H. (2005).
    Notch/gamma-secretase inhibition turns proliferative cells in intestinal crypts and adenomas into goblet cells. Nature, 435(7044), 959-63. [PubMed:15959515] [WorldCat] [DOI]
  23. ↑ Wolfe, M.S., & Kopan, R. (2004).
    Intramembrane proteolysis: theme and variations. Science (New York, N.Y.), 305(5687), 1119-23. [PubMed:15326347] [WorldCat] [DOI]
「https://bsd.neuroinf.jp/w/index.php?title=Notch&oldid=37898」から取得