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ページの作成:「軸索起始部(axon initial segment, AIS)は、細胞体の近傍にある無髄の軸索領域であり、電位依存性 Naイオンチャネルや骨格分子が高密度に集積することによって、神経細胞における活動電位の起点として働くとともに、細胞体・樹状突起分子の軸索への侵入を防ぐことで神経細胞の極性維持の役割を担っている。 軸索起始部(AIS)は、細胞体と軸索を…」
 
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軸索起始部(axon initial segment, AIS)は、細胞体の近傍にある無髄の軸索領域であり、電位依存性 Naイオンチャネルや骨格分子が高密度に集積することによって、神経細胞における活動電位の起点として働くとともに、細胞体・樹状突起分子の軸索への侵入を防ぐことで神経細胞の極性維持の役割を担っている。


英:axon initial segment 独:Axoninitialsegment 仏:segment initial de l'axone <br>
英略称:AIS


軸索起始部(AIS)は、細胞体と軸索を分ける長さ10~60 µmの無髄領域であり、軸索小丘(axon hillock)の遠位に位置し、軸索初節とも呼ばれる。AISにはイオンチャネルや接着分子などの膜タンパク質、足場タンパク質、骨格分子が高密度に集積しており、このことが神経細胞の出力生成や極性維持を可能にしている<ref name=Kole2012><pubmed>22284179</pubmed></ref>(1)。AISは従来、電子顕微鏡で観察される束化した微小管や細胞膜の裏打ち構造といった超微細構造によって定義されていたが、現在は電位依存性Naチャネルの足場タンパク質であるAnkyrinG(AnkG)が集積する領域として分子レベルで定義されている。AISとランビエ絞輪は分子構築がよく似ており、進化的に関連すると考えられている。これらの構造は480 kDaのankyrinGを獲得した脊椎動物から見られ、AISは無顎類(約500万年前)以降、ランビエ絞輪は顎口類(約440万年前)以降に出現することが知られている<ref name=Jenkins2015><pubmed>25552556</pubmed></ref>
{{box|text= 軸索起始部は、細胞体の近傍にある無髄の軸索領域であり、電位依存性 Naイオンチャネルや骨格分子が高密度に集積することによって、神経細胞における活動電位の起点として働くとともに、細胞体・樹状突起分子の軸索への侵入を防ぐことで神経細胞の極性維持の役割を担っている。}}
(2)。


分子
== 軸索起始部とは ==
分子構築
 軸索起始部は、細胞体と軸索を分ける長さ10~60 µmの無髄領域であり、軸索小丘(axon hillock)の遠位に位置し、軸索初節とも呼ばれる。軸索起始部にはイオンチャネルや接着分子などの膜タンパク質、足場タンパク質、骨格分子が高密度に集積しており、このことが神経細胞の出力生成や極性維持を可能にしている<ref name=Kole2012><pubmed>22284179</pubmed></ref>(1)。軸索起始部は従来、電子顕微鏡で観察される束化した微小管や細胞膜の裏打ち構造といった超微細構造によって定義されていたが、現在は電位依存性Naチャネルの足場タンパク質であるAnkyrinG(AnkG)が集積する領域として分子レベルで定義されている。軸索起始部とランビエ絞輪は分子構築がよく似ており、進化的に関連すると考えられている。これらの構造は480 kDaのankyrinGを獲得した脊椎動物から見られ、軸索起始部は無顎類(約500万年前)以降、ランビエ絞輪は顎口類(約440万年前)以降に出現することが知られている<ref name=Jenkins2015><pubmed>25552556</pubmed></ref>(2)。
AISでは、Naチャネルを始めとしたイオンチャネル、足場タンパク質(AnkG、PSD93)、細胞骨格(IV/II spectrin、アクチン、微小管)、接着分子(NF 186、NrCAM、ADAM22、Caspr2、Tag1)が分子複合体を形成している。近年の超解像顕微鏡技術の進歩により、アクチンは細胞膜をリング状に裏打ちし、IV/II spectrinのヘテロ四量体がこれらを繋ぐことで190 nm周期の格子構造をとることが示されている<ref name=Xu2013><pubmed>23239625</pubmed></ref><ref name=Leterrier2018><pubmed>29378864</pubmed></ref>(3, 4)(図1)。Naチャネルは足場であるAnkGと結合することで、IV/II spectrinを介してアクチンリングに固定され、NF 186を介して細胞外基質(Brevican、Versican)に結合し、さらにEB1//EB3を介して束化した微小管とも結合しており、このことがNaチャネルのAISへの集積を可能にしている。AnkGはAISの形成と維持に最も重要な分子であり、AnkGの欠失によりAISは消失する<ref name=Hedstrom2007><pubmed>17724124</pubmed></ref><ref name=Sobotzik2009><pubmed>19805161</pubmed></ref>(5, 6)。


イオンチャネル
== 分子 ==
AISには様々なイオンチャネルが局在し、その種類や分布は神経細胞の出力様式を決める重要な要素である<ref name=Lorincz2008><pubmed>19118165</pubmed></ref><ref name=Jenkins2025><pubmed>39480263</pubmed></ref>(7,8)。
=== 分子構築 ===
AISのNaチャネルとしては、Nav1.1、Nav1.2、Nav1.6の3つのサブタイプが知られる。Nav1.6は全ての神経細胞に発現し、活性化の閾値も低いことから活動電位の発生を担う最も重要なチャネルといえる。一方、Nav1.1とNav1.2はそれぞれ抑制性細胞と興奮性細胞に発現する。これらのチャネルはAISの近位部に局在し、活動電位の樹状突起への逆行性伝播を増強する。
 軸索起始部では、Naチャネルを始めとしたイオンチャネル、足場タンパク質(AnkG、PSD93)、細胞骨格(&beta;IV/&alpha;II spectrin、アクチン、微小管)、接着分子(NF 186、NrCAM、ADAM22、Caspr2、Tag1)が分子複合体を形成している。近年の超解像顕微鏡技術の進歩により、アクチンは細胞膜をリング状に裏打ちし、&beta;IV/&alpha;II spectrinのヘテロ四量体がこれらを繋ぐことで190 nm周期の格子構造をとることが示されている<ref name=Xu2013><pubmed>23239625</pubmed></ref><ref name=Leterrier2018><pubmed>29378864</pubmed></ref>(3, 4)(図1)。Naチャネルは足場であるAnkGと結合することで、&beta;IV/&alpha;II spectrinを介してアクチンリングに固定され、NF 186を介して細胞外基質(Brevican、Versican)に結合し、さらにEB1//EB3を介して束化した微小管とも結合しており、このことがNaチャネルの軸索起始部への集積を可能にしている。AnkGは軸索起始部の形成と維持に最も重要な分子であり、AnkGの欠失により軸索起始部は消失する<ref name=Hedstrom2007><pubmed>17724124</pubmed></ref><ref name=Sobotzik2009><pubmed>19805161</pubmed></ref>(5, 6)。
AISのKチャネルとしては、Kv1(Kv1.1、1.2)、Kv7(Kv7.2、7.3)、K2Pチャネル(TRAAK、TREK-1)などが知られる。これらのチャネルは静止膜電位付近でも活性化しており、短絡コンダクタンスとして活動電位の発生を抑える一方で、静止膜電位を維持することでNavチャネルの不活性化を防ぐ働きをもつ。
AISのCaチャネルとしては、Cav2(Cav2.1、Cav2.2、Cav2.3)、Cav3(Cav3.2)が知られる。Cav2.1やCav2.2は活性化の閾値が高く、BKチャネルを活性化させることで活動電位の再分極相を加速させるのに対して、Cav2.3やCav3.2は活性化の閾値が低く、後脱分極を増強することで持続的な発火を生じる。
大脳皮質や海馬の錐体細胞では、AISにGABA作動性の軸索終末が軸索-軸索シナプスを形成する<ref name=Howard2005><pubmed>15927687</pubmed></ref>(9)。これらの神経細胞のAISではK-Cl共輸送体(KCC2)の発現が低いため、AISでのGABAA受容体の活性化はAIS局所の脱分極を生じるが、一方で、短絡コンダクタンスを増すため活動電位の発生は抑制される<ref name=Szabadics2006><pubmed>16410524</pubmed></ref>(10)。小脳のプルキンエ細胞のAISにもGABA作動性の軸索終末が分布するが、シナプスは形成されない<ref name=Howard2005><pubmed>15927687</pubmed></ref>(9)。この他AISに局在するチャネルや受容体として、HCNチャネル、5HT1受容体、P2Y受容体、D2受容体などの報告がある<ref name=Jenkins2025><pubmed>39480263</pubmed></ref>(8)。


機能
=== イオンチャネル ===
活動電位発生
 軸索起始部には様々なイオンチャネルが局在し、その種類や分布は神経細胞の出力様式を決める重要な要素である<ref name=Lorincz2008><pubmed>19118165</pubmed></ref><ref name=Jenkins2025><pubmed>39480263</pubmed></ref>(7,8)。
AISは活動電位の発生に適した特性をもつ<ref name=Kole2012><pubmed>22284179</pubmed></ref>(1)。まず、AISは細胞体の近くにあるため、樹状突起や細胞体に入力するシナプス電流の電荷が届きやすい。また、AISは微細な構造であるため、僅かな電荷でも電位が大きく変化する。さらに、AISにはNaチャネルが高密度に分布するため、活動電位の発生閾値が特に低い。これらの特性により、AISは神経細胞における活動電位の起点として働く。
活動電位がAISで発生するという考えは、1950年代に行われた脊髄運動ニューロンでの細胞内電気記録の実験結果に基づいている<ref name=Coombs1957><pubmed>13492209</pubmed></ref><ref name=Debanne2011><pubmed>21527732</pubmed></ref>(11, 12)。この実験では、細胞体で記録される活動電位が軸索に由来する成分(ISスパイク)と細胞体に由来する成分(SDスパイク)の2つの成分からなり、ISスパイクはSDスパイクに先行することが示された。このことは、シナプス入力が活動電位を軸索で最初に発生させたのち、この活動電位が逆行性に軸索を細胞体へ伝播することによって、細胞体の活動電位が生じることを意味している。1990年代に、一部の神経細胞では樹状突起に強い入力を与えた際に樹状突起が活動電位の起点となり得ることが報告されたものの、その後、単一軸索からのパッチクランプ記録、Naイメージングや膜電位イメージングを用いた実験によって、生理的条件下ではAISが活動電位の起点であることが示された。錐体細胞では、AISから細胞体へと伝播した活動電位はさらに樹状突起へ伝播し、シナプス応答を修飾する。


恒常的可塑性
 軸索起始部のNaチャネルとしては、Nav1.1、Nav1.2、Nav1.6の3つのサブタイプが知られる。Nav1.6は全ての神経細胞に発現し、活性化の閾値も低いことから活動電位の発生を担う最も重要なチャネルといえる。一方、Nav1.1とNav1.2はそれぞれ抑制性細胞と興奮性細胞に発現する。これらのチャネルは軸索起始部の近位部に局在し、活動電位の樹状突起への逆行性伝播を増強する。
AISの長さや軸索上の位置は神経活動の変化に応じて可塑的に変化し、この変化は恒常的可塑性として神経活動をネガティブフィードバックに調節する<ref name=Grubb2010><pubmed>20543823</pubmed></ref><ref name=Kuba2010><pubmed>20543822</pubmed></ref>(13, 14)。AIS可塑性におけるAISの変化は細胞種によって異なる。例えば、発達期の視覚野や聴覚神経核では感覚入力によってAISの長さが短縮する<ref name=Gutzmann2014><pubmed>24672466</pubmed></ref><ref name=Akter2020><pubmed>32719016</pubmed></ref>(15, 16)。一方、海馬の分散培養標本では脱分極によってAISの位置が細胞体から離れる<ref name=Grubb2010><pubmed>20543823</pubmed></ref>(13)。また、嗅球では脱分極によってAISの位置が興奮性細胞と抑制性細胞で逆の変化を示し、興奮性細胞では細胞体から離れるのに対して、抑制性細胞では細胞体に近づく<ref name=Chand2015><pubmed>25632134</pubmed></ref>(17)。AIS可塑性は神経細胞の興奮性が亢進するてんかんなどの病態でもみられる<ref name=Harty2013><pubmed>23602553</pubmed></ref>(18)。
軸索起始部のKチャネルとしては、Kv1(Kv1.1、1.2)、Kv7(Kv7.2、7.3)、K2Pチャネル(TRAAK、TREK-1)などが知られる。これらのチャネルは静止膜電位付近でも活性化しており、短絡コンダクタンスとして活動電位の発生を抑える一方で、静止膜電位を維持することでNavチャネルの不活性化を防ぐ働きをもつ。
AIS可塑性は数時間から数日にわたる緩徐な変化であり、これはAISの分子構築の再編を反映すると考えられている。AIS可塑性にはCaチャネルを介した細胞内Caイオンの濃度変化が重要である。AIS可塑性に関わる分子としては、カルシニューリンやサイクリン依存性キナーゼ5(cdk5)が知られる<ref name=Evans2013><pubmed>23595753</pubmed></ref><ref name=Trunova2011><pubmed>21775591</pubmed></ref><ref name=Jahan2023><pubmed>36639893</pubmed></ref>(19-21)。これら分子がAISの分布を変化させるしくみは分かっていないが、エンドサイトーシスや微小管の再編が関わると考えられている。


極性維持
 軸索起始部のCaチャネルとしては、Cav2(Cav2.1、Cav2.2、Cav2.3)、Cav3(Cav3.2)が知られる。Cav2.1やCav2.2は活性化の閾値が高く、BKチャネルを活性化させることで活動電位の再分極相を加速させるのに対して、Cav2.3やCav3.2は活性化の閾値が低く、後脱分極を増強することで持続的な発火を生じる。
AISは、細胞体・樹状突起分子の軸索への侵入を防ぐ分子バリアとして働くことで神経細胞の極性を維持する。この分子バリアには膜拡散と細胞内輸送の2つのしくみが関わり、AnkGはこの両方において重要な役割を担うと考えられている<ref name=Huang2018><pubmed>29749636</pubmed></ref><ref name=Fréal2025><pubmed>39947181</pubmed></ref>(22, 23)。このため、海馬や小脳の神経細胞ではAnkGの欠失によってAISが消失し、さらに軸索にはスパインやシナプス後肥厚のような樹状突起の性質がみられるようになる<ref name=Hedstrom2007><pubmed>17724124</pubmed></ref><ref name=Sobotzik2009><pubmed>19805161</pubmed></ref>(5, 6)。膜拡散のバリアとしては、細胞膜直下のAnkG-IV spectrin-アクチンからなる細胞骨格に結合したイオンチャネルや接着分子などの膜貫通タンパク質が物理的に側方拡散を妨げる「ピケットフェンスモデル」が有力である<ref name=Nakada2003><pubmed>12819789</pubmed></ref>(24)。一方、細胞内輸送によるバリアとしては、ミオシンVaとアクチンパッチによる細胞体・樹状突起分子の輸送制御、EB1/3を介した微小管へのAnkG結合による軸索輸送の障害、微小管結合タンパク質であるMAP2やMAP6による順行性輸送の制御、ダイニン結調節因子であるNdel1による逆行性輸送の制御などの説がある<ref name=Huang2018><pubmed>29749636</pubmed></ref>
 
 大脳皮質や海馬の錐体細胞では、軸索起始部にGABA作動性の軸索終末が軸索-軸索シナプスを形成する<ref name=Howard2005><pubmed>15927687</pubmed></ref>(9)。これらの神経細胞の軸索起始部ではK-Cl共輸送体(KCC2)の発現が低いため、軸索起始部でのGABAA受容体の活性化は軸索起始部局所の脱分極を生じるが、一方で、短絡コンダクタンスを増すため活動電位の発生は抑制される<ref name=Szabadics2006><pubmed>16410524</pubmed></ref>(10)。小脳のプルキンエ細胞の軸索起始部にもGABA作動性の軸索終末が分布するが、シナプスは形成されない<ref name=Howard2005><pubmed>15927687</pubmed></ref>(9)。この他軸索起始部に局在するチャネルや受容体として、HCNチャネル、5HT1受容体、P2Y受容体、D2受容体などの報告がある<ref name=Jenkins2025><pubmed>39480263</pubmed></ref>(8)。
 
== 機能 ==
=== 活動電位発生 ===
 軸索起始部は活動電位の発生に適した特性をもつ<ref name=Kole2012><pubmed>22284179</pubmed></ref>(1)。まず、軸索起始部は細胞体の近くにあるため、樹状突起や細胞体に入力するシナプス電流の電荷が届きやすい。また、軸索起始部は微細な構造であるため、僅かな電荷でも電位が大きく変化する。さらに、軸索起始部にはNaチャネルが高密度に分布するため、活動電位の発生閾値が特に低い。これらの特性により、軸索起始部は神経細胞における活動電位の起点として働く。
 
 活動電位が軸索起始部で発生するという考えは、1950年代に行われた脊髄運動ニューロンでの細胞内電気記録の実験結果に基づいている<ref name=Coombs1957><pubmed>13492209</pubmed></ref><ref name=Debanne2011><pubmed>21527732</pubmed></ref>(11, 12)。この実験では、細胞体で記録される活動電位が軸索に由来する成分(ISスパイク)と細胞体に由来する成分(SDスパイク)の2つの成分からなり、ISスパイクはSDスパイクに先行することが示された。このことは、シナプス入力が活動電位を軸索で最初に発生させたのち、この活動電位が逆行性に軸索を細胞体へ伝播することによって、細胞体の活動電位が生じることを意味している。1990年代に、一部の神経細胞では樹状突起に強い入力を与えた際に樹状突起が活動電位の起点となり得ることが報告されたものの、その後、単一軸索からのパッチクランプ記録、Naイメージングや膜電位イメージングを用いた実験によって、生理的条件下では軸索起始部が活動電位の起点であることが示された。錐体細胞では、軸索起始部から細胞体へと伝播した活動電位はさらに樹状突起へ伝播し、シナプス応答を修飾する。
 
=== 恒常的可塑性 ===
 軸索起始部の長さや軸索上の位置は神経活動の変化に応じて可塑的に変化し、この変化は恒常的可塑性として神経活動をネガティブフィードバックに調節する<ref name=Grubb2010><pubmed>20543823</pubmed></ref><ref name=Kuba2010><pubmed>20543822</pubmed></ref>(13, 14)。軸索起始部可塑性における軸索起始部の変化は細胞種によって異なる。例えば、発達期の視覚野や聴覚神経核では感覚入力によって軸索起始部の長さが短縮する<ref name=Gutzmann2014><pubmed>24672466</pubmed></ref><ref name=Akter2020><pubmed>32719016</pubmed></ref>(15, 16)。一方、海馬の分散培養標本では脱分極によって軸索起始部の位置が細胞体から離れる<ref name=Grubb2010><pubmed>20543823</pubmed></ref>(13)。また、嗅球では脱分極によって軸索起始部の位置が興奮性細胞と抑制性細胞で逆の変化を示し、興奮性細胞では細胞体から離れるのに対して、抑制性細胞では細胞体に近づく<ref name=Chand2015><pubmed>25632134</pubmed></ref>(17)。軸索起始部可塑性は神経細胞の興奮性が亢進するてんかんなどの病態でもみられる<ref name=Harty2013><pubmed>23602553</pubmed></ref>(18)。
軸索起始部可塑性は数時間から数日にわたる緩徐な変化であり、これは軸索起始部の分子構築の再編を反映すると考えられている。軸索起始部可塑性にはCaチャネルを介した細胞内Caイオンの濃度変化が重要である。軸索起始部可塑性に関わる分子としては、カルシニューリンやサイクリン依存性キナーゼ5(cdk5)が知られる<ref name=Evans2013><pubmed>23595753</pubmed></ref><ref name=Trunova2011><pubmed>21775591</pubmed></ref><ref name=Jahan2023><pubmed>36639893</pubmed></ref>(19-21)。これら分子が軸索起始部の分布を変化させるしくみは分かっていないが、エンドサイトーシスや微小管の再編が関わると考えられている。
 
=== 極性維持 ===
 軸索起始部は、細胞体・樹状突起分子の軸索への侵入を防ぐ分子バリアとして働くことで神経細胞の極性を維持する。この分子バリアには膜拡散と細胞内輸送の2つのしくみが関わり、AnkGはこの両方において重要な役割を担うと考えられている<ref name=Huang2018><pubmed>29749636</pubmed></ref><ref name=Fréal2025><pubmed>39947181</pubmed></ref>(22, 23)。このため、海馬や小脳の神経細胞ではAnkGの欠失によって軸索起始部が消失し、さらに軸索にはスパインやシナプス後肥厚のような樹状突起の性質がみられるようになる<ref name=Hedstrom2007><pubmed>17724124</pubmed></ref><ref name=Sobotzik2009><pubmed>19805161</pubmed></ref>(5, 6)。膜拡散のバリアとしては、細胞膜直下のAnkG-&beta;IV spectrin-アクチンからなる細胞骨格に結合したイオンチャネルや接着分子などの膜貫通タンパク質が物理的に側方拡散を妨げる「ピケットフェンスモデル」が有力である<ref name=Nakada2003><pubmed>12819789</pubmed></ref>(24)。一方、細胞内輸送によるバリアとしては、ミオシンVaとアクチンパッチによる細胞体・樹状突起分子の輸送制御、EB1/3を介した微小管へのAnkG結合による軸索輸送の障害、微小管結合タンパク質であるMAP2やMAP6による順行性輸送の制御、ダイニン結調節因子であるNdel1による逆行性輸送の制御などの説がある<ref name=Huang2018><pubmed>29749636</pubmed></ref>
<ref name=Fréal2025><pubmed>39947181</pubmed></ref>
<ref name=Fréal2025><pubmed>39947181</pubmed></ref>
(22, 23)。
(22, 23)。


疾患
== 疾患との関わり ==
AISを構成するイオンチャネルや骨格分子の異常は様々な精神神経疾患を引き起こす<ref name=Huang2018><pubmed>29749636</pubmed></ref><ref name=Buffington2011><pubmed>22103418</pubmed></ref>(22, 25)。例えば、AISに局在するNav1.1、Nav1.2、Nav1.6、Kv7.2、Kv7.3などのイオンチャネルには多くの変異が知られ、これらはてんかんの発症と密接に関連する。AnkGはGWASにより双極性障害のリスク遺伝子とされ、AnkGの発現が低下したマウスでは精神疾患関連行動が生じる。また、AnkGのexon1b欠損マウスでは抑制性神経細胞のAISにNaチャネルが集積できず、双極性障害様行動、てんかん、突然死を示す。さらに、AnkGの変異は知的障害、統合失調症、自閉スペクトラム症とも関連する。一方、IV spectrinの欠損や変異では運動障害や聴覚障害が認められ、II spectrinの変異では早期乳児てんかん脳症、知的障害がみられる。AIS構造の変化は、アンジェルマン症候群やアルツハイマー病、自己免疫性脱髄疾患、外傷性脳損傷、虚血性障害などでもみられ、これらは神経細胞の過興奮や機能障害を伴う。
 軸索起始部を構成するイオンチャネルや骨格分子の異常は様々な精神神経疾患を引き起こす<ref name=Huang2018><pubmed>29749636</pubmed></ref><ref name=Buffington2011><pubmed>22103418</pubmed></ref>(22, 25)。例えば、軸索起始部に局在するNav1.1、Nav1.2、Nav1.6、Kv7.2、Kv7.3などのイオンチャネルには多くの変異が知られ、これらはてんかんの発症と密接に関連する。AnkGはGWASにより双極性障害のリスク遺伝子とされ、AnkGの発現が低下したマウスでは精神疾患関連行動が生じる。また、AnkGのexon1b欠損マウスでは抑制性神経細胞の軸索起始部にNaチャネルが集積できず、双極性障害様行動、てんかん、突然死を示す。さらに、AnkGの変異は知的障害、統合失調症、自閉スペクトラム症とも関連する。一方、&beta;IV spectrinの欠損や変異では運動障害や聴覚障害が認められ、&alpha;II spectrinの変異では早期乳児てんかん脳症、知的障害がみられる。軸索起始部構造の変化は、アンジェルマン症候群やアルツハイマー病、自己免疫性脱髄疾患、外傷性脳損傷、虚血性障害などでもみられ、これらは神経細胞の過興奮や機能障害を伴う。


文献
== 参考文献 ==