有毛細胞
英語名:Hair cell 独:Haarzelle 仏:cellule ciliée
有毛細胞は聴覚、前庭覚、さらに魚類では側線器官の受容器細胞である。音、加速度、重力場での体軸方向などの感覚を電気信号に変換する事で、我々の脳神経回路が感覚情報として取り扱える形にする。感覚毛が頂部に生えており、感覚刺激によって引き起こされる感覚毛のわずかな偏位を刺激として受容する。
分布
内耳の蝸牛器官にはコルチ器官が、あぶみ骨に面した基部から中心部分の頂部まで全長に亘り存在する。有毛細胞はコルチ器官の基底膜上に複数の支持細胞と共に存在する。ほ乳類の場合、有毛細胞は内有毛細胞と外有毛細胞の2種類に分類される。XXX(編集コメント:動物種?)ではおよそ3,500個の内有毛細胞が蝸牛軸の近くに1列の細胞群として分布する。その外側にはおよそ20,000個の外有毛細胞が3ないし4列存在する。(編集コメント:コルチ器官の説明から始まっておりましたが、有毛細胞の項目ですので、有毛細胞を中心に記述いたしました。また耳石器や半規管、魚の側線にも存在する事をご記述ください。また、図があればと思います。)
機械刺激の受容
有毛細胞は頂部に感覚毛を持つ。感覚毛は数10本の不動毛と1本の動毛(動毛は無い場合もある)で構成される。感覚毛に加わる微小な機械刺激が電気信号に変換される[1]。(編集コメント:音刺激の受容における葢膜の役割などについてはいかがでしょうか。)
感覚毛に局在する機械受容器チャネルもCa2+に対する透過性が高く[2]TRPチャネルの1種と考えられているがクローニングには成功していない。内リンパ液(編集コメント:説明がいるかと思います)の高いK+イオン濃度により生理的にはK+イオンが受容器電流を運ぶ。感覚毛の生えている有毛細胞体頂部の内外ではK+イオン濃度がほぼ等しいと考えられK+イオンの平衡電位は0 mVとされる。また内リンパ腔(中心階)は+80 mV程度の内リンパ腔電位をもつ。この電位と静止膜電位(-60 mV程度)の差(170 mV)が機械受容器チャンネルを通るK+イオンの駆動力となり、内向きK+電流を生ずる事で有毛細胞は機械刺激に応じて脱分極する[3]。
シナプス伝達
有毛細胞体の基底部には求心性神経終末がリボンシナプスを作る。リボンシナプス構造により音刺激に対応して安定して高い頻度の伝達物質放出が実現される[4]。有毛細胞の脱分極は側壁膜のL型カルシウムチャネル (Cav1.3)を活性化し[5] [6]、流入するCa2+イオンが神経伝達物質であるグルタミン酸を放出する[7][8][9]。
内有毛細胞体のリボンシナプスは大きさが蝸牛軸側(内側面)と支持細胞である柱細胞側(外側面)とで異なる。蝸牛軸側には構造の大きなリボンシナプスが形成され、柱細胞側には小さなリボンシナプスが形成される。シナプス構造の違いは聴神経の自発発火頻度および閾値の違いに対応する。発火特性の異なる数10本の聴神経が1個の内有毛細胞にシナプス形成する事により広い音圧域に対応した応答特性が実現される事が議論されている[10](Hickman et al. 2015)(編集コメント:文献が正しいかご確認ください)。およそ30,000本の求心性神経(聴神経)は蝸牛軸を通って蝸牛器官内に入り、内側(蝸牛軸側)から有毛細胞に分布する。聴神経線維の95%が内有毛細胞体に分布する。数10本の聴神経線維が1個の内有毛細胞体にシナプス形成する。
遠心性神経線維の役割
一方、聴神経線維全体の5%程度に相当する神経線維は遠心性神経線維(編集コメント:起始核は?)であり、分枝を繰り返して複数の外有毛細胞にシナプスを形成する[11]。この遠心性神経線維(オリーブ蝸牛束)の多くは外有毛細胞体上にシナプス形成する。従って音を聞く細胞としての内有毛細胞に対して、外有毛細胞は蝸牛器官の感度を調節する役割が議論されている。これに関しては外有毛細胞が膜電位に応じて細胞体長を伸縮させる機能を持つ事との関連が議論されている[12] [13]。音波による振動刺激に応じて基底膜の振動振幅を変動させることで内有毛細胞の感覚毛に加わる機械刺激量を調節し、結果として音刺激に対する受容器感度を上げる働きをしているものと考えられている[14]。
遠心性神経線維(オリーブ蝸牛束) はアセチルコリンを神経伝達物質とし、一部は内有毛細胞に到る聴神経軸索終末にシナプス形成するが、多くは外有毛細胞体上にシナプス形成する。外有毛細胞体にはアセチルコリン受容体(α9)があり、Ca2+イオンに対する透過性が高く、外有毛細胞ではCa2+イオン活性化カリウムチャネルを活性化することで膜過分極を起こし抑制的に働く[15] [16]。
関連項目
参考文献
- ↑
Hudspeth, A.J. (1983).
Mechanoelectrical transduction by hair cells in the acousticolateralis sensory system. Annual review of neuroscience, 6, 187-215. [PubMed:6301349] [WorldCat] [DOI] - ↑
Ohmori, H. (1985).
Mechano-electrical transduction currents in isolated vestibular hair cells of the chick. The Journal of physiology, 359, 189-217. [PubMed:2582113] [PMC] [WorldCat] [DOI] - ↑
Davis, H. (1965).
A model for transducer action in the cochlea. Cold Spring Harbor symposia on quantitative biology, 30, 181-90. [PubMed:5219471] [WorldCat] [DOI] - ↑
Khimich, D., Nouvian, R., Pujol, R., Tom Dieck, S., Egner, A., Gundelfinger, E.D., & Moser, T. (2005).
Hair cell synaptic ribbons are essential for synchronous auditory signalling. Nature, 434(7035), 889-94. [PubMed:15829963] [WorldCat] [DOI] - ↑
Robertson, D., & Paki, B. (2002).
Role of L-type Ca2+ channels in transmitter release from mammalian inner hair cells. II. Single-neuron activity. Journal of neurophysiology, 87(6), 2734-40. [PubMed:12037175] [WorldCat] [DOI] - ↑
Brandt, A., Khimich, D., & Moser, T. (2005).
Few CaV1.3 channels regulate the exocytosis of a synaptic vesicle at the hair cell ribbon synapse. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience, 25(50), 11577-85. [PubMed:16354915] [PMC] [WorldCat] [DOI] - ↑
Kim, M.H., Li, G.L., & von Gersdorff, H. (2013).
Single Ca2+ channels and exocytosis at sensory synapses. The Journal of physiology, 591(13), 3167-78. [PubMed:23459757] [PMC] [WorldCat] [DOI] - ↑
Kataoka, Y., & Ohmori, H. (1994).
Activation of glutamate receptors in response to membrane depolarization of hair cells isolated from chick cochlea. The Journal of physiology, 477 ( Pt 3), 403-14. [PubMed:7932230] [PMC] [WorldCat] [DOI] - ↑
Glowatzki, E., & Fuchs, P.A. (2002).
Transmitter release at the hair cell ribbon synapse. Nature neuroscience, 5(2), 147-54. [PubMed:11802170] [WorldCat] [DOI] - ↑
Hickman, T.T., Liberman, M.C., & Jacob, M.H. (2015).
Adenomatous Polyposis Coli Protein Deletion in Efferent Olivocochlear Neurons Perturbs Afferent Synaptic Maturation and Reduces the Dynamic Range of Hearing. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience, 35(24), 9236-45. [PubMed:26085645] [PMC] [WorldCat] [DOI] - ↑
Spoendlin, H. (1985).
Anatomy of cochlear innervation. American journal of otolaryngology, 6(6), 453-67. [PubMed:3909832] [WorldCat] [DOI] - ↑
Zheng, J., Shen, W., He, D.Z., Long, K.B., Madison, L.D., & Dallos, P. (2000).
Prestin is the motor protein of cochlear outer hair cells. Nature, 405(6783), 149-55. [PubMed:10821263] [WorldCat] [DOI] - ↑
Liberman, M.C., Gao, J., He, D.Z., Wu, X., Jia, S., & Zuo, J. (2002).
Prestin is required for electromotility of the outer hair cell and for the cochlear amplifier. Nature, 419(6904), 300-4. [PubMed:12239568] [WorldCat] [DOI] - ↑
Ashmore, J. (2008).
Cochlear outer hair cell motility. Physiological reviews, 88(1), 173-210. [PubMed:18195086] [WorldCat] [DOI] - ↑
GALAMBOS, R. (1956).
Suppression of auditory nerve activity by stimulation of efferent fibers to cochlea. Journal of neurophysiology, 19(5), 424-37. [PubMed:13367873] [WorldCat] [DOI] - ↑
Elgoyhen, A.B., Johnson, D.S., Boulter, J., Vetter, D.E., & Heinemann, S. (1994).
Alpha 9: an acetylcholine receptor with novel pharmacological properties expressed in rat cochlear hair cells. Cell, 79(4), 705-15. [PubMed:7954834] [WorldCat] [DOI]